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Inmunotinción con oro de secciones exosómicas: una técnica para visualizar marcadores de diagnóstico en la luz exosomal

30 de abril de 2023

En este artículo

Resumen

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Fuente: Jung, M. K., Mun, J. Y. Preparación de muestras e imágenes de exosomas mediante microscopía electrónica de transmisión. J. Vis. Exp. (2018)

En este video, demostramos la inmunotinción con oro de biomarcadores localizados dentro de la región lumínica de secciones exosomales ultrafinas. Esta técnica permite el diagnóstico precoz de enfermedades mediante la visualización de las moléculas diana dentro de los exosomas secretados por las células enfermas.

Protocolo

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>1. Inmunotinción de secciones de exosomas e imágenes

  1. Prepare secciones ultrafinas de 60 nm de un bloque de exosomas utilizando un ultramicrótomo y recójalas en una rejilla de níquel.
  2. Incubar las rejillas en gotas de 50 μL de glicina 0,02 M durante 10 min para apagar los grupos aldehídos libres.
  3. Enjuague con 100 μL de DW tres veces cada una durante 10 min. Incubar a temperatura ambiente durante 1 h en PBS que contenga 1% de BSA.
  4. Incubar las rejillas en 50-100 μL de gotas de anticuerpo anti-KRS (1:100 en PBS que contenga 0,1% de BSA) durante 1 h (si es necesario, este paso debe realizarse a 4 °C durante la noche).
  5. Lave las rejillas con cinco gotas separadas (50 μL) de PBS que contengan 0,1% de BSA durante 10 minutos cada una.
  6. Transfiera las rejillas a gotas de anticuerpo secundario durante 1 h (IgG anti-conejo conjugada con partícula de oro de 10 nm (1:100) en PBS que contiene 0,1% de BSA).
  7. Lave las rejillas con cinco gotas separadas (50 μL) de PBS que contengan 0.1% de BSA cada 10 min.
  8. Doble tinción con acetato de uranilo al 2% durante 20 min en condiciones de oscuridad y con citrato de plomo de Reynold durante 10 min, respectivamente.
  9. Observar las rejillas bajo microscopía electrónica de transmisión a 80 kV.
  10. Haga clic en "Adquirir" y luego haga clic en "Archivo" y "Guardar como" en el sistema de cámara CCD bajo el TEM a 80 kV. El tiempo de exposición siguió los ajustes automáticos.

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Acetato de uranilo ems 22400Producto químico peligroso
Citrato de plomo ems Año 17900
Microscopía electrónica de transmisión Hitachi H7600
Rejilla de cobre ems G200-CU
glicina sigma 022K5404
Tampón de fosfato salino sigma P4417
Albúmina sérica bovina Aurión 25557
Anticuerpo antihumano CD274 (B7-H1, PD-L1) purificadoBioLeyenda 329710Monte entero Immumogold
IgG2b de ratón purificada, κ Isotipo Ctrl BioLeyenda401202Montura entera Immumogold (Control)
2ª partícula de oro conjugada IgG anti-ratón de 9-11 nm sigma G7652
Paraformaldehido emsAño 19210

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Etiquetas

Exosome ImmunostainingGold Nanoparticle LabelingTransmission Electron MicroscopyExosome Section PreparationPrimary Antibody IncubationSecondary Antibody BindingGlycine QuenchingBlocking Buffer TreatmentUranyl Acetate StainingLead Citrate Contrast

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