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Análisis preciso y de alto rendimiento del crecimiento bacteriano usando un lector de microplacas

November 28th, 2025

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Abstract

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fuente: Kurokawa, M., et al. Análisis preciso y de alto rendimiento del crecimiento bacteriano. J. Vis. Exp. (2017)

Este vídeo demuestra la cuantificación de alto rendimiento del crecimiento bacteriano utilizando un lector de microplacas. Describe los pasos implicados en la preparación del cultivo, la medición de la densidad óptica y el análisis de la dinámica del crecimiento.

Protocol

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Registro en tiempo real del crecimiento
    1. Dibuja un pictograma de placa de 96 pozos (tabla 8 × 12) para indicar las posiciones de las muestras de cultivo inoculadas en la placa de 96 pozos. Imprime la tabla y úsala como referencia para el experimento.
      NOTA: Los pozos situados en los bordes de la microplaca solo deben contener medio en blanco debido a la evaporación.
    2. Coloca una microplaca esterilizada de fondo plano de 96 pozos con tapa, puntas de pipeta P-1000 y 1000 μL, P-200 y 200 μL, varios microtubos de 1,5 mL, una pipeta multicanal de 8 módulos, un depósito de reactivos esterilizado, M63 a temperatura ambiente y las culatas de glicerol de Escherichia coli sobre un banco limpio.
    3. Añade aproximadamente 25 mL de M63 al depósito de reactivos. Utiliza este depósito para todos los pasos siguientes.
    4. Añade 900 μL de M63 a los microtubos en preparación para realizar diluciones en serie.
    5. Descongela el stock de glicerol a temperatura ambiente. Añade 900 μL de M63 al glucerol descongelado y al vórtice. Esto resulta en una dilución de 10 veces el stock original de glicerol.
    6. Transfiere 100 μL de la dilución de 10 veces a otro microtubo que contenga 900 μL de M63 y vórtice. Esto resulta en una dilución de 100 veces.
    7. Repite el paso 1.6 hasta alcanzar el número deseado de diluciones.
    8. Rellena los pozos en el borde de la microplaca con 200 μL M63 usando una pipeta de 8 canales (P-200).
      NOTA: Estos pozos pueden usarse como blank.
    9. Carga 200 μL de cada muestra diluida preparada en los pasos 1.4 - 1.7 a los pozos de microplacas según la tabla de referencia (paso 1.1). Vierte las muestras diluidas antes de cargarlas y carga la misma muestra en varios pozos en diferentes ubicaciones de la placa.
    10. Coloca la microplaca de 96 pozos en el lector de placas.
    11. Abre "Leer ahora" en el "Administrador de tareas" y elige el programa. Haz clic en "OK" para empezar a medir. Guarda la grabación como un nuevo archivo experimental para el análisis de datos.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Fosfato de dipotasioWako164-04295 
Fosfato monopotásicoWako166-04255 
Sulfato de amonioWako019-03435 
Sulfato de magnesio heptahidratadoWako138-00415 
Tiamina-HClWako201-00852 
GlucosaWako049-31165 
HclWako080-01066 
Hierro (II) sulfato heptahidratoWako094-01082 
KOHWako168-21815 
GlicerolWako075-00611 
Puntas de pipeta, 200 μLWATSON110-705Y 
Puntas de pipeta, 1.000 μLWATSON110-8040 
Microtubo (1,5 mL)WATSON131-715C 
8 pipetas multicanalWATSONNT-8200 
Agitador PasorinaCOMO UNO2-4990-02 
Cilindro de vidrio (200 mL)COMO UNO1-8562-07 
Medidor de pH de precisiónCOMO UNOAS800 / 1-054-01 
Pipetman P-200GILSON1-6855-05 
Pipetman P-1000GILSON1-6855-06 
Soporte para microtubosBM Bio801-02Y 
VórticeBM BioBM-V1 
Microplaca Corning Costar de 96 pozos con tapa (Fondo plano, transparente)Sigma-AldrichCorning, 3370 
Reservorio de reactivos Corning Costar (50 mL)Sigma-AldrichCorning, 4870 
EPOCH2BioTek2014-EP2-002 / EPOCH2T 
Banco limpio BIOPanasonicMCV-B131F 
Cepas bacterianasOrganización de bancos de cepa; Proyecto Nacional de Recursos Biológicos (NBRP) en Japón  

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Bacterial GrowthMicroplate ReaderOptical DensitySerial DilutionCulture PreparationGrowth Rate AnalysisHigh Throughput QuantificationM63 Media96 Well PlateData Analysis

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