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Fabricación de matriz extracelular a partir de un modelo de ratón: un procedimiento eficaz para preparar la matriz extracelular de la lengua descelularizada a partir de la lengua murina

30 de abril de 2023

En este artículo

Resumen

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Fuente: Yao, Y. et al. Fabricación de matriz extracelular de lengua y reconstitución de carcinoma de células escamosas de lengua in vitro. J. Vis. Exp. (2018)

Este video muestra la preparación de la matriz extracelular de la lengua murina mediante el uso del método de descelularización, que consiste en exponer la lengua extraída a una serie de tratamientos físicos, químicos y enzimáticos. El andamio TEM resultante conserva su composición de matriz extracelular nativa, eliminando los componentes celulares.

Protocolo

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Todos los procedimientos relacionados con animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

>1. Preparación de la matriz extracelular de la lengua (TEM)

  1. Ejecutar ratones por luxación cervical y extraer las lenguas con tijeras quirúrgicas estériles y pinzas.
  2. Sumerja las lenguas en etanol al 75% durante 3 minutos, luego coloque cada lengua en un tubo Eppendorf (EP) de 1,5 mL con 1 mL de solución tamponada de fosfato estéril (PBS) de 10 mM><. nota: La concentración de PBS en todos los pasos siguientes es la misma que la concentración en este paso.
  3. Lisis celular por congelación-descongelación: Congelar las lenguas en tubos electroelectromagnéticos a -80 °C durante 1 h y luego descongelar las lenguas a temperatura ambiente durante 45 min durante 3 ciclos.
  4. Cargue cada lengua en un trozo de sutura quirúrgica con una aguja quirúrgica y envuelva el extremo de la sutura con un pequeño trozo de papel de aluminio estéril. Realizar la operación en una placa de cultivo de 3,5 cm o 6 cm que contenga etanol al 75% en condiciones estériles.
    nota: La longitud adecuada de cada pieza de sutura quirúrgica es de unos 20 cm, y el tamaño adecuado de cada pieza de papel de aluminio es de aproximadamente 0,3cm2 (1 cm x 0,3 cm). La lengua debe cargarse cerca del papel de aluminio.
  5. Enjuague cada lengua con 3 mL de PBS estéril en una placa de cultivo de 3,5 cm o 6 cm durante 30 s. Realice esta operación en condiciones estériles.
  6. Lavar las lenguas con agua ultrapura: Añadir ampicilina en un frasco de boca ancha con 250 mL de agua ultrapura estéril hasta una concentración final de 90 μg/mL. Coloque las lenguas en la botella que contiene una barra para revolver. Apriete la tapa del frasco con parte de la sutura que quede fuera del frasco. Realice esta operación en condiciones estériles.
    nota: Se pueden poner hasta 5 lenguas en el mismo frasco teniendo en cuenta el enroscado de la sutura. El papel de aluminio se encuentra en el extremo de la sutura en el frasco para evitar que la lengua se deslice. Las lengüetas deben colocarse a 2 cm de altura desde el fondo del frasco ajustando la longitud de la sutura que queda dentro del frasco. Esta nota también es para los pasos 1.8, 1.10, 1.12 y 1.16.
  7. Coloque la botella en un agitador magnético durante 12 h.
  8. Lavar las lenguas con NaCl: Añadir ampicilina en un frasco de boca ancha con 250 mL de NaCl estéril 1 M hasta una concentración final de 90 μg/mL. Mueva las lenguas y la barra para remover dentro de la botella. Apriete la tapa del frasco con parte de la sutura que quede fuera del frasco. Realice esta operación en condiciones estériles.
  9. Coloque la botella en un agitador magnético durante 24 h.
  10. Lisis celular por Triton X-100: Agregue ampicilina a una concentración final de 90 μg/mL en un frasco de boca ancha con 250 mL de Triton X-100 estéril al 2% en PBS. Mueva las lenguas y la barra para remover dentro de la botella. Apriete la tapa del frasco con parte de la sutura que quede fuera del frasco. Realice esta operación en condiciones estériles.
  11. Coloque la botella en un agitador magnético durante 48 h.
  12. Lavar la lengua con CaCl2/MgCl2: Añadir ampicilina en un frasco de boca ancha con 250 mL de CaCl2/MgCl2 estéril de 5 mM hasta una concentración final de 90 μg/mL. Mueva las lenguas y la barra para remover dentro de la botella. Apriete la tapa del frasco con parte de la sutura que quede fuera del frasco. Realice esta operación en condiciones estériles.
  13. Coloque la botella en un agitador magnético durante 24 h.
  14. Digestión por DNasa: Agregue 1 mL de solución salina equilibrada de Hank (HBSS) a cada tubo EP. Añadir DNasa en HBSS respectivamente hasta una concentración final de 300 μM. Mover cada lengua dentro de cada tubo EP, con parte de la sutura fuera del tubo. Realice esta operación en condiciones estériles.
    nota: Asegúrese de que la parte de la sutura que permanece dentro de los frascos en los pasos anteriores también permanezca dentro del tubo EP en este paso, y asegúrese de que la parte de la sutura que permanece fuera de los frascos en los pasos anteriores también permanezca fuera del tubo EP en este paso.
  15. Incubar las lenguas en tubos electromagnéticos a 37 °C durante 24 h.
  16. Lavar las lenguas con PBS: Añadir ampicilina en un frasco de boca ancha con 250 mL de PBS estéril hasta una concentración final de 90 μg/mL. Mueva las lenguas y la barra para remover dentro de la botella. Apriete la tapa del frasco con parte de la sutura que quede fuera del frasco. Realice esta operación en condiciones estériles.
  17. Coloque la botella en un agitador magnético durante 24 h.
  18. Guarde el TEM preparado en PBS estéril a 4 °C hasta su uso.

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Ratones C57-BL/6JCentro de Animales de Laboratorio de la Universidad Sun Yat-sen
etanolFábrica de reactivos químicos de Guangzhou HB15-GR-2.5L
cloruro de sodioSangon BiotechA501218
Fosfato de sodio dibásico Fábrica de reactivos químicos de Guangzhou BE14-GR-500G
Fosfato de potasio monobásico Sangon Biotech A501211
Tubo EP de 1,5 mlAxygen MCT-150-A
Congelador de temperatura ultrabaja Thermo Fisher Scientific
Placa de cultivo celular de 3,5 cm Thermo Fisher Scientific 153066
Plato de cultivo celular de 6 cm Greiner 628160
Tritón X-100 Sigma-Aldrich V900502
Cloruro de calcio Sigma-Aldrich 746495
Cloruro de magnesio Sigma-Aldrich 449164
DNasa Sigma-Aldrich D5025
ampicilina Sigma-Aldrich A9393
Sutura quirúrgica Shanghái Jinhuan
Frasco de boca ancha de 250 ml SHUNIU Año 1407
Agitador magnético COMO UNO SOLO 1-4602-32
Incubadora de dióxido de carbono LABORATORIO DE SHEL SCO5A
Purificador de agua Elga
Hepes ácido libre BBI A600264
4 °C nevera Haier

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

M todo de descelularizaci nlengua de rat nciclos de congelaci n y descongelaci ntratamiento con Triton X 100tratamiento con nucleasassoluci n de ampicilinaalmacenamiento en PBS est rilprotocolo de lisis tisularpreparaci n del andamio de ECM

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