Determinación del recuento de células de mamíferos, el tamaño celular y la salud de la célula mediante el Moxi Z Mini contador automatizado de células

Resumen

El Moxi Z contador automático de células en miniatura es un instrumento novedoso que combina el Principio Coulter con la tecnología patentada de sensor de película delgada y un algoritmo de software propietario para realizar el dimensionado y el recuento de un amplio rango de tamaño de partículas, así como para determinar el estado general de salud de monodispersas cultivos de células de mamíferos. Este protocolo se describe el uso de este instrumento para contar y evaluar la salud de los cultivos celulares.

Resumen

El recuento de partículas y células se utiliza en diversas aplicaciones, incluyendo el cultivo celular de rutina, el análisis hematológico y los controles industriales^1-5. Un avance fundamental en las tecnologías de recuento de células/partículas fue el desarrollo de la técnica de Coulter por Wallace Coulter hace más de 50 años. Esta técnica implica la aplicación de un campo eléctrico a través de una abertura de tamaño micrométrico y el enfoque hidrodinámico de partículas individuales a través de dicha abertura. La oclusión resultante de la abertura por las partículas produce un cambio medible en la impedancia eléctrica que puede correlacionarse directa y precisamente con el tamaño o volumen celular. El reconocimiento de este método como estándar en el recuento de células/partículas proviene de la extraordinaria precisión y exactitud en la medición del tamaño y el número de partículas, particularmente en comparación con las tecnologías manuales y basadas en imágenes (exactitudes del orden del 98 % para los contadores de Coulter frente al 75-80 % para los sistemas manuales y basados en visión). Esto puede atribuirse al hecho de que, a diferencia de los enfoques basados en imágenes para el recuento celular, la técnica de Coulter realiza una medición verdaderamente tridimensional (3D) de células/partículas, lo que reduce considerablemente las interferencias en el recuento provocadas por restos celulares y agrupaciones, al calcular información volumétrica precisa sobre las células/partículas. En conjunto, esto proporciona un medio para enumerar y dimensionar células de manera más precisa, menos tediosa, menos consumidora de tiempo y menos subjetiva que otras técnicas de recuento⁶.

A pesar de la importancia de la técnica de Coulter en el recuento celular, su uso generalizado en estudios biológicos rutinarios ha sido limitado debido al costo y tamaño de los instrumentos tradicionales. Aunque se ha desarrollado un instrumento basado en Coulter menos costoso, presenta limitaciones en comparación con sus homólogos más caros respecto a la corrección de «eventos de coincidencia», en los que dos o más células pasan simultáneamente por la abertura y son medidas al mismo tiempo. Otra limitación de las tecnologías de Coulter existentes es la falta de métricas sobre la salud general de las muestras celulares. Por consiguiente, a menudo deben utilizarse técnicas adicionales junto con el recuento de Coulter para evaluar la viabilidad celular. Esto alarga el tiempo y costo del montaje experimental, ya que los métodos tradicionales de evaluación de viabilidad requieren tinción celular y/o el uso de equipos costosos y voluminosos, como un citómetro de flujo.

El contador celular automatizado Moxi Z mini, descrito aquí, es un instrumento de tamaño ultra compacto para banco de trabajo que combina la precisión del Principio de Coulter con una tecnología de sensor de película delgada para permitir la medición precisa y el conteo de partículas en un rango de 3 a 25 micrones, dependiendo de la cinta para conteo celular utilizada. La cinta tipo M puede emplearse para contar partículas con diámetros promedio de 4 a 25 micrones (rango dinámico de 2 a 34 micrones), y la cinta tipo S puede utilizarse para contar partículas con un diámetro promedio de 3 a 20 micrones (rango dinámico de 2 a 26 micrones). Dado que el sistema utiliza un método de medición volumétrica, los 4-25 micrones corresponden a un rango de volumen celular de 34 a 8.180 fL, y los 3-20 micrones corresponden a un rango de volumen celular de 14 a 4.200 fL, lo cual es relevante cuando se miden partículas no esféricas. Para realizar conteos de células de mamífero utilizando el Moxi Z, las células a contar se diluyen primero con ORFLO o un diluyente similar. Se inserta una cinta para conteo celular en el instrumento, y la muestra se carga en el puerto de la cinta. Miles de células son aspiradas, en fila única, a través de una "Zona de Detección Celular" (CSZ, por sus siglas en inglés) en la membrana de película delgada durante un periodo de 8 a 15 segundos. Tras la corrida, el instrumento utiliza un ajuste de curva patentado junto con un algoritmo de software patentado para proporcionar corrección de eventos de coincidencia, así como una evaluación del estado general del cultivo mediante la determinación de la relación entre el número de células en la población de interés y el número total de partículas. Los conteos totales de partículas incluyen células muertas encogidas y descompuestas, así como otros residuos y contaminantes. Los resultados se presentan en formato de histograma con un ajuste automático de curva, con compuertas que pueden ajustarse manualmente según sea necesario.

