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Todos los procedimientos que involucran participantes humanos se han realizado de conformidad con las directrices institucionales, nacionales e internacionales para el bienestar humano y han sido revisados por la junta de revisión institucional local.
1. Purificación de ADNcf circulante a partir de 1 mL de plasma
NOTA: Este paso se realiza con un kit comercial (ver Tabla de Materiales). Todos los tampones se proporcionan con el kit.
- Preparación de tampones y reactivos
cautela: No agregue soluciones ácidas o lejía directamente a los desechos de preparación de muestras. Las sales de guanidina presentes en el tampón de lisis, el tampón de unión y el tampón de lavado-1 cuando se combinan con lejía o ácidos pueden producir compuestos altamente reactivos.
- Tampón aglutinante: Mezcle 300 mL de concentrado tampón aglutinante con 200 mL de isopropanol al 100% para hacer 500 mL de tampón aglutinante de trabajo. Almacenar a temperatura ambiente.
nota: El tampón de unión permite la unión óptima de los ácidos nucleicos circulantes a la membrana de sílice. 500 mL del tampón de unión son suficientes para procesar 276, 138, 92, 69 o 55 muestras de 1, 2, 3, 4 o 5 mL de plasma, respectivamente, y son estables durante 1 año a temperatura ambiente.
- Tampón de lavado-1: Mezcle 19 mL de concentrado de tampón de lavado-1 con 25 mL de etanol al 96-100% para hacer 44 mL de tampón de lavado-1 en funcionamiento. Almacenar a temperatura ambiente.
nota: Wash Buffer-1 elimina los contaminantes unidos a la membrana de sílice. 44 mL de tampón de lavado-1 de trabajo son suficientes para procesar 73 muestras de 1/2/3/4/5 mL de plasma y son estables durante 1 año a temperatura ambiente.
- Tampón de lavado-2: Mezcle bien 13 mL de concentrado de tampón de lavado-2 con 30 mL de etanol al 96-100% para producir 43 mL de tampón de lavado-2 en funcionamiento. Almacenar a temperatura ambiente.
nota: Wash Buffer-2 elimina los contaminantes unidos a la membrana de sílice. 43 mL de tampón de lavado-2 en funcionamiento son suficientes para procesar ~56 muestras de 1/2/3/4/5 mL de plasma y son estables durante 1 año a temperatura ambiente.
- A un tubo que contenga 310 μg de ARN portador liofilizado, agregue 1.550 μL de tampón de elución, para preparar una solución de ARN portador de 0,2 μg/μL. Después de disolver completamente el ARN portador, divida la solución en alícuotas adecuadas y almacene entre -30 °C y -15 °C. No congele y descongele estas alícuotas más de 3 veces. Al tampón de lisis, como se muestra en la Tabla 1, agregue el ARN portador reconstituido disuelto en el tampón de elución.
nota: Debido a que el ARN portador no se disuelve directamente en el tampón de lisis, primero debe disolverse en un tampón de elución y luego en un tampón de lisis. En primer lugar, la unión de la membrana de sílice a los ácidos nucleicos mejora cuando hay muy pocas moléculas objetivo presentes en la muestra. En segundo lugar, el riesgo de degradación del ARN se reduce debido a la presencia de grandes cantidades de ARN portador.
- Antes de comenzar el aislamiento, lleve las columnas y las muestras a temperatura ambiente y ajuste los volúmenes de muestra a 1 ml con solución salina estéril tamponada con fosfato (PBS), si es necesario. Precaliente 2 baños de agua o bloques calefactores que contengan tubos de centrífuga de 50 ml y tubos de recolección de 2 ml a 60 °C y 56 °C, respectivamente.
- A un tubo de centrífuga de 50 mL, agregue 100 μL de proteinasa K, 1 mL de plasma y 0,8 mL de tampón de lisis que contenga 1,0 μg de ARN portador (preparado en el paso 1.1.4). Cierre el tubo de centrífuga con una tapa y mezcle el contenido mediante vórtice de pulso durante 30 s, asegurándose de un vórtice visible en el tubo. La mezcla completa del contenido es importante para una lisis eficiente.
nota: Inmediatamente después del vórtice, continúe con el paso 1.4, sin demora.
- Incubar la solución a 60 °C durante 30 min.
