| Líneas transgénicas de Arabidopsis | | | Park, E., Lee, H. Y., Woo, J., Choi, D. y Dinesh-Kumar, S. P. Monitoreo espaciotemporal de efectores de Pseudomonas syringae a través de la secreción de tipo III utilizando fragmentos de proteínas fluorescentes divididas. Célula vegetal. 29 (7), 1571-1584 (2017) |
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| CITO-sfGFP1-10 | ABRC | CS69831 | |
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| NU-sfGFP1-10 | ABRC | CS69832 | |
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| PT-sfGFP1-10 | ABRC | CS69833 | |
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| MT-sfGFP1-10 | ABRC | CS69834 | |
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| PX-sfGFP1-10 | ABRC | CS69835 | |
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| ER-sfGFP1-10 | ABRC | CS69836 | |
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| GO-sfGFP1-10 | ABRC | CS69837 | |
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| PM-sfGFP1-10 | ABRC | CS69838 | |
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| Plásmido sfGFP1-10OPT dirigido a orgánulos | | | Park, E., Lee, H. Y., Woo, J., Choi, D. y Dinesh-Kumar, S. P. Monitoreo espaciotemporal de efectores de Pseudomonas syringae a través de la secreción de tipo III utilizando fragmentos de proteínas fluorescentes divididas. Célula vegetal. 29 (7), 1571-1584 (2017) |
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| CITO-sfGFP1-10 | Addgene | 97387 | |
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| NU-sfGFP1-10 | Addgene | 97388 | |
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| PT-sfGFP1-10 | Addgene | 97389 | |
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| MT-sfGFP1-10 | Addgene | 97390 | |
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| PX-sfGFP1-10 | Addgene | 97391 | |
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| ER-sfGFP1-10 | Addgene | 97392 | |
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| GO-sfGFP1-10 | Addgene | 97393 | |
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| PM-sfGFP1-10 | Addgene | 97394 | |
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| ER-sfCereza1-10 | Addgene | 97403 | |
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| ER-sfYFP1-10 | Addgene | 97404 | |
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| CITO-sfCFP1-10 | Addgene | 97405 | |
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| Vector compatible con Gateway etiquetado con sfGFP11 para sistema de administración de efectores basado en T3SS | Park, E., Lee, H. Y., Woo, J., Choi, D. y Dinesh-Kumar, S. P. Monitoreo espaciotemporal de efectores de Pseudomonas syringae a través de la secreción de tipo III utilizando fragmentos de proteínas fluorescentes divididas. Célula vegetal. 29 (7), 1571-1584 (2017) |
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| pBK-GW-1-2 | Addgene | 98250 | pAvrRpm1:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la kanamicina (25 ug/ml) |
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| pBK-GW-1-4 | Addgene | 98251 | pAvrRpm1:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la kanamicina (25 ug/ml) |
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| pBK-GW-2-2 | Addgene | 98252 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la kanamicina (25 ug/ml) |
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| pBK-GW-2-4 | Addgene | 98253 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la kanamicina (25 ug/ml) |
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| pBG-GW-1-2 | Addgene | 98254 | pAvrRpm1:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la gentamicina (25 ug/ml) |
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| pBG-GW-1-4 | Addgene | 98255 | pAvrRpm1:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la gentamicina (25 ug/ml) |
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| pBG-GW-2-2 | Addgene | 98256 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-sfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la gentamicina (25 ug/ml) |
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| pBG-GW-2-4 | Addgene | 98257 | pAvrRpm1:AvrRPM1sp:GW:HA-2xsfGFP11:AvrRpm1t; Resistente a la gentamicina (25 ug/ml) |
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| Cepas bacterianas | | | |
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| Agrobacterium tumefaciens GV3101 | | | Csaba Koncz y Jeff Schell, El promotor del gen 5 de TL-DNA controla la expresión específica del tejido de genes quiméricos transportados por un nuevo tipo de vector binario de Agrobacterium. Mol Gen Genet. 204,383-396 (1986); Resistente a la gentamicina (50 ug/ml) y a la rifampicina (50 ug/ml) |
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| Pseudomonas syringae pv. Tomate CUCPB5500 | | | Kvitko, B. H. et al. Las deleciones en el repertorio de Pseudomonas syringae pv. Los genes efectores de secreción tipo III del tomate DC3000 revelan superposición funcional entre los efectores. PLoS Pathog. 5 (4) (2009).; Resistente a la rifampicina (100 ug/ml) |
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| Componentes multimedia | | | |
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| Medios de germinación de plantas | | | Añadir 2,165 g/L de polvo de Murashige & Skoog, 10 g/L de sacarosa al agua. Ajustar a pH 5,8 y añadir 2,2 g/L de phytagel. Autoparto. |
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| Murashige & Skoog medium incluyendo vitaminas | Bioquímica Duchefa | M0222 | Conservar a 4 °C. |
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| Sacarosa | Bioquímica Duchefa | S0809 | |
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| Phytagel | Sigma-Aldrich | P8169 | |
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| Medios LB | | | Añadir 10 g/L de triptona, 5 g/L de extracto de levadura, 10 g/L de NaCl al agua. Para medios sólidos, agregue 15 g / L de micro agar. Autoclave. Deje que la solución se enfríe a 55 °C y agregue antibióticos si es necesario. |
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| Triptona | BD Biociencia | 211705 | |
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| Extracto de levadura | BD Biociencia | 212750 | |
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| NaCl | Bioquímica Duchefa | S0520 | |
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| Micro agar | Bioquímica Duchefa | M1002 | |
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| Medios de comunicación de King's B | | | 10 g/L de proteasa peptona #2, 1,5 g/L de K2HPO4 anhidro, 15 g/L de agar a agua. Autoclave. Enfriar a 55 °C y añadir 15 ml/L de glicerol estéril, 5 ml/L de MgSO4 al medio. Agregue antibióticos si es necesario. |
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| Proteosa peptona | BD Biociencia | 212120 | |
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| Anhidro K2HPO4 | Sigma-Aldrich | 1551128 USP | |
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| Glicerol | Bioquímica Duchefa | G1345 | |
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| MgSO:4 | Sigma-Aldrich | M7506 | |
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| Bacto Agar | BD Biociencia | 214010 | |
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| Medios líquidos de manitol-glutamato (MG) | | | Añadir 10 g/L de manitol, 2 g/L de ácido L-glutámico, 0,5 g/L de KH2PO4, 0,2 g/L de NaCl y 0,2 g/L de MgSO4 al agua. Ajustar a pH 7 |
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| Manitol | Bioquímica Duchefa | M0803 | |
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| Ácido L-glutámico | Bioquímica Duchefa | G0707 | |
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| KH2PO4 | Sigma-Aldrich | NIST200B | |
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| Tampón de infiltración | | | 10 mM MES (ácido 2-(N-morfolino)-etano sulfónico), 10 mM MgCl2, 150 μM acetosiringona. pH 5,6; Prepare un tampón nuevo antes de usarlo. |
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| MES | Bioquímica Duchefa | M1503 | Prepare 100 mM (pH 5,6) de caldo en agua. Esterilizar con filtro. |
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| MgCl2 | Sigma-Aldrich | M8266 | Preparar 100 mM de caldo en agua. Autoclave. |
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| Acetosiringona | Sigma-Aldrich | D134406 | Prepare 150 mM de stock en DMSO. |
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| Equipos/materiales de microscopio confocal | | | |
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| Sistema confocal de escaneo láser 710 | Carl Zeiss | | |
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| Microscopio invertido Axio observer Z1 | Carl Zeiss | | |
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