Artículo de método

Aislamiento primario de células acinares: un método para aislar células acinares del páncreas de ratón

30 de abril de 2023

En este artículo

Resumen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fuente: Fleming Martinez, A. K., et al. Imitación y manipulación de la metaplasia pancreática acinar-ductal en cultivo celular tridimensional. J. Vis. Exp. (2019).

Este video describe la técnica utilizada para aislar las células acinares pancreáticas--células exocrinas-- que contienen una variedad de enzimas digestivas. Las células acinares primarias son útiles en el estudio ex vivo de la metaplasia acinar-ductal (ADM), un evento temprano en el desarrollo del cáncer de páncreas.

Protocolo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de Jove.

1. Aislamiento de células acinares

  1. Sacrificar al ratón mediante inducción de CO 2 y realizar la luxación cervical. Disecciona inmediatamente el páncreas. Para diseccionar el páncreas, primero fije las patas del ratón a la tapa de poliestireno, oriente al ratón de manera que la cola quede frente al investigador y rocíe el abdomen con etanol al 70%
    nota: El ratón utilizado en los resultados representativos fue una hembra no transgénica de 12 semanas de edad con fondo C57BL/6. La selección del mouse se discute con más detalle en la sección de discusión.
    1. Usando un juego de tijeras y pinzas esterilizadas en autoclave, levante el pelaje/piel con las pinzas en la línea media y use las tijeras para hacer una incisión a través del pelaje y la piel desde la abertura uretral hasta el área del diafragma/caja torácica.
    2. Haga incisiones adicionales a la izquierda y a la derecha de modo que se corte el pelaje o la piel para crear una vista clara de la cavidad abdominal. Luego, corte el revestimiento peritoneal (por el medio y hacia la derecha y la izquierda) y retírelo de los órganos, como se hizo con el pelaje / piel.
    3. Levante los intestinos con las pinzas y colóquelo en el lado izquierdo del ratón creando espacio para ver el páncreas, que es de color rosa claro, y unido al bazo, que es un óvalo rojo oscuro. El tejido pancreático se distingue por su textura suave y esponjosa. Corta el páncreas, que correrá a lo largo del estómago y se entrelazará con los intestinos.
    4. Separa el bazo del páncreas. A continuación, coloque el páncreas en un tubo de 50 ml que contenga 10 ml de HBSS con 1x penicilina-estreptomicina y llévelo a la campana de flujo laminar.
      nota: Los pasos restantes del protocolo deben realizarse utilizando la técnica estéril en una campana de flujo laminar.
  2. Vierta el páncreas y el HBSS (con penicilina-estreptomicina) en un recipiente de pesaje vacío y, con pinzas, lave el páncreas agitándolo. Luego, mueva el páncreas con las pinzas a un segundo recipiente de pesaje que contenga HBSS (con penicilina-estreptomicina). Nuevamente, lave el páncreas revolviéndolo.
  3. Mueva el páncreas al tercer recipiente de pesaje que contiene HBSS (con penicilina-estreptomicina) y comience a cortar el páncreas en pedazos pequeños de 5 mm o menos. A continuación, vierta los trozos de páncreas y el HBSS en un tubo vacío de 50 ml.
    1. Para hacer esto, use las pinzas para mover las piezas del páncreas en el líquido a medida que se inclina el bote de pesaje. Vierta una vez que todas las piezas ya no estén unidas al bote de pesaje. Recoja los pedazos restantes con las pinzas y lave las pinzas en el tubo de 50 ml que contiene el páncreas en HBSS con penicilina-estreptomicina.
  4. Centrifugar a 931 x g durante 2 min a 4 °C y, a continuación, eliminar el HBSS (y cualquier grasa que esté flotando) pipeteándolo con una pipeta de 5 mL.
  5. Agregue 5 mL de colagenasa (Prepare 40 mL de HBSS + 5% FBS, 20 mL de HBSS + 30% FBS y 5 mL de 2 mg/mL de colagenasa en HBSS. Esterilizar la colagenasa por filtración (poro de 0,22 μm) y mantener a temperatura ambiente. Mantenga cada una de las soluciones de HBSS en hielo) al páncreas. Asegúrese de que la tapa esté sellada envolviendo el tubo de 50 ml en una película plástica de parafina y luego colóquelo en una incubadora agitando a 220 rpm durante 20 minutos a 37 °C.
    nota: El tiempo de digestión de la colagenasa puede variar, como se señaló en la discusión. Al final de la incubación, no deben quedar grandes trozos de tejido.
