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Artículo de método

Ensayo de luciferasa para medir la actividad de la γ-secretasa en células humanas

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Wang, B., et al., Medición cuantitativa de la proteína precursora amiloide mediada por γ-secretasa y la escisión de muesca en plataformas de ensayo reportero de luciferasa basadas en células. J. Vis. Exp. (2018).

Este video muestra el procedimiento de medición de la actividad de la γ-secretasa en células humanas modificadas genéticamente utilizando un sistema inducible por tetraciclina. El proceso consiste en inducir la expresión génica de APP con tetraciclina, generar péptidos β amiloide y activar la producción de luciferasa. A continuación, se mide la bioluminiscencia resultante de la reacción luciferasa-sustrato, reflejando la actividad de la γ-secretasa.

Protocolo

Todos los procedimientos relacionados con la recolección de muestras se han realizado de acuerdo con las directrices del IRB del instituto.

1. Medición de las señales reporteras de luciferasa, que corresponden a la escisión de la γ-secretasa de APP-C99 (proteína precursora de amiloide - fragmento de 99 aminoácidos C-terminal)

NOTA: Consulte las publicaciones anteriores para obtener descripciones detalladas de la generación de células CG (C99-Gal4).

  1. Siembre células CG (20.000 células/pocillo) en microplacas de 96 pocillos a un volumen final de 200 μL/pocillo en un medio de crecimiento compuesto por el Medio Eagle Modificado (DMEM) de Dulbecco más un 10% de suero fetal bovino (FBS), 5 μg/mL de blasticidina, 250 μg/mL de antibiótico (p. ej., zeocina) y 200 μg/mL de higromicina B.
    1. Cuente las células con un hemocitómetro.
    2. Transfiera las microplacas a una incubadora deCO2 humidificada e incube a 37 °C durante la noche.
  2. Retire 100 μL de medio de crecimiento de cada pocillo.
  3. Agregue 100 μL/pocillo de medio de crecimiento que contenga 2 μg/mL de tetraciclina con 0,2% de dimetilsulfóxido (DMSO), 2 μM CL-387,785, 2 μM N-[N-(3,5-difluorofenacetil-L-alanil)]-S-fenilglicina t-butiléster (DAPT) u otros inhibidores de ErbB1/ErbB2 relacionados.
  4. Incubar células CG tratadas en microplacas a 37 °C durante 24 h.
  5. Retire 150 μL/pocillo del medio de crecimiento de las microplacas.
  6. Añada 50 μL/pocillo de reactivo de ensayo de luciferasa (consulte la Tabla de materiales).
  7. Transfiera las microplacas a un lector de microplacas de luminiscencia.
    1. Mantenga las microplacas a temperatura ambiente durante 5 minutos con una agitación suave.
  8. Determine la luminiscencia emitida por la luciferasa Firefly (FL) utilizando un programa predefinido almacenado en el lector de microplacas de luminiscencia.

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Divulgaciones

No se declaran conflictos de intereses.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Lector de placas de luminiscencia VictorLightPerkinElmer2030-0010
Cabina de seguridad biológica Clase II, Tipo 2Termo Científico1300 Serie A2
CL-387,785EMD Calbiochem233100-1MG
DAPTMerck565770
Medio de águila modificada de Dulbecco (DMEM)Thermo Fisher12100046Componente principal del medio de crecimiento
Suero fetal bovino (FBS)Thermo Fisher16000044
BlasticidinaThermo FisherA1113903
ZeocinThermo FisherR25005
Higromicina BGibco10687010
HemocitómeroSigma-AldrichBR717805 Aldrich
Microplaca de 96 pocillosNunc156545
TetraciclinaSigmaT7660
Dimetilsulfóxido (DMSO)SigmaD2650
Reactivo de ensayo de luciferasa Steady-GloPromegaE2510
Incubadora de CO2 humidificadaRevcoUltima II
Línea celular T-REx293InvitrogenR71007
Wallac 1420 versión de software 3.0PerkinElmersoftware de control de instrumentos del lector de microplacas de luminiscencia

Etiquetas

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