Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Evaluación de las interacciones entre las neuronas glutamatérgicas y las células de glioma en un cocultivo

868 visualizaciones

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Fuchs, Q. et. al., Cocultivo de neuronas glutamatérgicas y células pediátricas de glioma de alto grado en dispositivos microfluídicos para evaluar las interacciones eléctricas. J. Vis. Exp. (2021)

Este video demuestra la evaluación de la actividad eléctrica neuronal en un cocultivo de neuronas glutamatérgicas corticales derivadas de hiPSC y células de glioma utilizando un dispositivo microfluídico con matrices de electrodos múltiples.

Protocolo

>Todos los procedimientos relacionados con la recolección de muestras se han realizado de acuerdo con las directrices del IRB del instituto.

1. Protocolo de co-cultivo

  1. Ajustar el día de siembra y la concentración de las líneas celulares UW479 y BT35 para alcanzar el 80% de las células confluentes cuando debe comenzar el cocultivo, lo que corresponde a 21 días de cultivo para las neuronas glutamatérgicas.
  2. Tripsinizar las células UW479 y BT35 y sembrarlas en la parte superior de las neuronas glutamatérgicas en cada dispositivo microfluídico dedicado (con una densidad objetivo de 900 células/mm2 para cada tipo de célula) antes de sembrar las células de gliomas pediátricos de alto grado (pHGG) en el dispositivo microfluídico que contiene neuronas glutamatérgicas maduras.
  3. Mantener los cocultivos durante 2 días en un ambiente controlado (37 °C, 5% CO2) con neurona glutamatérgica Día 11 y medio en adelante detallado en la Tabla 1.
  4. Cuente las células pHGG utilizando las imágenes microscópicas analizadas con software de análisis de imágenes para evaluar su viabilidad. Calcule el porcentaje de celdas.
    NOTA: Utilice la siguiente fórmula: 100 - ((número de celdas en D23 / número de celdas en D21) x 100).

>2. Registro electrofisiológico

  1. Realizar el registro electrofisiológico con un sistema comercial y software disponible comercialmente.
    nota: Los experimentos se llevaron a cabo con una matriz de electrodos múltiples (MEA) que consistía en electrodos de 30 μm de diámetro espaciados por 100 μm.
  2. Realizar un primer registro electrofisiológico de las neuronas glutamatérgicas en D21 antes de la siembra de las células pHGG. Utilice las neuronas glutamatérgicas diferenciadas como control y cultívelas solas en paralelo al cocultivo. Realice una segunda grabación para ambas condiciones como se describe en el siguiente paso numerado 3.
  3. Realizar un segundo registro electrofisiológico en D23 (después de 2 días de cocultivo).

Tabla 1: Composición de los medios de cultivo para neuronas glutamatérgicas derivadas de hiPS.

inglés)
ComponentesMedio de siembraD4 medioD7 medioD11 y medios posteriores
DMEM/F-12 Medio0.5x0.25x0.125xØ
Medio Neurobasal0.5x0.25x0.125xØ
Medio BrainPhysØ0.5x0.75x1 vez
Suplemento SM11 vez1 vez1 vez1 vez
Suplemento N2-A1 vez1 vez1 vez1 vez
Ala-Gln (GlutaMax)0,5 mM0,5 mM0,5 mM0,5 mM
BDNF10 ng/mL10 ng/mL10 ng/mL10 ng/mL
GDNF (en10 ng/mL10 ng/mL10 ng/mL10 ng/mL
TGF-β11 ng/mL1 ng/mL1 ng/mL1 ng/mL
Geltrex30 μg/mLØØØ
Suplemento de siembra1 vezØØØ
Suplemento Día 4Ø1 vezØØ

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
256MEA100/30iR-ITO-s/oMcs256MEA100/30iR-ITO-s/o
Sonda de 40 μm para contador ScepterDutscher53750
Sonda de 60 μm para contador de cetroDutscher51999
Ala -Gln (GlutaMAX)sigmaG8541
Cabina de seguridad biológica de clase IITermo CientíficoHERASafe tipo KS12
Neuronas glutamatérgicas corticalesBrainXellBX-0300
DMEM/F12 MediosigmaD8437
DPBS 1XDutscherL0615-500
Matraces de cultivo celular EasYFlaskTM 75cm3Nunc156499
Suero fetal bovino (FBS)Dutscher500105
GDNF (enPeprotech450-10
GeltrexTecnologías de la VidaA1413201
BDNF humanoPeprotech450-02
incubadoraMemmertIC0150med
MEA2100Mcs181205-MEA2100-11240
Micropipeta P10sartorioLH-729020
Micropipeta P100sartorioLH-729050
Micropipeta P1000sartorioLH-729070
Micropipeta P200sartorioLH-729060
Microtubo Eppendorf 1,5 ml Safe-LockDutscher33290
Experimentador multicanalMcs-
Suplemento N2-ACélula madre7152
Medio NeurobasalTecnologías de la Vida21103049
Suplemento neuronal Neurocult SM1Célula madre5711
Aminoácidos no esenciales (NEAA) sin L-glutaminaDutscherX0557-100
Pipeteur Pipet-Aid XP GravityDrummond4000202/4038202
Pipeta para cultivo celular 10 mL Falcon®Dutscher357551
Pipeta para cultivo celular 5 mL Falcon®Dutscher357543
Placa chófer (CultureTemp)Belart370151000
Poli-D-lisinasigmaP6407
Microscopio PrimovertZeiss415510-1100-000
inglés)

Etiquetas

Células de glioma pediátricodispositivo microfluídicomatriz de multielectrodossistema de cocultivoregistro electrofisiológicoactividad neuronalliberación de glutamatoentrada de calcioviabilidad celular