  6. Para detener la disociación, coloque el tubo que contiene páncreas en hielo y agregue 5 mL de HBSS frío + 5% de FBS. Centrifugar a 931 x g durante 2 min a 4 °C y, a continuación, pipetear el sobrenadante con una pipeta de 5 mL.
  7. Vuelva a suspender en 10 mL de HBSS + 5% de FBS y centrifugue a 931 x g durante 2 min a 4 °C. Pipetear el sobrenadante con una pipeta de 5 mL y repetir este paso con otros 10 mL de HBSS + 5% de FBS
  8. .
  9. Vuelva a suspender en 5 mL de HBSS + 5% de FBS y, usando un P1000, transfiera 1 mL a la vez a través de una malla de 500 μm a un tubo de 50 mL. Agregue 5 ml adicionales de HBSS + 5% de FBS a través de la malla con un P1000 para lavar las células pancreáticas restantes a través de la malla.
  10. Coloque la suspensión celular de la malla de 500 μm a través de la malla de 105 μm pipeteando 1 ml a la vez con un P1000. A continuación, pipetee suavemente la suspensión celular en un tubo que contenga HBSS + 30% FBS. Se formará una capa de suspensión celular en la parte superior; Tras la centrifugación, las células acinares se hundirán para formar un pellet.
  11. Centrifugar a 233 x g durante 2 min a 4 °C. Retirar el sobrenadante y volver a suspender el pellet en 1x medio completo de Waymouth.
    1. Si se procede directamente a la incrustación de células en el colágeno o en la matriz de la membrana basal, resuspender en un volumen de 7 mL por páncreas. Si se procede a una infección adenoviral o lentiviral, resuspender en 4 mL por páncreas.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Incubadora vibratoria a 37 °CTermo CientíficoSHKE4000-7
5% CO2, 37 °C IncubadoraNUAIRENU-5500
Tubos de 50 mlhalcón352070
Almohadilla absorbente, 20" x 24"Marca Pescadora1420662
Aguja deslizante de precisión BD 21G x 1/2Fisher Científico305167Uso como alfileres para la disección
Vaso de precipitados, 600 mLMarca PescadoraFB-101-600
centrífugaBeckman CoulterCentrífuga Allegra X-15R
Colagenasa tipo I, Clostridium histolyticumsigmaC0130-1GCree una solución de 100 mg/ml disolviendo el polvo en agua estéril de grado de biología molecular. Al descongelar una alícuota, diluir a 10 mg/ml, esterilizar con filtro y colocar alícuotas de 1 ml a -20 °C.
dexametasonasigmaD1756Cree una solución de 4 mg/ml disolviendo el polvo en metanol, alícuota y almacenándolo a -20 °C.
Etanol, 200 gradosLaboratorios DeconArtículo 2701
Suero Fetal BovinosigmaF0926-100mL
fórcepsHerramientas de Bellas Ciencias11002-12
fórcepsHerramientas de Bellas Ciencias91127-12
Solución salina equilibrada de Hank (HBSS), sin calcio, sin magnesio, sin rojo fenolFisher CientíficoSH3048801
Cubitera, rectangularFisher Científico07-210-103
Bolsas de muestras LAB GUARD (para ratones después de la disección)MinigripSBL2X69S
ParafilmBemisPM992Denominada "película plástica de parafina" en el manuscrito
PbsFisher CientíficoSH30028.02
Penicilina-EstreptomicinaThermoFisher Scientific15140122
Puntas de pipeta, 10 μlCientífico de EE. UU1110-3700
Puntas de pipeta, 1000 μlPlásticos Olympus24-165RL
Puntas de pipeta, 200 μlCientífico de EE. UU1111-1700
Pipet-AidDrummond
PIPETMAN Classic P10, 1-10 μlGilsonF144802
PIPETMAN Classic P1000, 200-1000 μlGilsonF123602
PIPETMAN Classic P20, 2-20 μlGilsonF123600
PIPETMAN Classic P200, 20-200 μlGilsonF123601
Pipetas, 10 mlhalcón357551
Pipetas, 25 mlhalcón357525
Pipetas, 5 mlhalcón357543
Malla de polipropileno, 105 μmLaboratorios de espectro146436
Malla de polipropileno, 500 μmLaboratorios de espectro146418
tijerasHerramientas de Bellas Ciencias14568-12
tijerasHerramientas de Bellas Ciencias14568-13
Bicarbonato de sodio (polvo blanco fino)Fisher CientíficoBP328-500
hidróxido sódicoFisher CientíficoS318-500
Inhibidor de la tripsina de la sojaGibco17075029
espátulaMarca Pescadora21-401-10
Steriflip 50 ml, filtros de 0,22 micrasMilliporeSCGP00525
Colágeno de cola de rata tipo ICorning354236
Waymouth MB 752/1 Medio (polvo)sigmaW1625-10X1L
Bote de pesaje, hexagonal, medioMarca Pescadora02-202-101
. .

Reimpresiones y permisos

Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este artículo de JoVE

Solicitar permiso

Etiquetas

Disecci n de p ncreas de rat ndigesti n con colagenasafiltraci n de tejidocentrifugaci n celularpellet de c lulas acinareslavado con HBSSresuspensi n en FBSmedio Waymouthspreparaci n de tejido pancre tico

Artículos relacionados