El siguiente protocolo es un extracto de Prior et al, A Rapid and Facile Pipeline for Generating Genomic Point Mutants in C. elegans Using CRISPR/Cas9 Ribonucleoproteins, J. Vis. Exp. (2018).
>PCR y genotipado de gusano único
- Después de 1 a 2 días de puesta de huevos, transfiera el F1s a tapas de tubo de tiras de PCR individuales que contengan 7 μL de tampón de lisis de lombriz utilizando un palillo de lombriz (Tabla 1, Figura 1D, día 4 - 5).
- Centrifugar los tubos de PCR a velocidad máxima durante 1 min a temperatura ambiente para llevar a los animales al fondo del tubo, y congelar los tubos a -80 °C durante 1 h.
NOTA: Los gusanos pueden almacenarse a -80 °C indefinidamente.
- Limente lombrices congeladas en un termociclador utilizando el siguiente programa: 60 °C durante 60 min, 95 °C durante 15 min, 4 °C de retención.
- Configuración de la mezcla maestra de PCR como se muestra en la Tabla 2.
- Agregue 21 μL de mezcla maestra de PCR en tubos de PCR limpios y luego agregue 4 μL de lisis de lombriz desde el paso 3. Mezcle bien con una pipeta y ejecute el programa de PCR siguiendo las pautas del fabricante (consulte la tabla de materiales).
- Purifique las reacciones de PCR utilizando un kit de limpieza y concentración de ADN, siguiendo las instrucciones del fabricante (consulte la tabla de materiales). Eluye el ADN añadiendo 10 μL de agua a la columna de centrifugación.
- Preparación de la mezcla maestra de enzimas de restricción como se muestra en la Tabla 3.
- Añadir 10 μL de la enzima de restricción mastermix a cada reacción de PCR limpia e incubar durante 1 - 2 h a 37 °C.
- Separe los productos de PCR digeridos en un gel de agarosa al 1,5 % a 120 V utilizando 1 tampón de tris-acetato EDTA (TAE).