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Artículo de método

Trasplante ortotópico a largo plazo de células tumorales en embriones de pez cebra: un método eficiente para administrar células tumorales en el cuarto ventrículo de embriones de pez cebra para el análisis a largo plazo del comportamiento de las células tumorales

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Casey, M. J. et al. Trasplante de tumores cerebrales pediátricos de pez cebra en huéspedes inmunocompetentes para el estudio a largo plazo del comportamiento de las células tumorales y la respuesta a medicamentos.J. Vis. Exp. (2017)

Este video muestra el trasplante ortotópico de células tumorales cerebrales de pez cebra en el cuarto ventrículo de un embrión de pez cebra inmunocompetente. Este procedimiento permite el estudio a largo plazo de la invasión y el comportamiento de las células tumorales.

Protocolo

Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Inyectar la suspensión tumoral en el cuarto ventrículo de un embrión de 2-dpf

  1. Transfiera de 10 a 20 embriones decorionados anestesiados a la periferia de la placa de inyección utilizando una pipeta de transferencia; los embriones deben caer lateralmente sobre la placa de inyección, con los ventrículos claramente visibles y accesibles. Use una sonda en ángulo para ajustar los embriones según sea necesario y colóquelos lejos del borde exterior de la placa de inyección.
  2. Cargue 1–2 μL de la suspensión de células tumorales en la aguja de inyección utilizando puntas de pipeta de carga de gel e inserte la aguja en el manipulador.
  3. Baje manualmente el manipulador, sosteniendo la aguja en un ángulo de 45°. Ajuste las perillas del micromanipulador en las direcciones x, y y z hasta que la aguja esté justo por encima y aproximadamente 5 mm a la derecha de la cabeza del embrión. Mire a través de los oculares del microscopio estereoscópico y ajuste lentamente el micromanipulador en la dirección x hasta que la aguja perfore el cuarto ventrículo del embrión. No permita que la aguja perfore el corazón o la yema.
    1. Presione el pedal conectado al microinyector para inyectar la suspensión de células tumorales.
      nota: La presión y el tiempo de inyección variarán según el tamaño del orificio de la aguja, pero un buen punto de partida es de 5 a 10 PSI y de 50 a 100 ms. El volumen de las células tumorales inyectadas se puede evaluar con técnicas estándar de gotas de aceite a través de la inyección en aceite mineral, si se desea. Las inyecciones de 500 pL con un diámetro de gota de 0,1 mm suelen dar los mejores resultados.
  4. Enjuague suavemente los embriones inyectados de la placa de inyección y colóquelos en una placa de Petri con agua de huevo fresca (0,6 g/L de sal de acuario en agua de ósmosis inversa + 0,01 mg/L de azul de metileno). Mantenga los embriones en agua de huevo para los procedimientos restantes o hasta que crezcan en tanques.
  5. Inspeccionar los embriones inyectados bajo un microscopio estereoscópico de fluorescencia. Confirmar que la presión de inyección, el ángulo, el tamaño de la aguja y la viscosidad de la suspensión celular dan como resultado que las células tumorales llenen el 25-50% del espacio del ventrículo. Ajuste estos parámetros según sea necesario.
  6. Repita los pasos 1.1 a 1.5 para los embriones restantes. Anestesiar los embriones adicionales según sea necesario.
    nota: Una usuaria experimentada puede inyectar hasta 300 embriones en 3-4 h.
  7. Vuelva a colocar los embriones en la incubadora a 28 °C durante la noche.
  8. Al día siguiente, evalúe la supervivencia del embrión examinando las características morfológicas y fisiológicas, como el desarrollo normal del corazón y el cerebro, como se describe.

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Agua de huevoEn casaMantenimiento de embriones, fabricación de placa de inyección
placa de PetriTermo FisherFB0875711Z Alojamiento de embriones, fabricación de placa de inyección
Envase de vidrioCualquier marca comercialFabricación de placa de inyección
MicropipetasCualquier marca comercialResuspensión y trasplante de tumores
Sonda en ánguloHerramientas de Bellas Ciencias10140-02Manipulación embrionaria
Pipeta de transferenciaCualquier marca comercialManipulación embrionaria
Microscopio estereoscópicoOlimpoSZ61Trasplante de tumores
Microscopio estereoscópico fluorescenteOlimpoSZX16Diagnóstico por imágenes de trasplantes de tumores
Cámara microscópicaOlimpoDP-72Diagnóstico por imágenes de trasplantes de tumores
incubadoraCualquier marca comercialMantenimiento de embriones, calentamiento de la placa de inyección
N2Cualquier marca comercialPara la configuración del microinyector
Capilar de vidrio (sin filamento)Instrumentos de precisión mundialTW120-4Trasplante de tumores
Tirador de agujasInstrumentos SutterP-97Trasplante de tumores
Puntas de microcargadorEppendorf930001007Trasplante de tumores
MicroinyectorAparato de HarvardPLI-90Trasplante de tumores
Tricaína-S (MS-222)Química OccidentalTRS1Trasplante de tumor, anestésico
agarosa Denville CA3510-8Fabricación de placa de inyección
microonda Cualquier marca comercial Fabricación de placa de inyección
escamaCualquier marca comercial Fabricación de placa de inyección
GuantesCualquier marca comercial Todos los aspectos del protocolo
Pronase Roche Diagnostics 11459643001Embriones decorionados
cuchilla Termo FisherAño 12640Preparación de la aguja
Vaso de precipitados de 50 ml (2 pulgadas de diámetro) Cualquier marca comercial Fabricación de placa de inyección
Envase de vidrio Cualquier marca comercial Fabricación de placa de inyección
Azul de metileno Sigma-AldrichM9140Añádalo al agua de huevo para prevenir el crecimiento de hongos

Etiquetas

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