1. Protocolo para la activación y control de calidad de cultivos de bacterias lácticas (BAL)
- Tome el stock de glicerol preparado de cepas LAB (en tubos de centrífuga de 2 ml) del congelador ultra bajo a -80 °C y no permita que se descongelen antes de su uso.
- Limpie y desinfecte la abertura de los tubos de la centrífuga con alcohol al 70% y haga un vórtice suave antes de usarlo.
- Pipetee aproximadamente 250 μL (0,25 ml) del cultivo LAB de los tubos de centrífuga en tubos de ensayo MRS (medios deMan, Rogosa y Sharpe) nuevos de 2 ml.
- Agite suavemente, parafilme los tubos de ensayo e incube anaeróbicamente durante la noche a 42 ° C durante 12-16 h.
- Tome aproximadamente 500 μL (0,5 mL) de los cultivos cultivados durante la noche de los tubos de ensayo MRS de 2 mL en tubos de ensayo MRS frescos de 7 mL, vórtice e incube anaeróbicamente durante la noche a 42 ° C durante 12-16 h.
- Evaluar el crecimiento microbiano midiendo la densidad óptica (DO) o el crecimiento de los cultivos a 610 nm con un espectrofotómetro UV-visible y registrando resultados aceptables entre 0,7 y 0,9.
- Estreche los cultivos nocturnos de los tubos MRS de 7 ml en placas de agar MRS y MRCM-PYR (piruvato medio clostridial reforzado modificado) e incube anaeróbicamente durante 72 h a 42 °C.
- Las colonias aisladas se recogen de las placas de agar, se transfieren a tubos de ensayo MRS frescos de 7 ml, se agitan suavemente en vórtices y se incuban anaeróbicamente durante la noche a 42 °C durante 12-16 h.
- Conservar en el frigorífico las placas de agar que contienen las cepas aisladas a 4 °C durante una semana.
- Mida y confirme la OD (entre 0,7 y 0,9) de los tubos de ensayo MRS de 7 ml de los cultivos LAB aislados de las placas rayadas a 610 nm y utilícelos como cultivos de trabajo para todos los experimentos relacionados.
- Para obtener una proporción de 1:10, realice diluciones diez veces (diluciones en serie) de los cultivos LAB cultivados de los tubos de ensayo MRS finales de 7 ml utilizando 9 ml de agua de peptona (un tampón fisiológico).
- Finalmente, tome aproximadamente 250 μL (0,25 mL) de diluciones en serie apropiadas para todos los experimentos de fermentación.
- Active las cepas que contienen caldo (250 μL) a partir del paso 2.12 transfiriéndolas a caldo MRS fresco de 7 ml e incubándolas anaeróbicamente a 42 °C durante 16 h.
NOTA: Todas las cepas de L. bulgaricus se activaron en el caldo MRS recién preparado y luego se incubaron anaeróbicamente a 42 °C durante 16 h para alcanzar una densidad óptica (OD610 nm) de crecimiento bacteriano entre 0,7 y 0,9. El crecimiento bacteriano se midió con un espectrofotómetro UV-visible a 610 nm. Los valores de pH de los cultivos nocturnos estuvieron en el rango de 3,5 a 5,3 como resultado de la producción de ácido láctico, un producto final orgánico de la fermentación BAL. Se cumplieron y observaron procedimientos de seguridad como la circulación adecuada del flujo de aire en la campana de bioseguridad y evitar quemaduras durante el uso del mechero Bunsen.