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Microscopía de fluorescencia de trampas extracelulares de neutrófilos o NETs: una técnica para observar la interacción adhesiva entre las células cancerosas y los NETs

30 de abril de 2023

En este artículo

Resumen

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Fuente: Kanamaru, R. et al. Las trampas extracelulares de neutrófilos generadas por neutrófilos de baja densidad obtenidos del líquido de lavado peritoneal median el crecimiento y la unión de las células tumorales. J. Vis. Exp. (2018)

Este video muestra la tinción fluorescente de trampas extracelulares (NETs) de neutrófilos, los componentes extracelulares del ADN expulsados por los neutrófilos. Esta técnica permite la visualización de la interacción adhesiva entre las células cancerosas y los NET.

Protocolo

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>1. Tinción de células tumorales con colorante enlazador de células fluorescentes rojas

  1. Prepare las líneas celulares de cáncer humano MKN45, NUGC y OCUM-1.
  2. Lavar 1 x 107 celdas con PBS + 0,02% EDTA en un tubo de 15 mL y centrifugar a 270 x g durante 7 min en RT.
  3. Añada 1 ml de solución para la tinción de tinte a los gránulos y pipetee suavemente.
  4. Disuelva 4 μL de colorante Cell Linker fluorescente rojo en 1 mL de solución para tinción y mezcle con la suspensión celular del paso 1.2.
  5. Incubar los pellets durante 4 min a RT.
  6. Agregue 4 mL de DMEM (10% FBS) para detener la reacción de tinción.
  7. Centrifugar 270 x g durante 7 min y desechar el sobrenadante.
  8. Repita los pasos 1.6 y 1.7 dos veces.
  9. Compruebe con un microscopio de fluorescencia (excitación = 551 nm, emisión = 567 nm) que las células tumorales estén teñidas de rojo.

>2. Análisis de la adhesión de las células tumorales a los TNE

  1. Cultivo de células de neutrófilos de baja densidad en una placa recubierta de poli-L-lisina de 6 pocillos (6 cm de diámetro) durante 2 h a 37 °C en CO2 al 5%, lo que permite la producción de trampas extracelulares de neutrófilos o NETs
  2. Transfiera las células tumorales teñidas con fluorescente rojo (1 x 106) en 1 mL de RPMI 1640 suplementado con BSA al 0,1%.
  3. Agregue las células tumorales al cultivo de LDN que produjo los NET.
  4. Incubar durante 5 min a 37 °C, lo que permite que las células tumorales entren en contacto con los NETs.
    nota: La incubación prolongada induce la adhesión de las células tumorales a la LDN o a las placas.
  5. Retire el medio y lave suavemente los pocillos agregando 2 mL de medio precalentado (0.1% BSA + RPMI 1640) y agitando el plato.
  6. Repita el procedimiento de lavado en el paso 2.5 dos veces.
    nota: Dado que los NET se adhieren débilmente a la placa, el lavado debe realizarse con la mayor suavidad posible para evitar la extracción de los propios NET.
  7. Añadir colorante verde fluorescente para teñir el núcleo y los cromosomas a una concentración final de 5 μg/mL para la visualización de los NETs.
  8. Observe los NET y las células tumorales adheridas utilizando los filtros apropiados (verde, excitación = 504 nm, emisión = 523 nm; rojo, excitación = 551 nm, emisión = 567 nm).
  9. Combine las figuras para mostrar las células tumorales que están atrapadas por los NETs.
    nota: En algunos experimentos, se añadió una enzima de degradación del ADN al cultivo de LDN (concentración final de 100 U/mL) 5 min antes de la co-incubación durante 5 min.

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tinción de ácido nucleico verde SYTOX solución de 5 mM en DMSO Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, EE. UU. S7020
PKH26 Kit de enlazador de células fluorescentes rojas para el etiquetado general de membranas celulares Sigma-Aldrich, San Luis, MO, EE. UU.P9691
RPMI1640 Medio Sigma-Aldrich, San Luis, MO, EE. UU.R8758
Polvo liofilizado de albúmina en suero bovino, ≥96% (electroforesis en gel de agarosa) Sigma-Aldrich, San Luis, MO, EE. UU. A2153
MICROPLACA RECUBIERTA de poli-L-lisina 6Well IWAKI, Japón 4810-040
Microscopio estereoscópico de fluoresceína BX8000, Keyence, Osaka, Japón BZ-X710
Línea celular de cáncer gástrico humano MKN45 Riken, Tukuba Japón N/A
Línea celular de cáncer gástrico humano NUGC-4 Riken, Tukuba Japón N/A
Línea celular de cáncer gástrico humano OCUM-1 Universidad de la Ciudad de Osaka, Japón N/A Regalo del Dr. M. Yashiro
DNasa I Worthington, Lakewood NJLS002138
Solución de 0,5 mol/l-EDTA (pH 8,0) Nacalai tesque, Japón 06894-14
Dulbecco's Modified Eagle Glucosa media-alta (DMEM) Sigma-Aldrich, San Luis, MO, EE. UU. D5796

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Etiquetas

Formaci n de NETadhesi n de c lulas cancerosasneutr filos de baja densidadtinci n fluorescenteinteracci n de c lulas tumoralesrecubrimiento de poli L lisinamedio RPMI 1640colorante impermeable a la membrana

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