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Purificación de capilares de un cerebro porcino

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8 de julio de 2025

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Resumen

Fuente: Nielsen, S. S. E., et al. Método mejorado para el establecimiento de un modelo de barrera hematoencefálica in vitro basado en células endoteliales cerebrales porcinas. J. Vis. Exp. (2017).

Este video muestra el aislamiento de capilares de cerebros porcinos frescos. El proceso consiste en eliminar las meninges, aislar la materia gris del tejido cerebral, homogeneizar y filtrar la materia gris para aislar los capilares y, finalmente, utilizar la digestión enzimática para purificar aún más los capilares.

Protocolo

Todos los procedimientos relacionados con la recolección de muestras se han realizado de acuerdo con las directrices del IRB del instituto.

1. Purificación de capilares cerebrales porcinos

  1. Recoja de 8 a 10 cerebros de cerdos domésticos de 5 a 6 meses de edad (por ejemplo, de un matadero cercano) y transpórtelos en hielo al laboratorio. Recomendamos iniciar el siguiente procedimiento de purificación dentro de las 2-3 horas posteriores a la terminación del animal.
  2. Coloque los sesos en un banco de flujo estéril y lávelos suavemente con 1 L de PBS en un vaso de precipitados colocado sobre hielo.
  3. Retire cuidadosamente las meninges de un cerebro a la vez con pinzas de punta fina y transfiera los cerebros sin meninges a otro vaso de precipitados de 1 L con PBS colocado en hielo. Prolongar el tiempo necesario puede complicar la eliminación. El tiempo aproximado utilizado para cada cerebro debe ser de 10-15 min.
  4. Con un bisturí, raspe la materia gris de un cerebro a la vez y transfiera el material aislado a placas de Petri (8,8 cm2) que contengan 20 ml de mezcla de nutrientes DMEM F-12 (DMEM/F-12) colocada en hielo. Aísle la mayor cantidad posible de materia gris sin extraer material de materia blanca. Para la fragmentación inicial, pase el material de materia gris a través de una jeringa de 50 ml sin aguja. Continúe por todos los cerebros y agrupe el material de materia gris recolectado. Prolongar el tiempo necesario puede complicar la eliminación. El tiempo aproximado utilizado para cada cerebro debe ser de 10-15 min.
  5. Transfiera el material de materia gris aislado al tubo de molienda de un homogeneizador de tejido manual en una proporción de 50/50 con medios DMEM/F-12. Homogeneice el material haciendo 8 trazos hacia arriba y hacia abajo con un mortero suelto, seguidos de 8 trazos hacia arriba y hacia abajo con un mortero apretado. Continúe hasta que todo el material aislado se haya homogeneizado, luego transfiera el homogeneizado a una botella de 500 mL y diluya con DMEM/F-12 hasta aproximadamente 450 mL de volumen total.
  6. Filtre el homogeneizado con un frasco de tapa azul de 500 ml con soporte de filtro y malla filtrante de 140 μm, y aísle los capilares pasando el tejido a través del filtro. Utilice un filtro por cada 50 mL de homogeneizado y lave cada filtro con DMEM/F-12 posteriormente.
  7. Coloque los filtros que contienen capilares en placas de Petri con una solución de digestión de tripsina/EDTA (2,5 % de tripsina, 0,1 nM de EDTA en PBS), colagenasa CLS2 (2.000 U/mL) y DNasa 1 (3.400 U/mL) en DMEM/F-12. Utilice 1 placa de Petri (8,8 cm2, solución de 20 ml) por cada 3 mallas filtrantes.
  8. Coloque las placas de Petri a 37 °C durante 1 h en un agitador orbital a 180 rpm o revuélvalas suavemente cada 10 minutos. Después de 1 h, lave los capilares de los filtros con suspensión de la placa de Petri con una pipeta de 1 mL.
  9. Divida la suspensión de los 3 platos en 2 tubos de 50 mL y detenga la digestión agregando 10 mL de DMEM/F-12 a cada tubo de 50 mL.
  10. Centrifugar las suspensiones celulares a 250 x g, 4 °C durante 5 min. Aspirar los sobrenadantes y volver a suspender cada pellet en 10 mL de DMEM/F-12. Añada 20 mL adicionales de DMEM/F12 a cada tubo. Repita este paso de centrífuga dos veces.
  11. Deje que los tubos se enfríen en hielo durante 5 minutos y transfiera las soluciones a 2 tubos nuevos de 50 ml.
  12. Centrifugar las suspensiones celulares a 250 x g, 4 °C durante 5 minutos, y volver a suspender cada pellet en 8 - 10 mL (aproximadamente 1 mL/cerebro utilizado) de solución de congelación que consiste en 10% de DMSO en FBS.
  13. Transfiera la suspensión celular a crioviales, utilizando 1 mL por criovial. En promedio, la purificación da como resultado 1 vial por cerebro utilizado, proporcionando en promedio células endoteliales para 12-16 insertos. Coloque los viales en una caja de congelación a -80 °C durante al menos 4 h hasta toda la noche. A continuación, almacene los crioviales en un criotanque con nitrógeno líquido.
    cautela: El nitrógeno líquido tiene temperaturas extremadamente bajas. Por favor, use la protección adecuada.

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
DMEM/F-12 Lonza BE12-719F
Suero fetal bovino (FBS) Gibco Invitrogen 10-270-106
Tripsina/EDTAGibco Invitrogen15090-046
DmsoSigma-Aldrich34896
PbsSigma-AldrichD8537
ADNasa 1Sigma-AldrichD4513
Colagenasa CLS2Sigma-AldrichC6885
ddH2OHecho con el sistema Elga
Tubos de centrífuga de 15 mlEstrella celular188271
Tubos de centrífuga de 50 mlEstrella celular227261
Placas de PetriTermo Científico150350
Viales criogénicosTermo Científico377224
Botella de 500 mlTermo Científico159910/159920
EscalpelosSwann-MortenREF0211Tipo 24
Homogeneizador de tejidossigmaD9188
Filtros de 140 μmMerckNY4H04700
Pinzas curvas de punta fina KLS Martín 12-409-12-07
Pinzas de punta anchaVWR82027-390
PortafiltroMERCK MiliporeSwinnex-47
Jeringa de 50 mlBraun4617509F

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Etiquetas

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