Artículo de método

Desarrollo de un modelo murino de infección cutánea crónica por Pseudomonas aeruginosa

2 de febrero de 2026

En este artículo

Resumen

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Fuente: de Vries, C. R., et.al. Un modelo de inoculación retardada de la infección crónica de la herida por Pseudomonas aeruginosa . J. Vis. Exp. (2020)

Este vídeo demuestra la inoculación tardía de Pseudomonas aeruginosa luminiscente en un ratón con dos heridas dorsales cutáneas de grosor completo cubiertas por un apósito transparente. Esto facilita la formación de biofilm y el establecimiento de infecciones crónicas. El monitoreo regular de bioluminiscencia permite cuantificar la carga bacteriana y seguir la progresión de la infección a lo largo del tiempo.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité local de cuidado institucional de animales y la junta veterinaria JoVE.

1. Inoculación con Pseudomonas aeruginosa

  1. Diluir durante la noche el cultivo PAO1:lux a OD600 = 0,05 en 75 mL de medios de caldo de lisógeno (LB) que contengan 100 μg/mL de carbenicilina y hacer crecer la bacteria hasta que el cultivo esté en fase exponencial temprana (ED600≈0,3). Esto debería llevar aproximadamente 2–3 horas.
  2. Diluir PAO1:lux en solución salina tamponada con fosfato (PBS) a una concentración de (7,5 ± 2,5) x 102 UFC/mL. Asegúrate de preparar un inóculo excesivo para asegurar suficiente volumen y permitir el placado tras el experimento. Si transportas entre instalaciones, usa doble contención en una caja a prueba de fugas claramente marcada como Biohazard.
  3. Realizar todo el trabajo con P. aeruginosa y ratones utilizando equipo de protección individual aprobado en un gabinete de seguridad biológica (BSC) aprobado por el Nivel de Bioseguridad Animal 2 (ABSL-2). Los equipos reutilizables, como la báscula, deben cubrirse con film transparente para evitar la contaminación.
  4. Anestesiar al ratón usando isoflurano al 3%. Pesa el ratón y anota el peso. Inyectar al ratón subcutáneamente con cloruro de sodio estéril al 0,9% precalentado, 250 μL en cada flanco, para un total de 500 μL.
  5. Si la capa transparente del ratón se ha desprendido durante la noche, quita cuidadosamente cualquier costra y aplícate un nuevo vendaje.
  6. Utilice una jeringuilla de 500 μL de cápsula de seguridad de tuberculina 27 G para inyectar 40 μL de la suspensión PAO1:lux a través del apósito transparente en cada herida. Se deben usar ratones diferentes para controles de heridas no inoculados o PBS para evitar la contaminación cruzada por el lado contralateral.
  7. Coloca el ratón de nuevo en su jaula sobre una almohadilla térmica y monitorea hasta que despierte. Todos los ratones deben alojarse individualmente en jaulas separadas para evitar la contaminación cruzada.
  8. Proporciona pasta nutricional alta en calorías entre los pellets en el suelo de la jaula.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Inyección de cloruro de sodio al 0,9%Hospira2484457 
C57BL/6J ratones machosEl Laboratorio Jackson664 
Solución fisiológica tamponada con fosfato (PBS) 1xCorning21-040-CV 
Película transparente para prensar y sellarMe alegroN/D 
Jeringuilla de insulina Safetyglide, 1/2 mL, 30 G x 5/16 TWBD305934 
EscalaOhaus Scout ProSP202 
Suplemento Nutricional SuplicalHenry Schein Salud Animal29908 

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

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