1. Preparación de tejidos para muestras criostáticas
- El sacrificio del animal por dislocación cervical o decapitación, en conformidad con el permiso ético disponibles.
- Rápidamente recoger tejidos de interés (por ejemplo. Cerebral) y la velocidad de congelación del hielo seco (tejidos puede requerir congelación en isopentano o propano refrigerado con nitrógeno líquido para obtener la morfología óptima). Tejidos almacenar en papel de aluminio a -80 ° C hasta que esté listo a la sección.
- Insertar tejido congelado en la preparación de muestras criostáticas.
- Recoger de 14 micras secciones congeladas a -21 ° C (puede ser necesario ajustar la temperatura de ± 2.1 ° C). Secciones de deshielo en las diapositivas con un calentador, y se desliza tienda sin cubreobjetos a -20 ° C hasta su utilización.
2. COX histoquímica
- Permitir que se sequen a temperatura ambiente durante 1 hora. Poner los portaobjetos en una cámara de diapositivas-tinción con papel de filtro húmedo, cortada en tiras. Para obtener consistenciaresultados t en cada experimento, se recomienda para procesar un máximo de diez diapositivas por experimento para reducir al mínimo los retrasos.
- Prepare en una campana química 1X DAB, 100 mM citocromo c en PBS 0,1 M pH = 7,0. Vortex rápidamente.
- Añadir 2 g de bovino catalasa (2 mg ml -1 o IU aproximadamente 4 ml -1). Mezclar adecuadamente por agitación para romper todos los granos de la catalasa.
- Aplicar 150 a 200 l de medio de incubación en cada diapositiva, utilice punta de la pipeta para repartir uniformemente en todas las secciones.
- Incubar los portaobjetos durante 40 minutos a 37 º C.
- Retire el exceso de solución de las diapositivas. Lavar los portaobjetos 4 veces, 10 minutos cada vez, en PBS 0,1 M pH = 7,0.
- Volver a la cámara de diapositivas diapositivas-tinción con tiras de papel mojado.
3. SDH histoquímica
- Prepare en una campana química 1,5 mM de NBT, 130 mM succinato de sodio, 0,2 mM de PMS, y 1,0 mM de azida sódica en PBS 0,1 M pH = 7,0. Tome la precaución de proteger a losPMS de la luz. Vortex rápidamente.
- Aplicar 150-200 L de medio de incubación en cada diapositiva, utilice punta de la pipeta para repartir uniformemente en todas las secciones.
- Incubar los portaobjetos durante 40 minutos a 37 º C.
- Retire el exceso de solución de las diapositivas. Lavar los portaobjetos 4 veces, 10 minutos cada vez, en PBS 0,1 M pH = 7,0.
- Deshidratar las diapositivas durante 2 minutos en las siguientes concentraciones de etanol: 70%, 70%, 95%, 95%, el 99,5%. A continuación, espere 10 minutos en un paso adicional del 99,5%.
- Coloque los portaobjetos en xileno durante 10 minutos. Montar con Entellan y cubreobjetos. Deje que el que se sequen horas de la noche, o 2.1 por lo menos en un área ventilada.
4. Determinación de la disfunción mitocondrial
- El monto de la disfunción mitocondrial se indica por la cantidad de manchas azules celular. Para semi-cuantificar estas cantidades, las diapositivas debe ser codificado y se visualizó bajo el microscopio de campo brillante. Semi-cuantificación se debe realizar en una persiana base en una escala, por ejemplo, 0-4 (0, ausencia de manchas azules, 4, sólo la tinción de azul). Lo mejor es realizar este tipo de semi-cuantificación de varias secciones de un tema determinado / animal para calcular un valor medio para cada sujeto / animal.
- Las estadísticas se debe realizar mediante una prueba no paramétrica, como la de Mann-Whitney o Kruskal-Wallis.
5. Controles apropiados especificidad
- Para los controles de la especificidad de la actividad COX, repita "COX histoquímica" pasos, y añadir 2,5 mM de azida sódica, un inhibidor de la cadena respiratoria terminal.
- Para los controles de la especificidad de la actividad SDH, repita "SDH histoquímica" medidas con la eliminación de succinato de sodio y la adición de 50 mM malonato, un inhibidor competitivo de la SDH.
- Lave y deshidratar las secciones en una serie de etanol, y luego montar y cubreobjetos las diapositivas tal como se describe en los pasos 3,4 a 3,6.
6. Los resultados representativos:
tienda de campaña "> El esquema general de los ejemplos representativos COX / SDH doble etiquetado ensayo histoquímico se ilustra en la Figura 2. apropiado de la COX / SDH doble etiquetado histoquímica en secciones de cerebro de tipo salvaje y envejecimiento prematuro de los ratones mutadores ADNmt se muestra en la Figura 3. Las manchas de color marrón oscuro en ratones de tipo salvaje (Figura 3, panel izquierdo) mostraron actividad normal de la COX. Las células con deficiencias de la cadena respiratoria, indicada por la tinción de azul, se dieron a conocer en 12 semanas de edad, los ratones mutadores ADNmt, y se convirtió en estas deficiencias más amplia que los ratones mutadores ADNmt entre a 46 semanas (Figura 3, el centro y el panel de la derecha).
Ejemplos de inadecuado COX / SDH de doble etiquetado en las secciones de cerebro de ratones de tipo salvaje debido a la falta de etiquetado COX se muestran en la Figura 4. Tiempo de incubación inadecuados para la demostración de la actividad de la COX, o la reducción de la disponibilidad de oxígeno molecular por el cubreobjetos de la diapositiva durante la incubación, se tradujo en una reducción de la deposición de la reacción DABproducto de iones, y por lo tanto permite la formación del producto final azul formazán durante la incubación SDH.
Actividades COX y SDH también puede ser investigado por separado (Figura 5, izquierda y centro), sin embargo, el etiquetado secuencial es útil para identificar las células con deficiencias de la COX, debido a la formación del precipitado de color azul durante la incubación SDH (Figura 3, el centro y derecha). Los controles de la especificidad de las actividades COX y SDH también se puede hacer (Figura 5, derecha).

