Todos los procedimientos que involucran muestras de animales han sido revisados y aprobados por el comité de revisión ética animal apropiado.
1. Imágenes de calcio
- Enjuague los cultivos (5 a 7 días in vitro) rápidamente con HBS normal, luego cargue los cultivos con 5 μM de indicador Fluo-4 Ca2+ (AM ester) y 0,02% de Pluronic F-127 en HBS (2 ml) durante 30 min a 37 °C y 5% de CO2.
- Lave la solución Fluo-4 con HBS (3 veces/5 min). Vuelva a colocar los cultivos en la incubadora (37 °C / 5% CO2) durante al menos 30 min.
- Mantener los cultivos (5 a 7 días in vitro) en una cámara de imagen y montar la cámara en un microscopio confocal de disco giratorio. Perfundir continuamente (1 ml/min) con cóctel HBS en RT.
- Recoja imágenes de fluorescencia Fluo-4 de las proyecciones axonales de los microcortes de vHipp con un objetivo Plan-Apochromat (60X agua con 1,4 NA, excitación 488 nm, emisión 530 nm) y una cámara CCD.
- Recopile imágenes de fluorescencia Fluo-4 de referencia (cada 10 segundos durante 2 minutos) como control previo a la nicotina. Aplicar nicotina (1 μM) por perfusión rápida (2 ml/min) durante 1 min, luego lavar la nicotina con un cóctel HBS. Siga capturando imágenes de lapso de tiempo antes, durante y después de la aplicación de nicotina cada 10 segundos durante 30 minutos.
- Guarde todos los fotogramas de las imágenes de fluorescencia fluorescente-4 sin procesar y expórtelos como una serie de imágenes TIFF para su posterior análisis.
- Recoja la intensidad integrada de la fluorescencia fluo-4 a lo largo de los axones vHipp antes y después de la aplicación de nicotina.
- Normalice la intensidad de fluorescencia integrada con la siguiente ecuación: ΔF/F0 = (F-F0)/F0, donde F0 es la intensidad de fluorescencia integrada previa a la nicotina corregida en el fondo, y F es la intensidad de fluorescencia integrada a lo largo de los axones vHipp en cada punto de tiempo después de la aplicación de nicotina. Analice y trace la intensidad de fluorescencia integrada normalizada.