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Artículo de método

Cultivo rápido de melanocitos y fibroblastos murinos primarios: aislamiento de melanocitos y fibroblastos de muestras de piel murina completa

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30 de abril de 2023

En este artículo

Resumen

Fuente: Murphy, B. M. et al. Generación rápida de cultivos primarios de melanocitos y fibroblastos murinos. J. Vis. Exp. (2019)

Este video describe el método rápido para aislar y cultivar los melanocitos y fibroblastos simultáneamente de la piel de la cría de ratón postnatal. Estas células se pueden mantener y manipular in vitro para estudiar la biología de las células de la piel, la cicatrización de heridas y el melanoma.

Protocolo

Todos los procedimientos relacionados con animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

>1. Aislamiento de melanocitos y fibroblastos

  1. Eutanasiar a los cachorros machos y/o hembras C57Bl/6J de 0 a 4 días de edad mediante decapitación, y extirpar las extremidades de los ratones sacrificados con tijeras quirúrgicas.
  2. En una cabina de flujo laminar, enrolle brevemente la trompa de cada ratón en una placa de Petri estéril que contenga un 70% de etanol. Retire el tronco del etanol y colóquelo en una placa de Petri vacía y estéril.
  3. Con unas tijeras quirúrgicas, esterilizadas en etanol al 70%, se realiza una incisión en la piel del lado ventral del tronco desde el cuello hasta la cola. Pela la piel de la trompa del ratón con pinzas estériles.
  4. Coloque la piel, con la dermis hacia abajo, en un plato de 6 pocillos que contenga 3 ml de 1x solución antibiótica/antimicótica e incube a temperatura ambiente durante 2-3 minutos.
  5. Encienda el picador de pañuelos con los siguientes ajustes: Grosor de la rebanada: 1 μm; Fuerza de la hoja: ~ 60% del máximo; Velocidad: ~50% del máximo.
  6. Transfiera la piel, con la dermis hacia abajo, a un disco picador de tejido estéril y pase la piel completamente a través del picador de tejido activado 3 veces.
  7. Transfiera la piel homogeneizada a un tubo cónico estéril de 15 mL que contenga 3 mL de tampón de digestión cutánea (prepare 3 mL de tampón de digestión cutánea fresco que contenga 10% de suero fetal bovino, 1% de solución de penicilina/estreptomicina, 1% de L-glutamina, 10 mg/mL de colagenasa tipo I, 0,25% de tripsina porcina y 0,02 mg/mL de desoxirribonucleasa I en RPMI 1640). Mezcle la suspensión resultante pipeteando hacia arriba y hacia abajo 10-15 veces con una micropipeta P1000.
  8. Tapar el tubo cónico e incubar la muestra en un baño de agua a 37 °C durante 15 min, invirtiendo el tubo cada 3-5 min.
  9. Granular las células de la piel homogeneizadas centrifugando el tubo cónico en un rotor de cubo oscilante a 750 x g durante 5 min a temperatura ambiente.
  10. Con una micropipeta P1000, retire lenta y completamente el tampón de digestión cutánea, teniendo cuidado de no alterar el pellet.
    nota: En esta etapa se puede guardar una porción de piel entera y usarla como control para confirmar la pureza celular. Cuele estas células a través de un colador de células de 70 μm y procese continuamente.
  11. Vuelva a suspender completamente el pellet celular en 1 mL de medio de melanocitos pipeteando hacia arriba y hacia abajo 15-20 veces con una micropipeta P1000. Agregue la solución celular resultante gota a gota a un pocillo sin recubrimiento de un plato de 6 pocillos que contenga 1 mL de medio de melanocitos.
  12. Colocar el homogeneizado de piel en placa en una incubadora de cultivo de tejidos a 37 °C y 5% de CO2. Deje incubar los cultivos durante 40 min.
    nota: Durante este tiempo, algunos fibroblastos de la piel se homogeneizarán a la placa sin recubrimiento, mientras que los melanocitos y queratinocitos permanecerán en suspensión.
  13. Transfiera el sobrenadante de cultivo del plato sin recubrimiento a un pocillo de un plato de 6 pocillos prelavado y recubierto de colágeno. Agregue G418 al medio de modo que la concentración final sea de 100 ng/mL.
  14. Agregue 2 mL de medios de fibroblastos a un pocillo de la placa sin recubrimiento, que ahora contiene fibroblastos adherentes.
  15. Incubar ambos cultivos durante la noche en una incubadora de cultivo de tejidos a 37 °C y 5% de CO2.
  16. Aspire por separado el medio y cualquier residuo de cada cultivo, 16-24 h después del enchapado. Lave cada plato dos veces con 1 mL de PBS estéril y luego agregue 2 mL de medios de melanocitos frescos más 100 ng/mL de G418 al cultivo de melanocitos y 2 mL de medios de fibroblastos frescos al cultivo de fibroblastos. (Prepare 6 mL de medio de melanocitos frescos que contengan 10% de suero fetal bovino, 7% de suero equino, 1% de solución de penicilina/estreptomicina, 1% de L-glutamina, 0,5 mM de di-butiril AMP cíclico (dbcAMP), 20 nM de tetradecanoylforbol 13-acetato (TPA) y 200 pM de toxina del cólera (CT) en Nutrient Mix F-12 Ham's media.
    NOTA: Las soluciones madre concentradas de dbcAMP, TPA y CT se pueden fabricar, alícuota y almacenar durante >1 año a -80 °C. Los medios base que carecen de estos componentes pueden almacenarse hasta 1 mes a 4 °C.
    Prepare 4 mL de medios de fibroblastos que contengan 10% de suero fetal bovino, 1% de penicilina/estreptomicina y 1% de L-glutamina en el medio Eagle Modificado de Dulbecco. Este medio puede almacenarse a 4 °C durante un máximo de 1 mes)
  17. Después de que los cultivos de melanocitos hayan sido tratados con G418 durante 48 h, lavar las células dos veces con 1 mL de PBS estéril y añadir 2 mL de medios de melanocitos frescos sin G418 al cultivo.
    nota: A medida que los fibroblastos en el cultivo de melanocitos continúan muriendo después del tratamiento con G418, lave el plato con PBS estéril para eliminar las células muertas y agregue medios de melanocitos frescos. Los cultivos de melanocitos y fibroblastos deben pasar cuando alcancen el 70-80% de confluencia.