Figura 1. Respiratoria mitocondrial IV complejos. La cadena respiratoria mitocondrial se encuentra dentro de la membrana interna e incluye cinco complejos. El propósito de la cadena respiratoria es el transporte de electrones del Complejo I a IV, y al hacerlo se crea un gradiente de protones a través de la membrana interna utilizada por el complejo V (ATPasa) para producir ATP. Hexágonos represe Rednt subunidades codificadas por el ADNmt. Hexágonos blancos representan las subunidades codificadas por el ADN nuclear (tenga en cuenta que el complejo II está completamente codificada del genoma nuclear). Por lo tanto, las mutaciones en el genoma mitocondrial pueden causar una disfunción de la cadena respiratoria debida a mutaciones en las subunidades de los complejos de la cadena respiratoria.

Figura 2. Diagrama de flujo del ensayo de COX / SDH de doble etiquetado de histoquímica. Diseccionar los órganos de interés, congelar rápidamente los tejidos en hielo seco, y almacenarlas a - 80 ° C. Recoger secciones de criostato y mantener a - 20 ° C hasta su uso. Permitir que las secciones se sequen al aire a temperatura ambiente durante 1 hora. Preparar el medio de incubación para la histoquímica de la COX, que se aplican a las diapositivas, y se incuba durante 40 minutos a 37 º C. Lavar las secciones en PBS 4 veces durante 10 minutos cada lavado. Preparar el medio de incubación para la histoquímica SDH, que se aplican a la slides, y de nuevo se incuba durante 40 minutos a 37 ° C. Lavar las secciones de nuevo en PBS, se deshidrata en una serie de etanol, y luego montar y cubreobjetos de las diapositivas. La COX / SDH de doble etiquetado secciones está listo para ver en el microscopio de campo brillante en 1-2 horas.

Figura 3. Ejemplos representativos de la COX / SDH de doble etiquetado. Secciones de cerebro de tipo salvaje y envejecimiento prematuro de los ratones mutadores ADNmt se etiquetarán secuencialmente para las actividades de la COX y SDH. (Barra de escala:. 200 micras) normal actividad de la COX (indicado por el color marrón oscuro) se muestra en el hipocampo de ratones de tipo salvaje (izquierda). Las deficiencias de la COX (indicado por el color azul) se dieron a conocer en el hipocampo de los ratones mutadores ADNmt (centro y derecha). Hubo una nueva disminución en la actividad de la COX por 46 semanas de edad en el ADNmt ratones mutadores, lo que sugiere la exacerbación de la disfunción generalizada de la cadena respiratoria. El mito observadoLa disfunción mitocondrial en los ratones mutadores ADNmt 12 es causada por niveles altos de mutaciones puntuales del mtDNA, así como mayores niveles de eliminaciones lineal 5.

Figura 4. Ejemplos de inadecuado COX / SDH de doble etiquetado. Secciones de cerebro de ratones de tipo salvaje fueron etiquetados de forma secuencial para las actividades de la COX y SDH. (Barra de escala:. 200 micras) veces inadecuada de incubación (10 y 25 minutos) para la demostración de la actividad COX dio lugar a una reducción de la deposición del producto de reacción marrón DAB, en comparación con el tiempo de incubación de 40 minutos (izquierda y centro). El acortar los tiempos de incubación permitió la formación del producto final azul formazán durante la incubación SDH, engañosamente que sugiere la presencia de células con deficiencias de la COX. Cubreobjetos las diapositivas durante la incubación de la COX también dio lugar a la formación de inexacta y la deposición de la reacción DABiones producto (derecha).

Figura 5. INDIVIDUALES COX y SDH etiquetado y el control de la especificidad. Secciones de cerebro de ratones de tipo salvaje fueron etiquetados por separado para las actividades COX y SDH, indicado por el color marrón oscuro y el color azul, respectivamente (izquierda y centro). Aunque las actividades de la COX y SDH puede ser etiquetados individualmente, el etiquetado secuencial ha demostrado ser ventajoso en la localización de las células con la disfunción mitocondrial. Un ejemplo de un control específico de la COX y SDH actividades en el cerebro de un ratón de tipo salvaje mostró ausencia de etiquetado (derecha). (Barra de escala:. 200 micras)