Artículo de método

Modelado de la hemorragia intraventricular neonatal mediante inyección intraventricular de hemoglobina

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Miller, B. A., et al. Modelado de la hemorragia intraventricular neonatal mediante inyección intraventricular de hemoglobina. J. Vis. Exp. (2022).

Este video muestra un método para generar un modelo de hemorragia intraventricular neonatal en ratas. En este procedimiento, se inyecta hemoglobina a una cría de rata anestesiada en el ventrículo lateral del cerebro. La hemoglobina provoca estrés oxidativo y libera hemo, simulando una hemorragia intraventricular. El daño resultante a los tejidos cerebrales, impulsado por especies reactivas de oxígeno y citocinas inflamatorias, conduce al agrandamiento ventricular, una consecuencia común de la hemorragia intraventricular.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Preparación de soluciones de hemoglobina y LCR

  1. Prepare una solución estéril de líquido cefalorraquídeo artificial (aCSF) añadiendo 500 μL de la solución de aCSF a un microtubo de 1,5 mL y guárdela en hielo.
  2. Prepare una solución estéril de hemoglobina de 150 mg/mL añadiendo 75 mg de hemoglobina a 500 μL de líquido hemogloboso en un microtubo de 1,5 mL y guárdela en hielo.

2. Preparación del animal para la inyección

  1. Gira la almohadilla térmica a la posición media para mantener la temperatura corporal de la rata.
  2. Anestesiar ratas postnatales día 4 (P4) en una cámara de inducción llena de isoflurano al 3%
    nota: Confirme la presencia de anestesia suficiente utilizando la respuesta de pellizco de la punta del pie o la cola cada 15 minutos. Controle la anestesia con observación visual del color del tejido, la temperatura corporal y la frecuencia respiratoria.
  3. Administrar analgésicos con una inyección subcutánea de carprofeno de 5 mg/kg a la rata anestesiada.
  4. Colocar la rata anestesiada boca abajo en el aparato estereotáxico con la nariz colocada en el adaptador de anestesia con un flujo constante de isoflurano al 1,5%.
  5. Apriete las barras de la oreja que no se rompen en el meato auditivo externo para asegurar la cabeza.
    nota: Aplique ungüento veterinario para mantener los ojos humectados si los ojos están abiertos a la edad de la inyección.
  6. Limpie el cabezal, alternando con aplicadores estériles con punta de algodón empapados en betadine y etanol al 70%.
    1. Toque el aplicador empapado en betadine en el centro del cuero cabelludo y extienda el betadine en círculos, moviéndose hacia afuera.
    2. Repita el paso 2.6.1.1 con el aplicador empapado en etanol.
    3. Repita los pasos 2.6.1.1 y 2.6.1.2 3 veces.
  7. Aplique un paño quirúrgico estéril para proteger el campo quirúrgico.
  8. Con un bisturí estéril, haga una incisión vertical de 0,3 cm en el centro de la cabeza para exponer el bregma del cráneo><. nota: Si inyecta desde la lambda, exponga la lambda del cráneo en lugar de la bregma.
  9. Use un aplicador estéril con punta de algodón para secar el área.

3. Configuración del inyector estereotáctico

  1. Extraiga la solución >nota: Si genera condiciones de control, extraiga una solución de LCR preparada en el paso 1.1 en una jeringa estéril de 0,3 mL y proceda con el protocolo.
  2. Encienda la interfaz del inyector estereotáctico y haga clic en el botón Configuración para ingresar la configuración del volumen y la velocidad de inyección.
    1. Haga clic en Volumen y ajuste el volumen a 20.000 nL (20 μL).
    2. Haga clic en Velocidad de infusión y establezca la tasa en 8.000 nL/min (8 μL/min).
  3. Salga de la configuración haciendo clic en el botón Restablecer POS.
  4. Enjuague la punta de la aguja haciendo clic en el botón Infundir hasta que emerja una pequeña gota de solución de hemoglobina en la punta de la aguja.
  5. Absorba suavemente la solución de hemoglobina de la punta de la aguja con un aplicador estéril con punta de algodón.

