Method Article

Imagen crónica de la corteza visual del ratón usando una preparación de Diluido-cráneo

DOI:

10.3791/2060

October 25th, 2010

In This Article

Summary

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En este material de vídeo y complementaria, se muestra un protocolo para la crónica In vivo Imágenes del cerebro intacto con una preparación diluida-cráneo.

Abstract

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Imágenes in vivo utilizando dos fotones microscopía de barrido láser (2PLSM) permite el estudio de las células vivas y los procesos neuronales en el cerebro intacto. La técnica que aquí se presenta permite que la imagen de la misma área del cerebro en varios puntos del tiempo (crónica de imágenes) con resolución microscópica que permite el seguimiento de las espinas dendríticas, que son las pequeñas estructuras que representan la mayoría de los sitios postsinápticos excitatorios en el SNC. La capacidad de resolver bien claramente las estructuras corticales más de varios puntos del tiempo tiene muchas ventajas, especialmente en el estudio de la plasticidad del cerebro en la que los cambios morfológicos en las sinapsis y la remodelación del circuito puede ayudar a explicar los mecanismos subyacentes. En este material de vídeo y complementarias, se muestra un protocolo para la crónica en vivo de imágenes del cerebro intacto con una preparación diluida-cráneo. La preparación diluida-cráneo es un método mínimamente invasivo, lo que evita posibles daños a la duración y / o la corteza, lo que reduce la aparición de una respuesta inflamatoria. Cuando este protocolo se realiza correctamente, es posible seguir con claridad los cambios en las características de la espina dendrítica en el cerebro intacto durante un período prolongado de tiempo.

Protocol

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  1. Para visualizar las neuronas en el cerebro intacto utilizando microscopía de dos fotones, una preparación donde las neuronas son etiquetados con marcadores fluorescentes se utiliza. En los experimentos que aquí se presenta se utiliza la línea de las buenas prácticas agrarias-M de ratones transgénicos que las etiquetas de la capa de células piramidales 5 1. Capa 5 células piramidales proyecto prolongaciones dendríticas en las capas superficiales, lo que permite la visualización de las dendritas y espinas dendríticas hasta una profundidad de 300 m por debajo del nivel de la PIA. Un enfoque alternativo es a las células de la etiqueta utilizando los marcadores virales (véase ....

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Discussion

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Imágenes crónica utilizando microscopía de dos fotones se está convirtiendo en una técnica cada vez más popular para estudiar los cambios morfológicos se dispararon durante 2-5 plasticidad. Aquí se demuestra una preparación diluida-cráneo de seguir identificado las espinas dendríticas en el cerebro del ratón intacto en día imágenes diferentes. En este protocolo, el cráneo se deja intacta, causando el mínimo daño a la corteza y que resulta en niveles muy bajos de la neuroinflamación que pueden alterar la funci.......

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Disclosures

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No hay conflictos de interés declarado.

Acknowledgements

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Este trabajo fue apoyado por el Premio Carrera Burroughs Wellcome en las Ciencias Biomédicas (AKM), la Fundación de Becas de Investigación Whitehall (AKM), Beca de la Fundación Sloan (AKM), NIH EY019277 (AKM), y una financiación NEI, Visión Entrenamiento Grant, EY013319 ( EAK).

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
de fentaniloen casaCóctel de fentanilo: cóctel anestésico;
IP Dosis: 0,0125 ml/g

Cóctel final: 0,05 mg/kg
Clorhidrato de medetomindina Cóctel deinterno: cóctel anestésico;
IP Dosis: 0,0125 ml/g

Cóctel final: 0,05 mg/kg
Midazolam HCLCóctel: cóctel anestésico;
IP Dosis: 0,0125 ml/g

Cóctel final conc.: 0,05 mg/kg
2,2,2-tribrom– Cóctel de etanol Avertin: Anestésico;
IP Dosis: 0.0075 cc/ g

Cóctel final: 1%
2-metil-2-butanol (Concentración final: 0.775%)Cóctel de Avertina: Anestésico;
IP Dosis: 0.0075 cc/ g

Cóctel final conc.: .775%
TC-1000 Sistema de control de temperatura para ratonesCWE, Inc.TC-1000 Regulación dela temperatura corporal
del ratón ToberadexUngüento
doméstico 10% Cloruro férricoRicca Chemical Company3120-32Preparación de cráneo delgado
Preparación de cráneo delgado
Cianoacrilato 401LoctiteN/P 40140Preparación de cráneo delgado
Zip Kicker Pegamento Acelerador TecnologíaPacerPT-29Preparación de cráneo delgado
Micro Drill Fresas de acero de 0,7 mm de diámetroHerramientas de ciencia fina19008-07Preparación de cráneo delgado
Caja de control de microtorque y piezade mano Tech2000Productos Ram, Inc.TECH2000ON/OFFPreparación de cráneo fino
#6-0 (0.7 métrico) sutura de sedaEthicon Inc.K8894HC-1
Pinza de apósito para ojos, 10 cm, ancho de punta de 0,5 mm, curvadaHerramientas quirúrgicasFine Science Tools11152-10
Tijeras Bonn extrafinas, 8,5 cm, punta recta, filo de 13 mmHerramientas quirúrgicasFine Science Tools14084-08
Pinzas de patrón estándar, rectas, punta de 2,5 mm x 1,35 mm, 12 cmHerramientas quirúrgicasFine Science Tools11000-12
Citrato fentanilo de fentanilo interno para ojosCuchilla microquirúrgica Sable Industries S-6400 Preparación de cráneo delgado Cianoacrilato 404,401 Loctite N/P 46551 de punta

References

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  1. Feng, G. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28 (1), 41-51 (2000).
  2. Holtmaat, A. high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nat Protoc. 4<....

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Two Photon ImagingDendritic Spine ImagingThinned Skull PreparationChronic Brain ImagingMouse Visual CortexGFP Labeled NeuronsDendritic Spine MorphologyCortical Plasticity StudyIn Vivo MicroscopySkull Thinning Protocol

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