Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de Jove.
1. Aislamiento de células acinares
- Sacrificar al ratón mediante inducción de CO 2 y realizar la luxación cervical. Disecciona inmediatamente el páncreas. Para diseccionar el páncreas, primero fije las patas del ratón a la tapa de poliestireno, oriente al ratón de manera que la cola quede frente al investigador y rocíe el abdomen con etanol al 70%
nota: El ratón utilizado en los resultados representativos fue una hembra no transgénica de 12 semanas de edad con fondo C57BL/6. La selección del mouse se discute con más detalle en la sección de discusión.
- Usando un juego de tijeras y pinzas esterilizadas en autoclave, levante el pelaje/piel con las pinzas en la línea media y use las tijeras para hacer una incisión a través del pelaje y la piel desde la abertura uretral hasta el área del diafragma/caja torácica.
- Haga incisiones adicionales a la izquierda y a la derecha de modo que se corte el pelaje o la piel para crear una vista clara de la cavidad abdominal. Luego, corte el revestimiento peritoneal (por el medio y hacia la derecha y la izquierda) y retírelo de los órganos, como se hizo con el pelaje / piel.
- Levante los intestinos con las pinzas y colóquelo en el lado izquierdo del ratón creando espacio para ver el páncreas, que es de color rosa claro, y unido al bazo, que es un óvalo rojo oscuro. El tejido pancreático se distingue por su textura suave y esponjosa. Corta el páncreas, que correrá a lo largo del estómago y se entrelazará con los intestinos.
- Separa el bazo del páncreas. A continuación, coloque el páncreas en un tubo de 50 ml que contenga 10 ml de HBSS con 1x penicilina-estreptomicina y llévelo a la campana de flujo laminar.
nota: Los pasos restantes del protocolo deben realizarse utilizando la técnica estéril en una campana de flujo laminar.
- Vierta el páncreas y el HBSS (con penicilina-estreptomicina) en un recipiente de pesaje vacío y, con pinzas, lave el páncreas agitándolo. Luego, mueva el páncreas con las pinzas a un segundo recipiente de pesaje que contenga HBSS (con penicilina-estreptomicina). Nuevamente, lave el páncreas revolviéndolo.
- Mueva el páncreas al tercer recipiente de pesaje que contiene HBSS (con penicilina-estreptomicina) y comience a cortar el páncreas en pedazos pequeños de 5 mm o menos. A continuación, vierta los trozos de páncreas y el HBSS en un tubo vacío de 50 ml.
- Para hacer esto, use las pinzas para mover las piezas del páncreas en el líquido a medida que se inclina el bote de pesaje. Vierta una vez que todas las piezas ya no estén unidas al bote de pesaje. Recoja los pedazos restantes con las pinzas y lave las pinzas en el tubo de 50 ml que contiene el páncreas en HBSS con penicilina-estreptomicina.
- Centrifugar a 931 x g durante 2 min a 4 °C y, a continuación, eliminar el HBSS (y cualquier grasa que esté flotando) pipeteándolo con una pipeta de 5 mL.
- Agregue 5 mL de colagenasa (Prepare 40 mL de HBSS + 5% FBS, 20 mL de HBSS + 30% FBS y 5 mL de 2 mg/mL de colagenasa en HBSS. Esterilizar la colagenasa por filtración (poro de 0,22 μm) y mantener a temperatura ambiente. Mantenga cada una de las soluciones de HBSS en hielo) al páncreas. Asegúrese de que la tapa esté sellada envolviendo el tubo de 50 ml en una película plástica de parafina y luego colóquelo en una incubadora agitando a 220 rpm durante 20 minutos a 37 °C.
nota: El tiempo de digestión de la colagenasa puede variar, como se señaló en la discusión. Al final de la incubación, no deben quedar grandes trozos de tejido.
- Para detener la disociación, coloque el tubo que contiene páncreas en hielo y agregue 5 mL de HBSS frío + 5% de FBS. Centrifugar a 931 x g durante 2 min a 4 °C y, a continuación, pipetear el sobrenadante con una pipeta de 5 mL.
- Vuelva a suspender en 10 mL de HBSS + 5% de FBS y centrifugue a 931 x g durante 2 min a 4 °C. Pipetear el sobrenadante con una pipeta de 5 mL y repetir este paso con otros 10 mL de HBSS + 5% de FBS
.
- Vuelva a suspender en 5 mL de HBSS + 5% de FBS y, usando un P1000, transfiera 1 mL a la vez a través de una malla de 500 μm a un tubo de 50 mL. Agregue 5 ml adicionales de HBSS + 5% de FBS a través de la malla con un P1000 para lavar las células pancreáticas restantes a través de la malla.
- Coloque la suspensión celular de la malla de 500 μm a través de la malla de 105 μm pipeteando 1 ml a la vez con un P1000. A continuación, pipetee suavemente la suspensión celular en un tubo que contenga HBSS + 30% FBS. Se formará una capa de suspensión celular en la parte superior; Tras la centrifugación, las células acinares se hundirán para formar un pellet.
- Centrifugar a 233 x g durante 2 min a 4 °C. Retirar el sobrenadante y volver a suspender el pellet en 1x medio completo de Waymouth.
- Si se procede directamente a la incrustación de células en el colágeno o en la matriz de la membrana basal, resuspender en un volumen de 7 mL por páncreas. Si se procede a una infección adenoviral o lentiviral, resuspender en 4 mL por páncreas.