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Imágenes de tejido profundo del cerebro de un pez cebra utilizando un microscopio de fluorescencia de tres fotones

June 17th, 2025

In This Article

Abstract

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Fuente: Hontani, Y., et al. Microscopía de fluorescencia de tres fotones de tejido profundo en cerebro intacto de ratón y pez cebra. J. Vis. Exp. (2022)

Este video demuestra la configuración y ejecución de imágenes de tres fotones en un cerebro de pez cebra anestesiado. El protocolo permite la visualización de tejido profundo de neuronas marcadas con fluorescencia, revelando la actividad y las estructuras neuronales en tiempo real para aplicaciones de investigación en neurociencia.

Protocol

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité de cuidado animal institucional local y la junta de revisión veterinaria JoVE.

  1. Imágenes intravitales en el cerebro del pez cebra
    NOTA: Para ubicar correctamente el cerebro del pez debajo de la lente del objetivo, se utiliza una cámara de dispositivo de carga acoplada secundaria (CCD) en el mismo camino que la luz de excitación para imágenes de campo amplio.
    1. Configure el microscopio y calibre la potencia.
    2. Coloque un objetivo de bajo aumento (generalmente 4x) en el microscopio.
    3. Coloque la placa de Petri que contiene el pescado y los tubos bajo el microscopio.
    4. Utilice una fuente de luz de diodo emisor de luz (LED) para iluminar la placa de Petri.
    5. Abra el modo Cámara del software de adquisición de imágenes (Figura 1).
    6. Haga clic en En vivo.
    7. Elija el canal A en el lado derecho de la pantalla.
    8. Ajuste la configuración del histograma para ver la imagen con claridad.
      NOTA: Estos deben actualizarse según sea necesario.
    9. Establezca la configuración del motor en el controlador del motor en Base.
    10. Baje el objetivo hasta que el pez sea visible.
      NOTA: Asegúrese de que la lente del objetivo no haga ningún contacto físico con la cabeza.
    11. Coloque el centro de la cabeza del pez en el centro del campo de visión.
    12. Mueve el objetivo hacia arriba y lejos de la cabeza del pez.
    13. Reemplace la lente del objetivo de bajo aumento con la lente del objetivo de alta apertura numérica (NA) para 3PM (microscopía de tres fotones).
      NOTA: La lente de bajo aumento y la lente del objetivo de alta NA no necesitan ser parafocales, pero deben estar lo suficientemente cerca para garantizar que el pez esté dentro del campo de visión de la lente del objetivo de alta NA.
    14. Baje lentamente la lente del objetivo, asegurándose de que el objetivo no haga ningún contacto físico con la cabeza. En el software de la cámara CCD, deje de mover el objetivo cuando la parte superior de la cabeza sea visible. Establezca la ubicación z en 0 μm.
      NOTA: Asegúrese de que no haya burbujas de aire debajo de la lente del objetivo cuando utilice un objetivo de inmersión en agua.
    15. Apague la fuente de luz LED y cierre la cortina oscura alrededor del sistema.
    16. Configure el software de adquisición de imágenes en modo GG multifotón para imágenes 3P y configure la potencia debajo de la lente del objetivo en menos de 1 mW (con una tasa de repetición de pulsos de ~ 1 MHz).
    17. Cambie el botón de configuración del motor de Base a Objetivo en el controlador del motor.
    18. Apaga las luces de la habitación.
    19. Encienda los tubos fotomultiplicadores (PMT) y abra el obturador de la fuente de excitación 3PM. Asegúrese de que aparezca un contorno del hueso en el canal de señal de fluorescencia debido a la autofluorescencia y en el canal de señal de generación de tercer armónico (THG) debido a THG del hueso (Figura 1C).
    20. Realice imágenes a diferentes profundidades aumentando los niveles de potencia al obtener imágenes más profundas.

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Results

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figure-results-1

Figura 1: Capturas de pantalla representativas para imágenes intravitales en peces (sección 1 del protocolo).) Vista en modo de cámara del software de adquisición de imágenes con la lente del objetivo 4x en su lugar. Las car...

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
5% Povidona yodadaAmazonNDC 67818-155-32Limpieza aceptical de áreas quirúrgicas
70% EtanolThermo Fisher ScientificCAS 64-17-5Limpieza aceptical de áreas quirúrgicas
AgaroseSigmaA4718-256Preparación de la cámara de pez cebra
Bérgamo IIThorlabs Microscopio de imagen multifotónica
BupivacaínaCornell Veterinary Care
GaAsP Amplified PMTThorlabsPMT2100Detector PMT
Calentador (800 W)Calentador de acuario Finnex para agua de pez cebra)
KimwipesKimtech Tejido de laboratorio para la preparación del pez cebra
Jeringa Nanofil (10 micrómetros) con aguja de 36 GWPINANOFIL + NF36BVJeringa y aguja para inyección de bromuro de pancuronio
Bomba peristálticaElemental ScienceESI MP2Bomba de agua para ajuste de pez cebra
Tubo de polietileno (D.I. 0,58 mm., D.E. 0,965 mm.)Tubería de bomba MP2Ciencia ElementalTubería que va en la boca del pez cebra
SR400Stanford Research SystemsSR400Contador de fotones
Sensor de potencia de fotodiodo estándar ThorlabsS122CDetector de potencia
Cera de caja de tiras delgadasCorning Rubber Co., Inc. Mantener el tubo en su lugar en la cámara del pez cebra
ThorImageThorlabs Software de adquisición de imágenes
Tricaína (sal de metanosulfonato de etil-m-aminobenzoato)MP103106Anestesia y eutanasia
Tubo Tygon (diámetro interior 1/16 pulg., diámetro exterior 1/8 pulg.)Tubo Tygon para flujo de agua para preparación de pez cebra
VaporGuardVetEquip931401Para reciclar isoflurano
Adhesivo tisular Vetbond3M1469SBPara pegar la ventana de vidrio en el cráneo del ratón y pegar el tejido de laboratorio al preparar el pescado.
XLPLN25XWMP2Objetivo dedicado a la excitación multifotónicaOlympus
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Three Photon MicroscopyZebrafish Brain ImagingDeep Tissue ImagingFluorescent Neuron VisualizationObjective Lens AdjustmentLED Light SourceImage Acquisition SoftwarePMT Gain AdjustmentMotor Controller SettingsReal Time Neuronal Activity

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