$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Preparación de células bacterianas y almohadillas de inoculación
- Mida la densidad óptica, OD600, de cada subcultivo y diluya Pseudomonas aeruginosa a un OD600 = 0.03 y Staphylococcus aureus a un OD600 = 0.10 en M8T (Medio mínimo 8 + triptona) precalentado a 37 ° C. Mezcle P. aeruginosa y S. aureus en una proporción de 1: 1 y vórtice.
NOTA: Si las cepas requieren antibióticos, se pueden agregar a la pernoctación y al subcultivo, pero no deben agregarse al mezclar especies para obtener imágenes si afectan a las otras especies en el cocultivo. La estabilidad del plásmido y los efectos de los antibióticos en todas las especies del cocultivo deberán determinarse para cada organismo/plásmido que se utilice. - Pipetear 1 μL de cocultivo uniformemente en el fondo de una placa de cubreobjetos de vidrio estéril de 35 mm precalentada.
- Retire el recorte de silicona del molde con unas pinzas estériles.
- Retire la almohadilla del plato con espátulas estériles.
- Deslice la espátula ligeramente doblada debajo del borde de la almohadilla mientras sostiene el molde boca abajo para dejarlo caer sobre una tapa de placa de Petri estéril.
NOTA: No fuerce la almohadilla hacia afuera, o se romperá. Lleve un registro de qué lado de la almohadilla es la parte inferior.
- Transfiera la almohadilla al plato con las células bacterianas, con la parte inferior hacia abajo, deslizando la espátula en ángulo de 90° debajo de la almohadilla y colocándola encima del cubreobjetos inoculado. Use la espátula en ángulo de 90 ° para hacer que la almohadilla quede al ras contra el cubreobjetos y presione suavemente las burbujas de aire.
- Retire el exceso de humedad de las toallitas húmedas y colóquelas alrededor del borde del plato, asegurándose de que no toquen la almohadilla. La muestra ahora está lista para la obtención de imágenes.