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Microinyección estereotáctica de un vector viral para la manipulación génica en un cachorro de ratón estriado

7 de agosto de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Chen, S., et al., Cirugía estereotáxica para la manipulación genética en células estriatales de cerebros de ratones neonatales. J. Vis. Exp. (2018)

Este video demuestra la inyección estereotáxica de un vector viral que codifica la recombinasa Cre y la proteína de fluorescencia verde o GFP en el cuerpo estriado de un cachorro de ratón modificado genéticamente para lograr la manipulación génica mediante la extirpación de un casete STOP flanqueado por loxP, activando la proteína de fluorescencia roja o RFP como informador.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité de cuidado animal institucional local y la junta de revisión veterinaria JoVE.

1. Microinyección

  1. Prepare la cirugía estéril limpiando bien el instrumento estereotáxico con etanol al 70%. Sumerja el instrumento quirúrgico en etanol al 70% para esterilizarlo.
  2. Frote la cabeza del cachorro con etanol al 70%. Ubique la lambda de referencia en el cráneo y márquela con un rotulador. Apunte la punta de la aguja a la lambda y establezca las coordenadas antero-posterior (AP) y medial-lateral (ML) en cero.
  3. Mueva el brazo de inyección al sitio objetivo de acuerdo con las coordenadas X e Y del sitio objetivo. Para el cuerpo estriado de las crías del día postnatal (P) 2, las coordenadas son: AP, +2,4 mm anterior a la lambda; ML, ±1,0 mm lateral desde la línea media; dorsal-ventral (DV), a -1,7 mm del cráneo. Marque la posición del tinte verde rápido en el tubo PE10 con un bolígrafo.
  4. Baje la aguja de inyección 30G lentamente para penetrar a través de la piel y el cráneo, y luego suba la punta de la aguja hasta que se detenga en la superficie del cráneo. Establezca la coordenada DV en cero.
  5. Baje lentamente la aguja de inyección 30G hasta que alcance la coordenada DV del sitio objetivo. Espere 1 minuto para permitir que el parénquima recupere su forma normal. Luego, ejecute el programa de microinyección (100 nL / min).
  6. Asegúrese de que la marca del tinte verde rápido se mueva en el tubo de PE para asegurarse de que el líquido del virus se inyecte en el cerebro.
  7. Espere 1 minuto después de la finalización de la microinyección y luego, lenta y progresivamente, suba la aguja a 1/2 de la altura de la profundidad DV dentro de los 30 s. Después de 30 s, retire lentamente la aguja de la cabeza del cachorro.

2. Recuperación postquirúrgica del cachorro

  1. Calienta al cachorro durante 20 min en una incubadora a 33 °C. Verifique la recuperación del cachorro de la anestesia por hipotermia cada 5 minutos hasta que el cachorro haya recuperado la conciencia suficiente para mantener la decúbito esternal.
  2. Devuelva al cachorro a la presa después de que el cachorro se haya recuperado por completo.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
30G Aguja PrecisionGlideBecton DickinsonREF 305106
Hamilton8030030G aguja apta para tubo PE10; la aguja 26G necesita un adaptador PE20
Tubo de polietileno PE20Becton Dickinson427406
Tubo de polietileno PE10Becton Dickinson427401
Bomba de jeringa de microcaudalLonger Precision Pump Co.Jeringa TJ-2A (controlador) y L0107-2A (unidad de accionamiento)
25GBecton DickinsonREF 302105
Fast greenSigma-AldrichF-72520.10%
Instrumentos estereotáxicos estándarRWD Life Science68037Sin usar 68030 Adaptador para ratones/ratas neonatales
LSM 880 Microscopio confocalZeissLSM 880
AAV9.hSynapsin.HI.eGFP-Cre.WPRE.SV40Penn Vector CoreAV-9-PV1848Lote # CS0987, 5.506x1013 (GC/mL)
B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/JEl Laboratorio de Jackson7914Ai14
B6(Cg)-Foxp2tm1.1Sfis/CfreJEl Laboratorio de Jackson26259Foxp2fl/fl
Jeringa de MICROLITROS Hamilton

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Etiquetas

Cre RecombinaseGFP ExpressionRFP ReporterStereotaxic FrameBrain Atlas CoordinatesMicroinjection Program

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