Artículo de método

Producción de partículas similares a virus en E. coli modificada genéticamente

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30 de septiembre de 2026

En este artículo

Resumen

Fuente: Chen, Z., et al. Elaboración de partículas tipo virus PEGiladas fluorescentes inducidas por conjugación mediante química de dibromomaleimida-disulfuro. J. Vis. Exp. (2018)

Este video demuestra el método para la expresión controlada de la proteína de la cápside del bacteriófago Qβ en E. coli modificada genéticamente. Las proteínas resultantes se autoensamblan en partículas similares a virus, que se recolectan para bioconjugación posterior.

Protocolo

Expresión de Qβ

  1. Limpie el área de trabajo con una mezcla 1:1 de lejía/etanol.
  2. Prepare dos cultivos iniciadores de 3 mL en un ambiente aséptico añadiendo colonias individuales de E. coli BL21(DE3) a 3 mL de medio caldo óptimo superior (SOB) en un ambiente aséptico.
  3. Incube en agitador a 250 rpm en una habitación a 37 °C y 0 % de humedad relativa (rH) durante la noche.
  4. Inocule el cultivo iniciador en medio SOB:
    1. Retire ambos cultivos iniciadores de 3 mL del agitador y, en un ambiente aséptico, vierta cada cultivo en uno de dos matraces Erlenmeyer baffled de 2 L que contengan 1 L de medio SOB fresco cada uno.
    2. Coloque el medio inoculado en un agitador a 250 rpm en una habitación a 37 °C y 0 % de rH.
  5. Cultive las bacterias en agitador a 250 rpm en una habitación a 37 °C y 0 % de rH hasta que la DO600 alcance entre 0,9 y 1,0.
  6. Añada 1 mL de isopropil β-D-1-tiogalactopiranosido (IPTG) 1 M utilizando una pipeta P1000 para inducir la expresión proteica.
  7. Deje el medio en agitación a 250 rpm en una habitación a 37 °C y 0 % de rH durante la noche.
  8. Al día siguiente por la mañana, retire el medio del agitador y céntrelo usando botellas de 1000 mL a 20.621 × g durante 1 h a 4 °C para recolectar las células.
  9. Descarte el sobrenadante y recoja el botón celular.
    1. Vierta el sobrenadante en un matraz con aproximadamente 5 mL de lejía para matar las bacterias. Este material es desecho.
    2. Utilice una espátula para raspar el botón celular desde el fondo de la botella de centrífuga y coloque el botón en un tubo cónico de 50 mL.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Caldo LB (Miller)EMD Millipore1.10285.0500 
Triptona, polvoResearch Products InternationalT60060-1000.0 
Extracto de levadura, polvoResearch Products InternationalY20020-1000.0 
Sulfato de magnesio anhidroP212121CI-06808-1KG 
Cloruro de sodio (cristalino/Certificado ACS)Fisher ScientificS271-10 
Cloruro de potasioFisher ScientificBP366-500 
Sistema de purificación de agua Elga PURELAB Flex 3Fisher Scientific4474524 
Fosfato monobásico de potasioFisher ScientificBP362-1 
Fosfato dibásico de potasio anhidroFisher ScientificP288-500 
Isopropil β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG)Sigma AldrichI6758-1G 
Botellas centrífugas Nalgene con tapas, copolímero de polipropilenoThermo Scientific3141-0250 
Agitador orbital VWR Os-500VWR Scientifc Products14005-830 
Pipetaman P1000GilsonF123602 
Tubo cónico centrífugo Falcon de 50 mLFisher Scientific14-432-22 

Etiquetas

Bacteriófago Q BetaExpresión de la proteína de la cápsidePromotor T7Operador LacAutoensamblaje de proteínasInducción con IPTGPurificación del pellet celularCentrifugación