Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.
>1. Precondicionamiento hipóxico de las NSCs humanas (Figura 1A)
- NSCs cultivadas en placa en matraces de cultivo T75 hasta alcanzar el 90% de confluencia.
- Coloque los matraces de cultivo celular dentro de una cámara/incubadora de CO2 humidificada con niveles de 1% deO2 mantenidos durante 24 h, a través de un suministro de gas N2 controlado por un medidor de flujo automatizado incorporado. Estas células se denominan NSC H. Las NSC Nde control se generan como:
- Mantener las NSC humanas (clones HB1.F3.CD) en medio DMEM con un 10% de FBS y un 1% de penicilina-estreptomicina en una incubadora humidificada a 37 °C con un 95% de aire ambiente y un 5% de CO2.
>2. Carga de NSCs humanas con virus oncolíticos (Figura 1B-1H)
- Infecte NNSCs, HNSCs con 50 partículas virales de adenovirus replicativo condicional (CRAd)-S-pk7/célula.
- Después de 2 h de incubación a temperatura ambiente con golpecitos periódicos, lavar las células tres veces con medios para eliminar las partículas virales no unidas y suspender las células en solución salina estéril para inyección><.
cautela: Llevar a cabo todos los procedimientos de cultivo celular in vitro relacionados con virus en instalaciones con la designación de nivel de bioseguridad adecuada, como BSL2. Los investigadores que manipulan el virus oncolítico deben usar el equipo de protección personal adecuado según las pautas de los establecimientos institucionales de animales.
>3. Administración intranasal de NSCs terapéuticas (Figuras 1D y Figura 2D)
- Cultivo y recolección de NSCs (NNSCs, HNSCs).
- Anestesiar ratones mediante inyección i.p. de una mezcla de ketamina y xilacina de acuerdo con el procedimiento:
- Anestesiar al animal en función del peso corporal utilizando los reactivos aprobados, es decir, mediante una inyección intraperitoneal (i.p.) de una mezcla de ketamina (50-100 mg/kg; consulte a la IACUC institucional para conocer el rango de dosis aprobado) y xilacina (5-10 mg/kg; consulte a la IACUC institucional para conocer el rango de dosis aprobado) en solución salina estéril de 200-250 μL, o mediante anestesia con isoflurano al 4-5% con un dispositivo inhalatorio.
- Coloque los ratones en una cortina limpia boca arriba con una almohadilla térmica debajo para mantener la temperatura corporal. Ajuste una almohada acolchada hecha de toallas de papel enrolladas con cintas adhesivas para asegurar el ángulo vertical de las fosas nasales cuando se coloque debajo de la cabeza del ratón.
- Con una micropipeta, dispense 2 μL de suspensión de NSC en cada fosa nasal del ratón. Confirme visualmente la aspiración de la gota antes de pasar al siguiente ratón. El número total de celdas entregadas puede ser determinado por el usuario; utilizar entre 62.500 y 125.000 células/μL, de modo que se puedan administrar entre 0,5 y 1 millón de células en dosis de 4 x 2 μL.
- Utilice un temporizador para asegurar intervalos de 5 minutos entre cada administración de suspensión celular, hasta 4 veces.
- Permita que los animales recuperen la movilidad en una cámara de recuperación, manteniendo la posición supina en todo momento.