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Etanol, 200 gradosFisher Científico22032601
Solución antibiótica antimicótica (100x)Sigma-AldrichA5955
Picadora de pañuelos McIlwainTed Pella10180
Cuchilla picadora de pañuelosTed Pella121-6
Disco de plástico picador de pañuelosTed Pella10180-01
Colagenasa Tipo IWorthington BiochemicalsLS004156
Tripsina porcinaSigma-Aldrich85450C
tripsinaVWRVWRL0154-0100
G418 DisulfuroP212121LGB-418-1
Dulbecco's Modified Eagle MedioGibco12800-082
Medios RPMI 1640Sigma-AldrichR8758
Solución salina tamponada con fosfato de DulbeccoSigma-AldrichD8537
Placa de cultivo celular de 6 pocillosSigma-AldrichSIAL0516
Tubos de poliestireno de fondo redondo de 5 mlFisher Científico352008
Plato de cultivo celular de 10 cmCorning430167
Albúmina sérica bovinaFisher CientíficoBP9706-100
Suero Fetal BovinoSigma-Aldrich12306C
Solución de penicilina/estreptomicina de CorningFisher Científico30-002-CL
Mezcla de nutrientes F-12 Ham's MediaSigma-AldrichN6760
Colágeno de la cola de rataSigma-AldrichC7661
Filtro de jeringa estéril PES de 0,2 μmVWR28145-501
Filtro de células de 40 μmFisher Científico22363547
Filtro de células de 70 μmFisher Científico22363548
Toxina del cóleraSigma-AldrichC8052
Suero de caballoFisher Científico26050088
HyClone L-GlutaminaFisher CientíficoSH3003402

Etiquetas

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