Method Article

Título encapsulación celular a través de gotitas

DOI:

10.3791/316

October 1st, 2007

In This Article

Protocol

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

NIH3T3 células de preparación:

A. Las células de eyección

  1. Trypsinize las células, y luego se diluye 1:1 con los medios de comunicación celular, y la transferencia de un frasco T75 a un tubo de 15 ml Falcon
  2. Centrifugar las células en un pellet por centrifugación, se aspira el sobrenadante y lavar las células con DPBS
  3. Centrifugar las células en una bolita de nuevo, y aspirar el sobrenadante
  4. Resuspender las células en los medios de comunicación
  5. Determinar la densidad celular con hemocitómetro (~ 200 X 10 4 células / ml por frasco T75)
  6. Solución de centrífuga de células, se aspira el sobrenadante y resuspender en cantidad adecuada de los medios de comunicación para diferentes concentraciones de células

B. expulsión de la célula

  1. Vortex antes de usar las células para la eyección
  2. Transferencia de 200 l de solución de células en la jeringa
  3. Establecer el modo apropiado en el generador de impulsos
    1. Para la expulsión de gotas individuales y múltiples gotas (ráfagas), generador de pulso para "E. Bur" modo de
    2. Para la eyección de gota continua, generador de pulso en "NORM" modo de
  4. Cambiar la configuración de la señal
    1. Establecer el nivel de alta y baja tensión Nivel de salida: LIS a 5 V y LOL a 0 V y asegúrese de que el "LIM" está encendido
    2. Establecer como una señal de pulso cuadrado
    3. Cambiar la cantidad de tiempo que la válvula solenoide se abre para la eyección de gotas, cambiando el valor de "MED" o cambio de ciclo de trabajo ("derecho")
    4. Cambiar la frecuencia de la expulsión, cambiando el valor de "PER"
    5. Cambiar el número de gotas expulsadas en una explosión al cambiar el valor de "Bur"
  5. Solución de células de expulsión sobre el sustrato preparado para imágenes con microscopio

C. La tinción

  1. Conforman solución colorante con 0,5 l calceína-AM y 2 l homodímero de etidio por ml de DPBS
  2. Sumergir sustrato preparado en la solución colorante
  3. Que la muestra de incubar durante 10 minutos a 37 ° C antes de exponer

Experimento de Validación

  1. En una Nikon Eclipse TE-2000 microscopio fluorescente U
    1. Punto avanzado de software (Diagnostics, Inc.)
    2. Live / Dead ensayo

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Disclosures

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Los autores no tienen nada que revelar.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
MicroscopioNikon InstrumentsEclipse TE-2000 U Eyector
celda de válvula solenoideFrecuencia de operación: 1 KHz, 30psi, 50nl ~ 0.5ul. Controlador de válvula de 12 V: corriente de accionamiento de 2.5 amperios
TanqueColemanPowermate CT5Aire presurizado: 30 PSI
Reguladores deMarsh Bellofram
GeneradorHP8112Ageneración de frecuencia de actuación: 50 MHz
EtapaSistemascon motor paso a paso: etapa xy de 6 pulgadas de recorrido (NLS4-6-25), etapa z de 2,5 pulgadas de recorrido (NLS4-2.5-25), controlador de 3 ejes (NSC-G3), resolución de 0,1um
FibroblastoslíneaNIH 3T3
TripsinaSolución al 0,05%
NIH 3T3 Medio
DPBSTampón
T75Matraces
para cultivo de tejidos Tubos cónicos dede 15 ml, para cultivo de tejidos
fluorescente de de aire portátil de 5 galones presión de pulsos XYZ Newmark de celularcelular plástico

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Cell EncapsulationDroplet PrintingCell PrintingSolenoid ValveMotorized StageCell DensityHemocytometerLive Dead AssayCalcium AMEthidium Homodimer

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