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1. Cultivo sincrónico de cianobacterias
- Cultivo Synechococcus elongatus PCC 7942 en una placa esterilizada de medio azul verdoso 11 (BG 11) (en una placa de Petri de plástico estéril de 9 cm) que contiene agar al 1,5% (p/v) y tiosulfato de sodio al 0,3% (p/v).
- Coloque las placas en una cámara de crecimiento a 23 °C con una intensidad de luz de 50 μE/m2/s y sométalas a ciclos de luz de 12 h / 12 h de oscuridad.
- Transfiera las celdas a placas de agar BG11 frescas una vez a la semana.
NOTA: Los cultivos en el agar aparecerán como bandas verdes de células que proliferan activamente después de una semana en estas condiciones de cultivo. - Tome grupos verdes de células con un bucle de alambre esterilizado con llama y raye las células en una placa de agar BG11 nueva. Haga esto en un banco limpio.
2. Monitoreo por microscopía de fluorescencia
- Utilice células cultivadas en la placa de agar durante 6 días para observar la compactación del ADN. Recoja las células de la placa al final del período de luz vertiendo 1 ml de solución de sacarosa 0,2 M sobre las células. Repita vertiendo la solución sobre las células para que se recolecten la mayoría de las células. Transfiera la solución de células suspendidas a un microtubo para la tinción de ADN.
- Agregue una solución de tinción de ADN (p. ej., Hoechst 33342) a 500 μL de la solución celular suspendida en un microtubo hasta una concentración final de 1 μg/mL. Luego, mantenga el tubo en la oscuridad durante 10 min.
- Centrifugar durante 1 min a 2.000 x g para sedimentar las células. Deseche el sobrenadante y agregue 10 μL de solución de sacarosa 0,2 M para obtener una suspensión celular densa.
- Transfiera 1 μL de la solución que contiene las células teñidas a un vaso de portaobjetos, coloque un cubreobjetos y observe con un microscopio de fluorescencia equipado con un filtro ultravioleta (UV) utilizando una lente de objetivo con un aumento de 100X y aceite de inmersión.
- Confirme que la compactación del ADN se observa en este punto en la mayoría de las células.