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Artículo de método

El aislamiento de la infiltración de leucocitos cerebro-

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DOI:

10.3791/2747

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13 de junio de 2011

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Un método rápido para obtener la infiltración de leucocitos en el cerebro murino se describe. Este método utiliza un gradiente de Percoll continua y discontinua gradiente de Ficoll para seleccionar y purificar la capa de leucocitos enriquecido. Leucocitos aislados se puede caracterizar por las mediciones de citometría de flujo.

Resumen

Se describe un método para la preparación de los leucocitos cerebro infiltrante (BILS) de los ratones. Demostramos cómo infectar a los ratones con el virus de la encefalomielitis murina de Theiler (TMEV) a través de una técnica de inyección rápida intracraneal y la manera de purificar a la población de leucocitos enriquecido de infiltración de las células de todo el cerebro. En pocas palabras, los ratones son anestesiados con isoflurano en una cámara cerrada y son a mano alzada inyecta con una jeringa Hamilton en la corteza frontal. Los ratones son sometidas a muerte en varias ocasiones después de la infección por sobredosis de isoflurano y el cerebro entero se extraen y se homogeneizaron en RPMI con un triturador de tejidos Tenbroeck. Cerebro homogeneizado se centrifuga a través de un gradiente de Percoll continua del 30% para eliminar los restos celulares de mielina y otros. La suspensión celular Luego, se cuela a 40 micras, lavado y centrifugado en forma discontinua Ficoll-Paque Plus gradiente para seleccionar y purificar los leucocitos. Los leucocitos se lavan y se volvieron a suspender en los tampones apropiados para determinar el inmunofenotipo por citometría de flujo. La citometría de flujo revela una población de células del sistema inmune innato en las primeras etapas de la infección en ratones C57BL / 6. A las 24 horas post-infección, varios subconjuntos de células inmunes están presentes en el BILS, con una población enriquecida de Gr1 +, CD11b + y F4/80 + células. Por lo tanto, este método es útil en la caracterización de la respuesta inmunitaria a una infección aguda en el cerebro.

Protocolo

1. Inyección de virus intracraneal:

La siguiente técnica ha sido modificada y utilizada ampliamente por nuestro laboratorio y sus colegas. En pocas palabras, la inyección intracraneana de la cepa de virus de Daniel murina de Theiler encefalomielitis (TMEV) o simulada-infección (1, 10) se lleva a cabo en ratones jóvenes (preferiblemente 5-6 semanas de edad) para obtener los leucocitos cerebro infiltrante (BILS). Tenga en cuenta que los resultados difieren entre la cepa de Daniel, la cepa Bean, y la cepa GDVII. Con el fin de la cosecha BILS, ratones reciben 2x10 5 PFU de TMEV y se infectan durante 24 horas.

  1. Coloque la ....

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Discusión

Nosotros usamos la citometría de flujo para determinar la calidad de la preparación de la infiltración de las células cerebrales, y para distinguir las diferentes poblaciones de células inmunes 2, 9. En agudo puntos de tiempo, nuestro método BILS rendimientos altos porcentajes de monocitos inflamatoria dentro de la población CD45hi, así como un alto porcentaje de los macrófagos en la población CD45lo. Esto indica que una respuesta inmune reproducibles dentro del cerebro con firmeza se puede caracterizar por n.......

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Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por la beca NS64571 del NINDS (CLH), por un premio de desarrollo de carrera a principios de la Clínica Mayo (CLH), y por un generoso regalo de Donald y Frances Herdrich (CLH). Nos gustaría agradecer a la Clínica Mayo de flujo básico Citometría de asistencia.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Reactivo Empresa Número de catálogo Comentarios
TMEV Howe laboratorio N / A
Cepa de Daniel Invitrogen 21063-029
isoflurano Novaplus NDC 0409-3292-49
de fondo redondo de roble tubos de centrífuga de canto Nalgene 3118-0030
RPMI 1640 Invitrogen 11875-093
Percoll GE Healthcare 17-0891-02
PBS 10 veces Roche 11666789001
Ficoll-Paque Plus GE Healthcare 17-1440-02
Azul de tripano al 0,4% (w / v) Mediatech 25 a 900-CI
15 ml tubos cónicos BD Falcon 352097
7 ml de vidrio Pyrex marca Tenbroeck triturador de tejidos Pescador 08 a 414-10B
40 m de células colador BD Falcon 352340
Cónico de 50 ml BD Falcon 352070
albúmina de suero bovino Sigma A9647
azida de sodio Sigma S8032
CMF-PBS Mediatech 21 a 040 CV
FACS tubos BD Falcon 352054
de suero fetal bovino Sigma F4135
2.4G2 hibridoma ATCC HB-197
Costar V-fondo de la placa Corning 3894
Allegra X-22R centrífuga o equivalente Beckman N / A
De 96 pozos balde plato y rotor Beckman S2096
Rotor de ángulo fijo Beckman F0360
paraformaldehído Sigma P6148
BD FACS Calibur BD Biosciences N / A
FlowJo 7.5 Árbol Star, Inc. N / A
CD45 BD Biosciences 557235 clon: 30-F11
Gr1 (Ly6C / G) BD Biosciences 553128 clon: RB6-8C5
CD11b ebiosciences 17-0112-83 clon: M1/70
F4/80 ebiosciences 17-4801-82 clon: BM8

Referencias

  1. Buenz, E. J., Howe, C. L. Picornaviruses and cell death. Trends Microbiol. 14, 28-36 (2006).
  2. Buenz, E. J., Limberg, P. J., Howe, C. L. A high-throughput 3-parameter flow cytometry-based cell death assay. Cytometry A. 71, 170-173 (2007).
  3. Deb, C., Lafrance-Corey, R. G., Zoecklein,....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Infección por TMEVgradiente de PercollFicoll-Paque Pluscitometría de flujoinyección intracranealhomogenización de tejidosenriquecimiento de leucocitosinmunofenotipadofiltrado celular