Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Análisis de la reactivación de células madre neurales en explantes de cerebro de Drosophila cultivados

812 visualizaciones

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Naomi Keliinui, C., et al. Reactivación de células madre neurales en explantes de cerebro de Drosophila cultivados. J. Vis. Exp. (2022).

Este video muestra un protocolo para identificar factores exógenos que inician la reactivación de las células madre neurales del cerebro de Drosophila desde su estado de reposo. Las larvas recién eclosionadas se diseccionan para aislar sus cerebros, que luego se cultivan en medios con o sin una hormona de prueba para evaluar el potencial de la hormona para inducir la reactivación y proliferación de células madre neurales.

Protocolo

1. Preparación de medios de cultivo y herramientas

  1. Rocíe el banco y el área de trabajo con etanol al 70% y deje secar.
  2. Rocíe las herramientas de disección, las pinzas y los dos platos de vidrio con etanol al 70% y déjelos secar en el banco.
  3. Prepare los medios de Schneider suplementados (SSM, Tabla 1) y colóquelos en hielo.
  4. Pipetee 1 mL de SSM en cada una de las antenas de vidrio del reloj.
  5. Con una micropipeta con punta estéril, transfiera las larvas recién eclosionadas de la placa de PBS al SSM en la primera placa de reloj de vidrio. Con ayuda de una micropipeta con punta estéril, transfiera las larvas recién eclosionadas al SSM en la segunda placa de vidrio del reloj.

>2. Disecciones y cultivos cerebrales

  1. Una vez que las larvas estén en la segunda placa de vidrio con SSM, diseccione los cerebros de las larvas con pinzas y un microscopio de disección. Ajuste el aumento según sea necesario.
  2. Use una pinza para agarrar los ganchos de la boca y con la otra, agarre suavemente el cuerpo hasta la mitad y tire en la dirección opuesta (Figura 1) para dividir la larva en dos pedazos><. nota: El cerebro se ubicará justo detrás de los ganchos bucales. Tenga en cuenta que puede haber otros tejidos que rodean el cerebro. Tenga mucho cuidado al extirpar estos tejidos, ya que puede dañar el cerebro.
  3. Una vez que se hayan diseccionado 15-20 cerebros, agregue 1 mL de SSM en un pocillo de una bandeja de cultivo estéril de 12 pocillos. Transfiera los cerebros recién diseccionados al SSM utilizando una micropipeta y una punta estéril (Figura 2A).
  4. Coloque los cerebros en el medio SSM en la bandeja de cultivo de 12 pocillos en una incubadora a 25 °C durante 24 h (Figura 2A).

Tabla 1: Receta para hacer medios de Schneider suplementados (SSM). La tabla enumera el volumen de todos los ingredientes necesarios para preparar 5 mL de SSM.

Ingrediente (concentración inicial)Para hacer 5 mLConcentración final
Medios de comunicación de Drosophila de Schneider3.89 mL
Suero fetal bovino (100%)500 μL<10%
Glutamina (200 mM)500 μL20 mM
Penicilina (5000 unidades/mL), Estreptomicina (50.000 μg/mL)100 μLPluma de 1000 U/mL, estreptococo de 1 mg/mL
Insulina (10 mg/mL)10 μL0,02 mg/mL
glutatión (50 mg/mL)5 μL0,05 mg/mL
En una campana estéril, utilizando una técnica estéril, agregue todos los ingredientes juntos en un tubo cónico de 14 mL. Colócalo en hielo hasta su uso.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

figure-results-1
Figura 1: Larvas de Drosophila en una placa de reloj de vidrio con SSM. Las pinzas están colocadas correctamente para la disección. La ubicación del cerebro de la larva (gris oscuro) es posterior a los ganchos bucales (negro), y ambos se muestran dentro de la larva.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
10 μL Puntas de pipetaDenville SciP2102
1000 μL Puntas de pipetaDenville SciP2103-N
Pipeta de 1000 μLGilsonP1000
Placas de cultivo multipocillos de 24 pocillosFisher Científico50-197-4477
Placas de Petri de 35 mmFisher Científico08-757-100AIngredientes del plato de uva
Microscopio de disecciónZeissStemi 2000
Etanol a prueba de 200 (100%), Decon Labs, botella de 1 galónFisher CientíficoArtículo 2701Se utiliza para lavar las larvas antes de la retención de 24 horas en el medio de cultivo
Suero fetal bovino (10%)sigmaF4135-100MLSuplemento para medios de cultivo celular.
Pinzas finas para la disecciónHerramientas de Bellas Ciencias11295-20Objetos utilizados en las disecciones. Funcionan mejor cuando están afilados.
Plato de disección de vidrio (3 pocillos)Estos ya no están disponibles
glutatiónsigmaG6013Proporciona protección oxidativa durante el cultivo celular.
incubadoraThermo Fisher ScientificGarantiza que la temperatura, la humedad y la exposición a la luz sean exactamente las mismas durante todo el experimento.
insulinasigmaI0516Variable independiente del experimento
Campana de flujo laminarPara alícuota de medios culturales
L-GlutaminasigmaG7513Proporciona apoyo durante el cultivo celular
Estreptococo en plumasigmaP4458-100mlAntibióticos utilizados para prevenir la contaminación bacteriana de las células durante el cultivo.
Tampón de fosfato, pH7.4Hecho en casaHecho en casaDisolvente utilizado para lavar los cerebros después de los pasos de fijación y tinción
cogerHerramientas de Bellas Ciencias10140-01Se utiliza para recoger las larvas de la placa de uva
Medio de cultivo de SchneiderTecnología de la vida21720024Contiene nutrientes que ayudan a las células a crecer y proliferar
Agua estérilAutoclave Milli-Q de agua hecha en casaNecesario para las soluciones

Etiquetas

Disecci n cerebraltratamiento hormonalan lisis de la proliferaci n celularsalida del estado de quiescenciaincubaci n en medio de cultivov as de se alizaci n downstreamuni n del receptor de NSCcultivo est ril en placa de 24 pocillos