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Artículo de método

Ensayo de contacto de larvas: un procedimiento para evaluar la mortalidad de larvas de mosquitos después del contacto directo con el compuesto larvicida de prueba

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Brito-Sierra, C. A., et al. Protocolos para probar la toxicidad de nuevos productos químicos insecticidas para los mosquitos J. Vis. Exp. (2019)

En este video, describimos el ensayo de contacto larvario para evaluar la toxicidad del antagonista del receptor de dopamina, amitriptilina, en las larvas de mosquitos en etapa de tercer estadio, vectores conocidos de varias enfermedades infecciosas humanas. La evaluación de la mortalidad larvaria tras la incubación con diferentes concentraciones de amitriptilina en diferentes intervalos de tiempo ayuda a determinar su concentración letal 50.

Protocolo

1. Ensayo de contacto larvario (dosis puntual única o ensayo de dosis-respuesta)

>NOTA: El ensayo se puede realizar con productos químicos que sean solubles en agua o dimetilsulfóxido (DMSO), siempre que la concentración final de DMSO en los pozos de prueba no supere el 1%. Los disolventes alternativos pueden ser una opción, pero es esencial confirmar primero que la concentración final no causa más del 10% de mortalidad a las 72 h después de la exposición. El ensayo puede realizarse como un ensayo de dosis de un solo punto o de dosis-respuesta. Si se realiza esto último, se recomienda probar un rango de concentraciones (mínimo de cinco), que abarquen el LC50 esperado.

  1. Etiquete los pocillos de una placa de tejido transparente de 24 pocillos.
  2. Prepare una solución madre de la química de prueba en un tubo de 1,5 ml.
    1. Pesar cada producto químico utilizando una balanza analítica y, en función de las características de solubilidad, volver a suspenderlo en ddH2O, DMSO estéril u otro disolvente orgánico adecuado de su elección.
      nota: Los cálculos deben tener en cuenta la pureza de la química. Por ejemplo, para una química con una pureza del 99 %, disuelva 10,1 mg en 1.000 μL de acetona para obtener una solución al 1 %. Sellar con film de parafina y conservar a -20 °C.
  3. Determine la concentración final de la sustancia química de prueba que se evaluará y prepare diluciones en serie a partir de la solución madre en consecuencia, utilizando el disolvente adecuado.
    nota: La concentración y el volumen de la química y el solvente se pueden calcular utilizando la fórmula C1 * V1 = C2 * V2 donde C1 = concentración de la muestra 1, C2 = concentración de la muestra 2, V1 = volumen de la muestra 1 y V2 = volumen de la muestra 2.
    1. Prepare una solución madre de 10 mM y diluciones en serie según sea necesario para obtener las concentraciones de prueba deseadas (Tabla 1B).
  4. Con una pipeta de transferencia de plástico de diámetro ancho, transfiera cinco larvas L3 al pocillo de una placa de prueba de cultivo de tejidos; Las larvas L3 se pueden reconocer por la longitud (~ 2,5 - 3,5 mm) y el ancho de la cápsula de la cabeza de ~ 0,025 mm. Retire suavemente el agua con una pipeta de 1 mL y reemplácela con el volumen deseado de ddH2O. Repita para obtener n = 4 réplicas técnicas por tratamiento (es decir, 20 larvas en total por tratamiento).
  5. Agregue el volumen apropiado de química de prueba a cada uno de los cuatro pocillos replicados en la placa de prueba de 24 pocillos y agite suavemente la placa para asegurar una mezcla uniforme de la química. Coloque la placa en una cámara de prueba o de crecimiento en condiciones constantes (por ejemplo, se recomiendan 25 °C y ~ 75-85% de HR, y un ciclo de 12 h de luz/12 h de oscuridad si es posible)
    nota: Para la reproducibilidad entre experimentos, asegúrese de que los ensayos posteriores se realicen en las mismas condiciones ambientales.
  6. Registre el número de larvas muertas/que no responden en cada pozo a los 30 min, 1, 1.5, 2, 3, 24, 48 y 72 h después de la exposición (o puntos de tiempo alternativos) en la hoja de puntuación (Tabla 2). Golpee suavemente el costado del plato. Si no se observa ningún movimiento, toque suavemente la larva con un palillo estéril. Marque las larvas que no responden al golpecito/tacto como "muertas".
    nota: Se pueden observar y registrar otros fenotipos morfológicos y conductuales.
  7. Corrija la mortalidad de control utilizando la fórmula de Abbott modificada si lo desea, de la siguiente manera:
    Mortalidad (%) = (X-Y) *100/(100-Y),
    donde X = el porcentaje de mortalidad en la muestra tratada, e Y = el porcentaje de mortalidad en el control.
  8. Grafice los resultados como un histograma o una curva logarítmica utilizando el software de su elección, como Graph-pad Prism 6 o similar, y calcule los valores de concentración letal (LC) en relación con el control.
  9. Repita el ensayo utilizando un lote separado de mosquitos para obtener n = 3 o más réplicas biológicas.