- Retire el tapón, añada 1,8 ml del tampón aglutinante al tubo y mezcle bien con el vórtice de pulsos durante 15-30 s después de colocar el tapón.
- Incubar la mezcla resultante durante 5 minutos en hielo e insertar la columna de membrana de sílice en el aparato de vacío que está conectado a la bomba de vacío. A continuación, inserte firmemente un extensor de tubo de 20 ml en la columna abierta para evitar fugas de muestra.
- Vierta con cuidado la mezcla incubada en el extensor de tubos de la columna y encienda la bomba de vacío. Después de que toda la mezcla de lisado pase completamente a través de las columnas, apague la bomba de vacío, libere la presión a 0 mbar y retire y deseche el extensor de tubo.
nota: Para evitar la contaminación cruzada, el extensor de tubo debe desecharse con cuidado para evitar que se extienda por las columnas adyacentes.
- Retire la columna del aparato de vacío, insértela en el tubo de recolección y centrifugue a 11.000 x g durante 30 s a temperatura ambiente, para eliminar cualquier lisado residual. Deseche el flujo continuo.
- Añadir 600 μL de tampón de lavado-1 en la columna, centrifugar a 11.000 x g durante 1 min a temperatura ambiente, desechar el flujo.
- Añada 750 μL de tampón de lavado-2 a la columna, centrifugue a 11.000 x g durante 1 min a temperatura ambiente y deseche el flujo.
- Agregue 750 μL de etanol (96-100%) a la columna, centrifugue a 11.000 x g durante 1 minuto a temperatura ambiente y deseche el flujo.
- Centrifugar la columna a 20.000 x g durante 3 min, colocándola en un tubo de recolección limpio de 2 mL.
- Seque completamente el conjunto de la columna de membrana colocándolo en un nuevo tubo de recolección de 2 ml con la tapa abierta e incubando a 56 °C durante 10 minutos.
- Coloque la columna en un tubo de elución limpio de 1,5 mL. En el centro de la membrana de la columna, aplique 20-150 μL de tampón de elución e incube a temperatura ambiente durante 3 min con la tapa cerrada.
nota: Asegúrese de que el tampón de elución esté equilibrado a temperatura ambiente. En caso de utilizar un tampón de elución inferior a 50 μL, asegúrese de que se dispense con cuidado en el centro de la membrana. Esto ayuda a la elución completa del ADN unido. Sin embargo, el volumen de elución no es fijo y se puede cambiar según las aplicaciones posteriores. El eluido recuperado puede ser de hasta 5 μL y ciertamente menor que el volumen de elución aplicado a la columna.
- Centrifugar el eluido recuperado en una microcentrífuga a 20.000 x g durante 1 min para eluir los ácidos nucleicos y almacenar a -20 °C.
| Número de muestra | Tampón de lisis (mL) | ARN portador en tampón de elución (μL) |
| 1 | 0.9 | 5.6 |
| número arábigo | 1.8 | Artículo 11.3 |
| 3 | 2.6 | Artículo 16.9 |
| 4 | 3.5 | 22.5 |
| 5 | 4.4 | Artículo 28.1 |
| 6 | 5.3 | Artículo 33.8 |
| 7 | 6.2 | Artículo 39.4 |
| 8 | 7 | 45 |
| 9 | 7.9 | Artículo 50.6 |
| 10 | 8.8 | Artículo 56.3 |
| 11 | 9.7 | 61.9 |
| 12 | 10.6 | 67.5 |
| 13 | Artículo 11.4 | Artículo 73.1 |
| 14 | Artículo 12.3 | 78.8 |
| 15 | Artículo 13.2 | Artículo 84.4 |
| 16 | Artículo 14.1 | 90 |
| 17 | 15 | Artículo 95.6 |
| 18 | Artículo 15.8 | Artículo 101.3 |
| 19 | Artículo 16.7 | Artículo 106.9 |
| 20 | Artículo 17.6 | Artículo 112.5 |
| 21 | 18.5 | Artículo 118.1 |
| 22 | Artículo 19.4 | Artículo 123.8 |
| 23 | Artículo 20.2 | Artículo 129.4 |
| 24 | Artículo 21.1 | 135 |
Tabla 1. Volúmenes de tampón de lisis y ARN portador (disuelto en tampón de elución) necesarios para procesar muestras de plasma de 1 mL.