Artículo de método

Marcaje de marcadores de superficie de células neuronales con Azidosugar mientras se cocultiva con células endoteliales

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Bai, Q., et al. Identificación de marcadores de superficie celular de células madre y progenitoras neurales primarias mediante el marcaje metabólico de sialoglicano. J. Vis. Exp. (2019).

Este video muestra un protocolo para el co-cultivo de células endoteliales de cerebro de ratón y células madre corticales primarias y el marcaje de las glicoproteínas de la superficie celular utilizando Ac4ManNAz (azidoazúcar per-O-acetilado N-azidoacetilmannosamina). Este método permite el enriquecimiento selectivo y la identificación de proteínas de la superficie celular en las células primarias.

Protocolo

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1. Preparación de cultivo endotelial de ratón en insertos de soporte permeables

NOTA: Las celdas BEND3 se mantienen de acuerdo con las instrucciones del fabricante.

  1. Prepare el medio celular (BM) BEND3 agregando 50 mL de FBS y 5 mL de penicilina-estreptomicina en 500 mL de DMEM y mezcle bien.
  2. Aspire el medio del plato y lave el cultivo celular BEND3 con 1 mL de PBS una vez. Añadir 1 mL de tripsina-EDTA (ácido etilendiaminado tetraacético) al 0,25% a las células e incubarlas durante 4 min a 37 °C.
  3. Agregue 1 mL de BM a las células para neutralizar la tripsina-EDTA y pipetee suavemente hacia arriba y hacia abajo para disociar completamente las células. Transfiera la suspensión celular a un nuevo tubo cónico de 15 mL y granule por centrifugación a temperatura ambiente (RT) durante 5 min a 400 x g.
  4. Aspire el sobrenadante del tubo y vuelva a suspender las células con 9 mL de BM fresco, luego agregue 1 mL de suspensión celular en un inserto de soporte permeable. Agregue otros 2 mL de BM fresco por pocillo en la cámara inferior de la matriz. Continúe cultivando las células durante un día.

2. Configuración del cocultivo neuroendotelial y el sistema de etiquetado Ac4ManNAz

  1. Un día, después de colocar las células BEND3 en los insertos, aspire suavemente el medio en la cámara inferior primero y luego los insertos. Lave la cara de los insertos 3 veces con DMEM precalentado (medio de águila modificado de Dulbecco). Lave la superficie exterior de los insertos enjuagando con DMEM precalentado.
  2. Agregue 1 mL de AM precalentado (medio adherente) en un inserto, luego transfiera los insertos a los pocillos con células corticales primarias. Incubar el cocultivo a 37 °C y 5% de CO2 durante 12 h.
  3. Disuelva Ac4ManNAz en DMSO (dimetilsulfóxido) para lograr una concentración de stock de 200 mM. 12 h después de establecer el cocultivo neural-endotelial, agregue 1 μL de stock de Ac4ManNAz por cámara inferior y 0,5 μL de stock por inserto en el cocultivo. Agite los platos inmediata y suavemente para mezclar bien el medio. Para las celdas de control, agregue un volumen igual de DMSO.
  4. Cultivar las células durante otros 5 días a 37 °C y 5% de CO2. Prepare la AM con 10x bFGF como medio de realimentación (RM). Durante este tiempo, agregue 100 μL de RM por inserto y 200 μL de RM por cámara inferior para realimentar las células endoteliales y neurales cada dos días. Durante la realimentación, no suministre Ac4ManNAz o DMSO en el cultivo.

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
CURVA3ATCCCRL-229
DMEMGibco11960044
L-glutaminaGibco250300811%
Piruvato de sodiosigmaP52801%
Suplemento de N2Gibco17502048De 1 a 100
N-acetil-L-cisteínasigmaA72501 mM
Suplemento de B27Gibco17504044De 1 a 50
Poli-L-lisinasigmaP4707
Factor de crecimiento básico de fibroblastosGibcoPHG026110 ng/mL
Penicilina-EstreptomicinaGibco151401221%
Suero fetal bovinoGibco1009914110%
HBSSGibco14175095
Tripsin-EDTA, 0.25%Gibco25200056
DPBSGibco14190094
TranswellCorning3450

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Etiquetas

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