Tabla 1. Ejemplos de cálculos para el ensayo de dosis de punto único (A) para larvas L3 de Aedes aegypti y (B) con dosis-respuesta.

A. Ensayos de dosis de un solo punto con tres químicas
químicaConcentración (400 uM)
Amitriptilina80 mM Stock: 2 mg de amitriptilina X 98% (pureza del polvo) X 0,001 g/1 mg X 1 mol /313,86 g X 1 L/0,08 mol X 106 μL/L = 78,06 μL de agua.
Diluciones en serie: Diluir el stock 1:2 con ddH2O y luego 1:4 para lograr 10 mM. Agregue 40 μL de caldo de 10 mM al pocillo que contiene 960 μL de ddH20 para lograr una concentración final de 400 μM/pocillo. Prepare diluciones en serie de 10 mM de material 1:2 para lograr stocks de 5 mM, 2,5 mM, 1,25 mM y 0,625 mM.
Cis-(z)-flupenthixol80 mM Stock: 2 mg de cis(z)flupenthixol X 98% (pureza del polvo) X 0,001 g/1 mg X 1 mol/507,44 g cis(z)flupenthixol X 1L/0,08 mol X 106 μL/L = 48,28 μL de agua.
Diluciones en serie: Como en el caso anterior.
Amitraz80 mM Stock: 2 mg de Amitraz X 0,001 g/1 mg X 1 mol/293,4 g de amitraz X 1 L/0,08 mol X 106 μL/1 L = 85,21 μL de DMSO (nota: Amitraz solo es soluble en DMSO).
Diluciones en serie: Como en el caso anterior.
B. Ensayo dosis-respuesta
QuímicaDosis 1Dosis 2Dosis 3Dosis 4Dosis 5
400 μM200 μM100 μM50 μM25 μM
p. ej., Amitriptilina, cis-(Z)-flupenthixol oramitraz40 μL40 μL40 μL40 μL40 μL
Stock de 10 mMStock de 5 mMStock de 2,5 mMStock de 1,25 mMStock de 0,625 mM

Tabla 2. Ejemplo de hoja de puntuación utilizada para registrar los datos del ensayo de dosis-respuesta de larvas de mosquitos. Control, solo agua o agua con 1% de DMSO u otro solvente solamente. Las dosis típicas utilizadas para probar productos químicos antagonistas de moléculas pequeñas, como la amitriptilina, son 25 μM, 50 μM, 100 μM, 200 μM y 400 μM.

Ensayo de larvas L3 para mosquitos
Fecha de inicio:
Investigador:
Especie/Cepa:
Tipo de ensayo: Dosis/respuesta dosis de un solo punto
  1. Mortalidad (Nº de mosquitos muertos)
Tiempo (horas)Dosis 1Dosis 2Dosis 3Dosis 4Dosis 5control
0.5
1
1.5
número arábigo
2.5
3
12
24
48
72
  1. Porcentaje de mortalidad
Tiempo (horas)Dosis 1Dosis 2Dosis 3Dosis 4Dosis 5control
0.5
1
1.5
número arábigo
2.5
3
12
24
48
72

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Cepas de mosquitos susceptibles a insecticidasRepositorio de referencia de investigación y reactivos contra la malariahttps://www.beiresources.org/MR4Home.aspx; Recomendado
cepas: Cepa Aedes aegypti Liverpool (LVP), Anopheles gambiae
Cepa Kisumu (KISUMU1) y cepa Culex quinquefasciatus Johannesburgo (JHB)
acetonaMallinckrodt QuímicoCAS 67-64-1Uso para diluciones y control
AmitrazSigma-AldrichCAS 33089-61-1Requiere dilución en DMSO
AmitriptilinaSigma-AldrichCAS: 549-18-8Se puede diluir en acetona
Cis-(Z)-flupenthixolSigma-AldrichCAS: 51529-01-2Probado farmacológicamente como disruptor de receptores tipo dop
Dimetilsulfóxido (DMSO) Sigma-AldrichMKBF2985Disolvente orgánico utilizado para disolver amitraz
Placa de cultivo celular de 24 pocillos con tapaCorning Incorporado3526
Pipetas de transferenciaFisher Científico13-711-7MSe utiliza para clasificar las larvas
Microscopio estereoscópicoOlimpoSZ6045Se utiliza para evaluar ensayos de larvas y realizar microaplicaciones

Etiquetas

Pruebas de compuestos larvicidastoxicidad de la amitriptilinalarvas de tercer estadioplaca de pocillos múltiplesdilución seriadaincubación en cámara de crecimientocalificación del movimiento larvarioconcentración letal 50