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Diferenciación de células madre embrionarias humanas en progenitores neurales

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Jeon, K. et al., Diferenciación Neural Eficiente Utilizando el Cultivo de Células Madre Embrionarias Humanas en una sola célula. J. Vis. Exp.(2020)

Este video demuestra la diferenciación de células madre embrionarias humanas, o hESCs, directamente en células progenitoras neurales sin usar células alimentadoras ni ningún paso intermedio. La inhibición selectiva de la proteína morfogenética ósea o BMP y las vías de señalización del factor de crecimiento transformante beta, o TGF-β, conducen a la diferenciación de las hESC en células progenitoras neurales, o NPC.

Protocolo

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>1. Preparación de placas recubiertas de matriz de membrana basal calificadas para células madre embrionarias humanas (hESC)

  1. Descongele lentamente la solución de la matriz de membrana basal calificada para hESC (consulte la tabla de materiales) a 4 °C durante al menos 2-3 h o durante la noche para evitar la formación de un gel.
  2. Para preparar placas recubiertas de matriz de membrana basal, diluya la matriz en el medio Eagle modificado frío de Dulbecco con F12 (DMEM+F12) hasta una concentración final del 2%. Mezcle bien y cubra cada pocillo de una placa de 6 pocillos con 1 mL de la solución de matriz diluida.
  3. Incubar las placas recubiertas de matriz de membrana basal a temperatura ambiente (RT) durante al menos 3 h o a 4 °C durante la noche.
    nota: Las placas con matriz de membrana basal pueden almacenarse a 4 °C durante 1 semana antes de retirar la solución de matriz y utilizar las placas.

>2. Adaptación de hESCs de tipo colonia al cultivo de hESCs de una sola célula

  1. Para pasar los cultivos libres de alimentador de las hESCs del tipo de colonia H9 (WA09) cultivadas en la matriz de la membrana basal, aspire el medio de los pocillos (Figura 1A).
  2. Lavar 1 vez con 1 ml de DPBS. Añadir 1 mL de solución de dispasa (1 U/mL) por pocillo e incubar a 37 °C durante 20 min.
  3. Retire la dispasa, lave las células 1 vez suavemente con 2 mL de DMEM/F12, retire el medio y agregue 2 mL de DMEM/F12 a cada placa.
  4. Separe suavemente las colonias pipeteando suavemente hacia arriba y hacia abajo y transfiéralas a un tubo de 15 ml.
  5. Centrifugar los pellets durante 2 min a 370 x g y aspirar el medio.
  6. Para disociar los gránulos de células en células individuales, añadir 2 mL de solución de desprendimiento de células (concentración 1x, ver Tabla de Materiales) e incubar a 37 °C durante 10 min.
  7. Centrifugar las células durante 2 min a 370 x g y retirar la solución de desprendimiento.
  8. Añada un nuevo medio ESC humano mTeSR1 y disocie las células en células individuales mediante un pipeteo suave hacia arriba y hacia abajo.
  9. Para adaptar las hESCs de tipo colonia a un cultivo de tipo de una sola célula, coloque aproximadamente 1,5–2,0 x 106 hESCs en cada pocillo de la placa de 6 pocillos recubierta de matriz de membrana basal en 2 mL de mTeSR1 que contenga 10 μM de inhibidor de ROCK durante 24 h (Figura 1A).
  10. Después de 24 h, reemplace el medio hESC con mTeSR1 fresco sin inhibidor de ROCK y deje que las hESC crezcan como un tipo de una sola célula durante 3 días. Cambie el medio a diario.
  11. En el día 4, cuando los cultivos alcanzan casi el 100% de confluencia, disocie las células en una solución de desprendimiento, luego vuelva a plachar como se describe en el paso 2.6.
    nota: El inhibidor de ROCK mejora la supervivencia celular durante las primeras 24 h de cultivo de hESC de tipo unicelular.

>3. Diferenciación de hESCs de tipo unicelular en NPCs (Figura 2)

  1. Para inducir la diferenciación de NPC, disocie las hESC de tipo unicelular con 1 mL de solución de desprendimiento (1x) e incube durante 10 min a 37 °C.
  2. Centrifugar las células durante 2 min a 370 x g y retirar el sobrenadante de la solución de desprendimiento. Añadir 1 ml de DMEM/F12 y resuspender las células mediante un pipeteo suave.
  3. Células de placa en una placa de 6 pocillos recubierta de matriz de membrana basal a una densidad de 2 x 105 células/pocillo en 2 mL de mTeSR1 que contiene 10 μM de inhibidor de ROCK.
  4. Después de 24 h, reemplace el medio de cultivo por un medio de inducción neural (DMEM con 1% de B27 menos vitamina A) suplementado con 1 μM de dorsomorfina y 5 μM SB431542.
  5. Cambie el medio cada dos días durante los primeros 4 días de inducción neuronal, luego todos los días hasta alcanzar la confluencia en el día 7 (Figura 2B).
    NOTA: (1) La dorsomorfina inhibe la vía BMP al dirigirse a los receptores ALK2,3,6 y también inhibe la AMPK; SB431542 es un inhibidor de la vía TGFβ/Activina al dirigirse a ALK5,7. (2) El mismo protocolo se probó con otra línea ESC (WA01), que arrojó resultados similares a los WA09. (3) Generalmente hemos utilizado Matrigel para la matriz de la membrana basal; sin embargo, las células pueden cultivarse en Geltrex y luego diferenciarse en NPC con resultados muy similares, como lo indica la expresión de varios marcadores de NPC (Figura 3D, E). Manipule Geltrex de la misma manera que Matrigel (consulte la sección 1).

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Resultados

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Figura 1: Adaptación de hESCs de tipo colonia al cultivo de tipo unicelular.(A) Imágenes representativas de contraste de fase de cultivos unicelulares de hESCs H9 en diferentes momentos después de la siembra en placas recubiertas de matriz de membrana basal al 2%. Aumento bajo (izquierda) y alto (derecha). Panel superior: imagen representativa de las hESCs de tipo colonia. Otros pane...

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Placas de 6 pocillosCorning3516
AccutaseTecnologías celulares innovadorasAT104-500Solución de desconexión de células
Activina ASistema de investigación y desarrollo338-AC-050
Suplemento de B27 (-Vit A)Termo Fisher12587010
centrífugaDAMON/HIELO428-6759
Incubadora de CO2Termo Fisher4110
Matriz de Corning hESC (Magrigel)Corning354277Matriz de membrana basal (utilizada para la mayor parte del protocolo aquí)
DispasaTecnologías de células madre7923
DMEMTermo Fisher10569-010
DMEM/F12Termo Fisher10565-018
DorsomorfinaTocris3093
Suero Fetal BovinoFisher CientíficoSH3007003HI
Matriz de GeltrexTermo FisherA1569601Matriz de membrana basal
GlutaMaxTermo Fisher35050061Suplemento de glutamina, 100X
Línea de células madre embrionarias humanas H9 (WA09)WiCell (Célula InalámbricaWA09
LamininaSigma AldrichL2020
mTeSR1Tecnologías de células madre85850medio de cultivo hESC
NEAATermo Fisher11140050
Inhibidor de ROCKTocrisAño 1254
SB431542TocrisAño 1614
)

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Etiquetas

C lulas progenitoras neuralesinhibici n de BMPse alizaci n de TGF betamedio de inducci n neuralinhibidor de ROCKmatriz de membrana basalcultivo de c lulas individualestratamiento con dorsomorfinaaplicaci n de SB431542

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