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Establecimiento de un modelo de ratón de desmielinización focal mediante una inyección de lisofosfatidilcolina en dos puntos

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Pang, X., et al. Un modelo de desmielinización focal inducida por lisofosfatidilcolina en ratones. J. Vis. Exp. (2022)

Este vídeo muestra la generación de un modelo de ratón de desmielinización focal utilizando una inyección de lisofosfatidilcolina (LPC) de dos puntos. El cráneo de un ratón anestesiado queda expuesto. Se determinan las coordenadas de inyección y se perfora un orificio para permitir las inyecciones de LPC en los sitios específicos. El LPC induce la desmielinización focal de las neuronas a través de la inflamación, mientras que una inyección de dos puntos garantiza su sostenibilidad.

Protocolo

Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Preparación de la solución de lisofosfatidilcolina (LPC)

  1. Disuelva 25 mg de polvo de LPC (consulte la tabla de materiales) con 250 μL de solución mixta de cloroformo y metanol (1:1) para hacer una solución de LPC al 10% y transfiérala a un tubo de centrífuga de 500 μL.
    NOTA: Si el LPC no se disuelve completamente, coloque el tubo de centrífuga en un limpiador ultrasónico y ultrasonido a 40 kHz durante ~1 h para obtener una solución uniforme.
  2. Divida la solución en 3 μL/tubo y almacene a -80 °C.
    NOTA: La solución se puede almacenar durante ~ 2 años.
  3. Antes de la cirugía, diluir la solución (paso 1.2) con 27 μL de solución de cloruro de sodio (NaCl) al 0,9% y mantener la solución en un baño de agua a temperatura constante a 37 °C.
    NOTA: Prepare la solución justo antes de comenzar la inyección.

2. Preparación quirúrgica

  1. Use una aguja de 32 g y 2 pulgadas para conectarla a una jeringa de 5 μL (consulte la tabla de materiales). Asegúrese de que la jeringa de microlitros no esté obstruida. Extraiga 5 μL de solución de LPC para preparar la inyección.
  2. Anestesiar al ratón en una cámara de inducción conectada a un vaporizador de isoflurano con un 3% de isoflurano mezclado con un 100% de oxígeno a una tasa de aproximadamente 0,3 L/min.
  3. Confirme la profundidad de la anestesia por la falta de reflejo de pellizco de los dedos del pie mientras la respiración es suave.
  4. Afeita la cabeza del ratón entre las orejas con una afeitadora eléctrica. Aplique gotas lubricantes para los ojos para prevenir la sequedad de la córnea durante el procedimiento.
  5. A continuación, coloque el ratón en un marco estereotáxico (consulte la tabla de materiales) con el lado dorsal hacia arriba y asegure la cabeza con un cono de nariz y una pinza para los dientes. Mantener la anestesia con isoflurano al 1,2%-1,6% a través de la nariz.
    nota: La concentración de isoflurano se puede ajustar de acuerdo con el estado respiratorio de los ratones.

3. Procedimiento quirúrgico

NOTA: Los animales se colocan sobre una almohadilla térmica durante todos los procedimientos.

  1. Fije el ratón al aparato estereotáxico con barras bilaterales en los oídos. Asegúrese de que las barras de los oídos estén niveladas y que la cabeza esté horizontal y estable.
  2. Desinfecte la piel de la cabeza limpiándola varias veces con yodo, seguido de alcohol con movimientos circulares. A continuación, se utiliza un bisturí para hacer una pequeña incisión de unos 1,5 cm a lo largo de la línea media del cuero cabelludo para exponer el cráneo.
  3. Limpie el cráneo con un hisopo de algodón humedecido en peróxido de hidrógeno al 1% hasta que el bregma, la lambda y la fontanela posterior queden expuestos. Coloque la jeringa en el aparato estereotáxico.
    NOTA: Use el peróxido de hidrógeno con cuidado y evite tocar los tejidos circundantes.
  4. Asegurar la posición horizontal de la cabeza del animal (tanto delante como detrás, izquierda y derecha).
    1. Ajuste la perilla del eje Z del marco estereotáxico para que la punta de la aguja y el cráneo se toquen sin doblarse, luego mida la coordenada del eje Z. Compruebe las coordenadas Z del bregma y la fontanela posterior.
    2. Ajuste la barra de la oreja para que la diferencia entre las coordenadas Z del bregma y la fontanela posterior no sea superior a 0,02 mm. Luego, siga el mismo método para medir las coordenadas Z de las posiciones correspondientes en los lados izquierdo y derecho de la línea media. Ajuste la barra de la oreja para asegurarse de que la izquierda y la derecha estén al mismo nivel.
  5. Localiza el cuerpo calloso. Establezca el origen XYZ en bregma.
    NOTA: El primer sitio de inyección es de 1,0 mm lateral a la brema, 2,4 mm de profundidad y 1,1 mm anterior. El segundo sitio de inyección es de 1,0 mm lateral a la brema, 2,1 mm de profundidad y 0,6 mm anterior. Por ejemplo, la coordenada del bregma es (0,0,0). Mida la coordenada Z de la ubicación correspondiente marcada como (-1, 1.1, X) y (-1, 0.6, Y). Se puede determinar que la primera coordenada del sitio de inyección del cuerpo calloso es (-1, 1.1, -[X + 2.4]), y el segundo sitio de inyección es (-1, 0.6, -[Y + 2.1]).
  6. Una vez determinado el lugar de la inyección, haga una marca con un marcador estéril en el cráneo y registre las coordenadas.
  7. Taladre suavemente el sitio marcado con un taladro de cráneo (consulte la Tabla de materiales). Tenga cuidado de evitar cualquier sangrado.
  8. Mueva lentamente la aguja a las coordenadas dadas e inicie la inyección. Para inducir la desmielinización del cuerpo calloso, inyectar 2 μL de solución de LPC (paso 1.2) en cada lugar de inyección (paso 3.5.) a razón de 0,4 μL/min.
  9. Después de la inyección, mantenga la aguja en cada sitio durante 10 min.
    NOTA: Asegúrese de que el intervalo de dos inyecciones no sea superior a 20 minutos.
  10. Suturar la piel con una sutura 4-0 y esperar a que el animal se despierte en 10 min. Administrar analgésicos en el postoperatorio de acuerdo con las normas institucionales de cuidado de animales.
    NOTA: El tiempo recomendado para la eutanasia se puede determinar de acuerdo con el propósito del experimento.

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Divulgaciones

No se declaran conflictos de intereses.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
L-α-lisofosfatidilcolina de la yema de huevoSigma-AldrichL4129-25MG
Aguja de calibre 32HAMILTON7762-05
Jeringa de 10 μlHAMILTON80014
Taladro de cráneo de alta velocidadfuerte,Coreastrong204
TaladroHager & Meisinger, AlemaniaREF 500 104 001 001 005
Ventilador de aneatesia animal MatrxMIDMARKVMR
Instrumento estereotáxico portátil para ratónRecompensa68507
Micro jeringaRecompensaKDS LEGATO 130
IsofluranoVETEASY
SuturaFUSUNPHARMA20152021225
Ratones machos y hembras adultos C57BL/6Hunan SJA Animales de Laboratorio Co. Ltd

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