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1. Medición por citometría de flujo de subunidades complejas MRC (cadena respiratoria mitocondrial) y TFAM (factor de transcripción mitocondrial A) en células fijas
- Al final del período de cultivo, separe las células (~ 106) agregando el reactivo de disociación celular; luego, granule y recoja las células en un tubo de 15 mL. Lavar las células por centrifugación con solución salina tamponada con fosfato (PBS) (1x) dos veces centrifugando a 300 × g durante 5 min.
- Fijar las células en paraformaldehído (PFA) al 1,6% (1 mL de PFA al 1,6% en un tubo de 15 mL) a temperatura ambiente (RT) durante 10 min. Lavar las células por centrifugación con PBS (1x) dos veces centrifugando a 300 × g durante 5 min.
- Permeabilizar las células con metanol al 90% frío como hielo (1 mL de metanol al 90% en un tubo de 15 mL) a -20 °C durante 20 min.
- Bloquee las muestras en tampón de bloqueo que contiene 0,3 M de glicina, 5% de suero de cabra y 1% de albúmina sérica bovina (BSA) - Fracción V en PBS (1x) (1 mL de tampón de bloqueo en un tubo de 15 mL). Lavar las células por centrifugación con PBS (1x) dos veces.
- Incubar las células con los siguientes anticuerpos primarios durante 30 min: anti-NDUFB10 (1:1.000) para la medición de la subunidad del complejo I, anti-succinato deshidrogenasa complejo flavoproteína A (SDHA, 1:1.000) para la medición de la subunidad del complejo II y anti-COX IV (1:1.000) para la medición de la subunidad del complejo IV, y anti-TFAM (factor de transcripción mitocondrial A) conjugado con Alexa Fluor 488 (1:400). Teñir el mismo número de células por separado con el anticuerpo anti-TOMM20 (translocasa de la membrana mitocondrial externa 20) conjugado con Alexa Fluor 488 (1:400) durante 30 min (1 mL de solución de anticuerpo primario en un tubo de 15 mL; consulte la Tabla de materiales para obtener detalles sobre los anticuerpos).
- Lave las células con PBS (1x) una vez con centrifugación a 300 × g durante 5 min. Añada el anticuerpo secundario (1:400) en tubos de NDUFB10, SDHA y COX IV e incube las células con estas soluciones durante 30 min.
- Lavar las células con PBS (1x) una vez centrifugando a 300 × g durante 5 min. Aspirar los sobrenadantes, dejando aproximadamente 100 μL en los tubos. Vuelva a suspender los pellets de celda en 300 μL de PBS (1x). Transfiera las células a tubos de microcentrífuga de 1,5 ml que se mantienen en la oscuridad sobre hielo.
- Analice las celdas en el citómetro de flujo (con una configuración de láser de 3 azules y 1 rojo). Detecte señales en el filtro 1 (FL1) utilizando un filtro de paso de banda 530/30.