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Artículo de método

Colonización intestinal e inducción de diarrea por Vibrio cholerae en peces cebra adultos

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26 de febrero de 2026

En este artículo

Resumen

Fuente: Nag, D., et.al. Cuantificación de la colonización y diarrea por Vibrio cholerae en el modelo de pez cebra adulto. J. Vis. Exp. (2018)

Este vídeo demuestra la inoculación de peces cebra adultos con una cepa patógena de Vibrio cholerae para estudiar la colonización intestinal y los resultados de enfermedades. Muestra cómo las toxinas bacterianas alteran la integridad intestinal, provocando fugas de líquido, secreción de moco y diarrea acuosa antes de que los peces estén preparados para un análisis posterior.

Protocolo

  1. Inoculación de pez cebra por inmersión
    NOTA: Este método de exposición se asemeja al curso natural de la infección.
    1. Preparación de Vibrio cholerae
      1. Inocular 5 mL de caldo de lisógeno (LB) con una colonia aislada de V. cholerae de una placa LB e incubarla a 37 °C con agitación (180 rpm) durante 6–8 horas (cultivo nocturno).
      2. Inocular 25 mL de medio LB fresco autoclavado en un matraz cónico de 250 mL con 50 μL del cultivo nocturno anterior. Incubarla durante 16–18 horas a 37 °C con agitación (150 rpm).
      3. Lee la densidad óptica a 600 nm (OD600) de una dilución 1/10 del cultivo nocturno para estimar el número de bacterias por mL (el OD600 = 1 es ~109 UFC/mL).
      4. Extrae las células por centrifugación a 6.000 g durante 10 minutos. Retira el material con una pipeta o viértelo en una solución desinfectante. Resuspende las células en PBS estéril hasta la concentración deseada, típicamente entre 1 x 107 a 1 x10 10 por ml de PBS.
        NOTA: Aquí, nos referimos al agua de ósmosis inversa autoclave que contiene 60 mg/L de sales marinas como agua de infección estéril.
    2. Inoculación e incubación
      1. Coloca cuatro o cinco peces cebra en un vaso de precipitados de 400 mL que contenga 200 mL de agua estéril de infección.
      2. Añade 1 mL de V. cholerae para obtener la concentración deseada de infección (normalmente 5 x 104 a 5 x 107 UFC/mL) en 200 mL de agua infectada.
      3. Cubrir el vaso con una tapa perforada para evitar que el pez salte; la parte superior de una caja de punta de 200 μL funciona bien para esto.
      4. Etiqueta cada vaso y colócalos en una incubadora de frente de cristal colocada a 28 °C durante la duración del experimento.
    3. Procedimiento para la exposición transitoria
      NOTA: Una exposición transitoria a V. cholerae (normalmente 6 horas) seguida de la eliminación de las bacterias inoculadoras es útil para estudiar la transmisión y para la cuantificación más precisa de las bacterias excretadas.
      1. Tras 6 horas de exposición, vierte el agua del vaso a través de una red para recoger los peces. Descarta el agua infectada en un recipiente de lejía para matar a V. cholerae.
      2. Coloca el pez retirado en un vaso de precipitados con 200 mL de agua estéril de infección. Deja que los peces naden en esta agua limpia durante 5 minutos para eliminar las bacterias superficiales.
      3. Repite el procedimiento con red y coloca el pez en un vaso nuevo con 200 mL de agua estéril para infección. Mantén el pez en este vaso durante todo el experimento.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Instrumento   
IncubadoraNUAIRE, Plymouth, MNFlujo automático 
Materiales   
Vasos de precipitados de vidrio de 400 mlPyrex  
Tapas perforadasPortapuntas con agujeros de la caja de puntas  
Sistema de acuarioAquaneering, San Diego, CA  
Purificador de agua de ósmosis inversaAqua FXTK001 
Red de pescaMarina  
Alimento para pecesAleta tetra  
Placa de PetriFisher Brand, Hampton, NHFB0875713 
Tubo centrífugo de 1,5 mlMidsci, Valley Park, MOAVSS1700 
Tubos de ensayoPyrex9820 
MicropipetasSartorius Biohit, Göttingen, AlemaniaM1000/M200/M20 
ConsejosGenesee Scientific, San Diego, CA24-150RS/24-412 
LB medium   
TriptónLicenciatura en Biociencias, San José, CA211705 
Extracto de levaduraLicenciatura en Biociencias, San José, CA212750 
NaClFisher Scientific, Hampton, NHBP358-212 
AgarLicenciatura en Biociencias, San José, CA214010 

Etiquetas

Modelo de pez cebratoxinas bacterianasfuga de líquidossecreción de mocodiarrea acuosaagua de infección estériltapa perforadaincubadora de frente de vidrio