4. Inyección animal

  1. Establezca el bregma en cero en el sistema de inyectores estereotácticos ajustando las posiciones mediolateral y anteroposterior de la jeringa antes de bajar la punta de la aguja de la jeringa enjuagada para tocar suavemente el cráneo en el bregma.
    nota: Si inyecta desde la lambda, establezca lambda como cero.
  2. Identifique las coordenadas de su elección.
    1. Si se inyecta desde el bregma, en las ratas P4 descritas aquí, use 1,5 mm lateral, 0,4 mm anterior y 2,0 mm de profundidad del bregma.
    2. Si inyecta desde la lambda, utilice las siguientes coordenadas para las ratas P4: 1,1 mm lateral, 4,6 mm anterior y 3,3 mm de profundidad desde la lambda.
  3. Levante la aguja de la jeringa 1 cm por encima del cráneo para despejar el cuero cabelludo. Cuando la jeringa esté levantada, proceda a establecer las coordenadas mediolateral y anteroposterior.
  4. Baje la aguja de la jeringa para tocar suavemente el cráneo. Compruebe que la aguja esté tocando el cráneo.
  5. Establezca la coordenada dorsoventral en un período de 30 s.
    nota: Al establecer la coordenada dorsoventral, la aguja perforará el cráneo. Se debe tener cuidado para asegurar que la jeringa pase a través del cráneo sin deformarlo. La deformación del cráneo se evita retirando lentamente la aguja a lo largo de la coordenada dorsoventral si se produce deformación, y luego colocando la aguja de nuevo a lo largo de la misma trayectoria. Esto permite que la aguja pase a través del orificio en el cráneo con menos fuerza y sin deformación.
  6. En la interfaz del inyector estereotáctico, haga clic en el botón Ejecutar para comenzar la inyección.
  7. Una vez finalizada la inyección, deje la aguja de la jeringa en su lugar durante 2 minutos para minimizar el reflujo de la solución.
  8. Retire la jeringa lentamente a lo largo de la coordenada dorsoventral durante 2 minutos hasta que la punta de la aguja esté a 2 cm por encima del cuero cabelludo.
  9. Gire el brazo del inyector estereotáctico lejos del campo operatorio.

5. Cuidados postoperatorios

  1. Cerrar el cuero cabelludo con una sutura monofilamento 6-0. Haga una sutura interrumpida simple en el centro de la incisión de 0,3 cm.
  2. Retire al cachorro de la anestesia y colóquelo en un área segura sobre la almohadilla térmica.
  3. Regrese el roedor a la jaula de la casa para que se recupere de la anestesia bajo el cuidado de su madre.
    nota: El retorno oportuno al cuidado de la madre reduce la mortalidad postoperatoria precoz.
  4. Monitorizar los animales para la anestesia mediante la pérdida del reflejo de enderezamiento cada hora después de la cirugía durante 3 h.
  5. Monitoree a los animales diariamente durante 7 días para determinar la actividad normal, la ingesta de alimentos y el aumento de peso. Monitoree el sitio de la incisión para ver si la herida ha cicatrizado, cerrado y reaparecido el pelaje en el sitio de la cirugía.
    nota: En el raro caso de que se observen cambios neurológicos como convulsiones, depresión central o disminución del apetito durante el monitoreo, eutanasiar al animal mediante perfusión intravascular o luxación cervical bajo anestesia.
  6. Para prevenir la infección una vez que la sutura esté cerrada y la herida esté cicatrizando, aplique un antibiótico triple tópico en el sitio de la incisión.

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Divulgaciones

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No se declaran conflictos de intereses.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Jeringa de insulina de 0,3 mlBD Microfine + Jeringa de Insulina230-45330.3-0.5 mL Las jeringas funcionarán
Microtubo de 1,5 mlUSA Scientific1615-5500Nº de lote K194642H -3 511
6-0 sutura monofilamentoETHICON667G
Balanza analíticaInstrumentos CCURISW3200-320
LCR artificial (aCSF)Tocris Bioscience3525Nº de lote: 72A
BetadineProductos Purdue L.P.301005-00NDC 67618-150-09
Carprofeno (inyectable)Zoetis Inc.PI 4019448Rimadyl
EtanolLaboratorios Descontaminación2701
Almohadilla térmicaRayo de solE12107-819UL 612A, Z-1228-001
HemoglobinaMP Biomedicals100714LOTE Nº SR02321
IsofluranoCuidados Intensivos PiramalNDC 66794-017-25
Vaporizador de isofluranoVETEQUIP911103
Luz para instrumentación estereotácticaIndustrias Dolan-JennerFibra Lite MI-150
Bomba de jeringa de microinyecciónInstrumentos de Precisión MundialMICRO21Serial 184034 T08K
OxígenoAirgas HealthcareUN1072NÚMERO DE LOTE S1432080XA02
Ratas Sprague DawleyLaboratorios Charles RiverCódigo de cepa: 001
Instrumento estereotácticoInstrumentos KOPFModelo 900LS Lazy Susan
Aplicador estéril con punta de algodónFischerbrand23-400-118
Cuchilla quirúrgicacovetrus#10
Antibiótico triple tópicoPomada Antibiótica TripleNDC 51672-2120-1

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

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