Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Ensayo de control de la acidificación intestinal: una técnica para estudiar la acidificación de la luz intestinal en Drosophila utilizando colorante azul de bromofenol

1.4K visualizaciones

⸱

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Abu, F., et al. Monitorización de la acidificación intestinal en el intestino adulto de Drosophila. J. Vis. Exp. (2021).

Este video muestra un ensayo para monitorear la acidificación intestinal en moscas Drosophila. Después de la ingestión de alimentos complementados con un tinte indicador de pH, la acidificación de la luz intestinal da como resultado un cambio en el color del tinte. La inspección visual del tracto digestivo de las moscas para examinar el cambio de color proporciona evidencia de acidificación.

Protocolo

NOTA: Se utilizó la línea de laboratorio estándar Oregon R como control de WT. Todas las moscas se criaron en un medio estándar de harina de maíz y melaza (que contenía melaza, agar, levadura, harina de maíz, tegosept, ácido propiónico y agua) a temperatura ambiente con un ritmo circadiano claro/oscuro de 12/12 h.

1. Preparación para el ensayo

  1. Recoja moscas hembra (de 0 a 2 días de edad, no vírgenes) bajo anestesia con CO2 y permita que se recuperen con alimento estándar de harina de maíz durante al menos 3 días antes de los experimentos.
  2. Privar a las moscas de la cama durante ~24 h a temperatura ambiente (~23 °C) en viales que contengan un pañuelo de laboratorio empapado con ~2 mL de agua desionizada.
  3. Prepare el alimento para moscas con azul de bromofenol (BPB) de la siguiente manera:
    1. Derrite la comida para moscas en un microondas y luego déjala enfriar hasta que esté tibia.
    2. Agregue 1 mL de BPB al 4% a 1 mL de alimento tibio y mezcle bien.
    3. Con una pipeta, agregue el alimento para moscas que contiene BPB en un solo punto (~ 200 μL) en el centro de una placa de Petri.

2. Ensayo de control de la acidificación intestinal

  1. Transfiera las moscas hambrientas a una placa de Petri que contenga puntos individuales (200 μL) de alimento para moscas complementado con azul de bromofenol (BPB) al 2%. Deje que las moscas se alimenten durante 4 horas a temperatura ambiente mientras están expuestas a la luz.
  2. Después de 4 h, recoger las moscas y anestesiarlas en hielo; aislar quirúrgicamente sus intestinos.
    1. Realice la cirugía en solución salina tamponada con fosfato (PBS) 1x con pinzas bajo un microscopio estereoscópico (consulte la Tabla de materiales). Aísle el intestino sosteniendo el tórax con un par de pinzas y tirando hacia abajo del abdomen con un segundo par hasta que el CCR del intestino sea visible, teniendo cuidado de asegurarse de que el intestino permanezca unido en ambos extremos.
  3. Determine la acidificación del intestino examinando el color del CCR del intestino (Figura 1C; el amarillo indica acidificado y el azul indica no acidificado).
  4. Cuente solo aquellas moscas que muestran una tinción robusta de BPB en sus intestinos.
  5. Calcule el porcentaje utilizando la siguiente ecuación:
    Porcentaje de moscas con intestinos acidificados = número de moscas acidificadas × 100 / (número de moscas acidificadas + número de moscas no acidificadas)
    nota: Un porcentaje de 0 indica que ninguna mosca acidificó su intestino, mientras que un porcentaje de 100 indica que todas las moscas acidificaron su intestino.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

figure-results-1
Figura 1: Monitoreo de la acidificación intestinal.(A) Dibujo esquemático de la pista de alimentación. El punto azul representa el alimento para moscas con azul de bromofenol (un colorante que indica el pH). Otras manchas representan moscas de la fruta. (B) Representación gráfica del porcentaje de moscas que muestran acidificación intestinal alimentadas durante difer...

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Azul de bromofenolSigma-AldrichB0126
D. simulansCentro de Reservas de Especies de Drosophila de la Universidad de CaliforniaRiverside, California1 (https://www.drosophilaspecies.com/)
D. erectaCentro de Reservas de Especies de Drosophila de la Universidad de CaliforniaDere cy1(https://www.drosophilaspecies.com/)
D. pseudoobscuraCentro de Reservas de Especies de Drosophila de la Universidad de CaliforniaEugene, Oregón(https://www.drosophilaspecies.com/)
D. mojavensisCentro de Reservas de Especies de Drosophila de la Universidad de CaliforniaMontañas de Chocolate, California (https://www.drosophilaspecies.com/)
fórcepsBiología de InoxCatálogo# 11252-20
Kim se limpia con pañuelosKimtech
Oregón RAcciones de Bloomington Drosophila (https://bdsc.indiana.edu/ # 2376)
Placas de PetriFisher CientíficoCatálogo #FB0875713A
Solución salina tamponada con fosfato (PBS)HyCloneCatálogo # SH30258.01
Microscopio estereoscópicoOlympus SZ51Aumento visual

Etiquetas

Intestino medio de Drosophilacélulas de cobrecolorante indicador de pHpreparación de alimento para moscasdisección con estereomicroscopioaislamiento del intestinoensayo de acidificación