Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Detección de sacaribacterias en cultivo binario mediante reacción en cadena de la polimerasa

154 visualizaciones

26 de febrero de 2026

En este artículo

Resumen

Fuente: Collins, A. J., et al., Estableciendo cultivos binarios estables de sacaribacterias simbióticas a partir de la cavidad oral. J. Vis. Exp. (2021)

Este vídeo demuestra el uso de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para detectar las Saccharibacterias en un cultivo binario con Actinomyces. El protocolo describe la amplificación del ADN y la electroforesis en gel para confirmar una interacción estable entre huésped y parásito.

Protocolo

  1. Confirmar la infección por Saccharibacteria mediante PCR
    1. Tras 5 pasajes, confirmar la infección con la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Cinco pasajes asegurarán que cualquier célula de Saccharibacteria no en crecimiento haya sido agotada más allá del límite de detección mediante 25 ciclos de PCR.
    2. Prepara una mezcla master PCR. Una receta sugerida es la siguiente: para cada tubo necesario, preparar 12,5 μL de 2x tampón PCR, 0,75 μL 10 μM cebador directo (580F12 - AYT GGG CGT AAA GAG TTG C), 0,75 μL 10 μM cebador inverso (1177R13- GAC CTG ACA TCA TCC CCT CCT TCC), 1 μL 25 mM MgCl2, y 9 μL de agua. Mezcla por vórtice.
    3. Alicuota de 24 μL de mezcla maestra en un tubo PCR de 0,2 mL. Añade 1 μL de cultivo infectado con Saccharibacteria a la reacción PCR. Coloque el tubo en un termociclador y realice el siguiente protocolo: desnaturalización inicial a 95 °C durante 5 minutos, 25 ciclos a 95 °C durante 30 s, 60 °C durante 30 s, 72 °C durante 30 s, elongación final a 72 °C durante 2 minutos y luego retención final a 4 °C.
    4. Carga y ejecuta los productos de PCR en un gel de agarosa al 1%. Una banda de ~600 bases indicará la presencia de Saccharibacteria.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AgaroseFisher ScientificBP160-100 
Caldo de infusión Brain Heart (polvo deshidratado)Becton-Dickinson211059U otro medio de cultivo adecuado para organismos objetivo
Fuente de alimentación por electroforesisBio-Rad1645052 
Equipo de electroforesisBio-Rad1704467 
GoTaq Green MastermixPromegaM7122 
Mastercycler Pro ThermocyclerEppendorf950040025O termociclador equivalente para PCR
Solución de MgCl₂ 25mMPromegaA3513 
Agua de grado en biología molecularFisher ScientificBP2819100 
Micropipeta P-1000GilsonF123601G 
Tubos PCR 0,2 mLFisher Scientific14-230-205 
Puntas de pipeta - 1000 μLFisher Scientific02-717-166 
Tinción en gel de ADN segura SYBRThermoFisher ScientificS33102 
Caldo de soja tríptico (polvo deshidratado)Becton-Dickinson211825U otro medio de cultivo adecuado para organismos objetivo

Etiquetas

Detección de Saccharibacteriahuésped Actinomycesamplificación de ADNelectroforesis en gelgel de agarosavisualización por UVcebadores para Saccharibacteriacondiciones del termociclador