En última instancia, el Moxi Z permite realizar recuentos con una precisión y exactitud comparables a las del Coulter Z2, el estándar actual de referencia, al tiempo que proporciona información adicional sobre la salud del cultivo. Además, logra estos resultados en menos tiempo, con un menor espacio ocupado, con una operación y mantenimiento significativamente más sencillos, y a una fracción del costo de tecnologías comparables.

Protocolo

1. Preparación de las muestras

1. Diluir la suspensión de células con ORFLO diluyente o un diluyente adecuado para que la concentración de células se encuentra dentro del rango de operación del instrumento (3.000 a 500.000 células / ml para Tipo casete M, o de 3.000 a 2.500.000 células / ml para casete Tipo S).
2. Una dilución de 1:5 a 1:20 (tipo cassette M) o ninguna dilución a 1:05 de dilución (cassette de tipo S) se recomienda para la mayoría de las líneas celulares de mamíferos, pero la dilución adecuada dependerá del tipo de célula y la densidad de siembra. El volumen requerido para un conteo exacto es de aproximadamente 75 l.

2. Las muestras de manejo de

1. Gire a la Z Moxi pulsando el botón de encendido y la pantalla de inicio se mostrará.
2. Presione la bandeja hacia abajo e inserte un videocasete en la Z. Moxi La muestra con una pipeta 75μL ... Se mostrará la pantalla.
3. Pipetear una muestra de 75 l en el puerto de llenado de la cinta (óvalo azulmarcado 1 o 2, dependiendo de qué extremo del casete se inserta en el instrumento). Estas son las casetes desechables, que pueden ser utilizados para las pruebas 2. Nota: Coloque la punta de la pipeta directamente en la carga así a ~ 45 ° ángulo de modo que la punta está atrapado bajo el labio delantero del pozo. Cuando la dispensación, es importante que el vacío no "salir adelante" de la dispensación del líquido como podría causar bolsillos de aire entre en la cassette. Se recomienda tener una pequeña gota (el tamaño de entrada así) de forma fluida sobre el pozo durante la dispensación.
4. Para el recuento de células de mamíferos más, toque la pantalla en cualquier lugar para empezar. Para la cuantificación de partículas muy pequeñas (de 4 a 8 micras de diámetro promedio de tipo M y 3-8 micras de diámetro promedio de tipo S), el Z Moxi se puede ejecutar en modo de pequeñas partículas. Nota: el tipo de casete está indicado en la barra de negro en la parte superior de la pantalla. En este modo, Moxi Z establece la escala diámetro de 2 a 10 micras como el valor predeterminado y que realiza el recuento ucantar parámetros optimizados para la detección de células pequeñas. Pulse el botón de CONTACTO AQUÍ Pequeña modo de partículas (el cuadrado negro) para iniciar la prueba y se ejecutan en este modo.
5. El Z Moxi comenzará la prueba y los resultados del conteo de células se completará en aproximadamente 8 segundos (tipo casete M) o 15 segundos (cassette de tipo S).
6. El ajuste de curvas y cálculos MVI comenzará de forma automática y requiere sólo unos segundos adicionales. Cuando un ajuste adecuado se encuentra, los resultados entonces automáticamente se visualiza en la pantalla.
7. Para que el modo de adquisición de apertura de puerta por defecto, presione la curva de ajuste para activar el botón Cuenta en el modo de apertura de puerta.
8. En este punto la casete puede ser retirado de la unidad.

3. Gestión de datos

1. Si la escala sección AutoMode está apagado, los resultados se muestran inicialmente para un recuento de ajuste de la curva en una escala de 2-34 micras de diámetro (tipo cassette M) o 2-26 μm (cassette de tipo S). Si el escalado Automode está activado, entonces el Z Moxi automáticamente la escala del eje horizontal (eje x) para el rango que está más cerca de la anchura de la población curva de ajuste asegurando al mismo tiempo todos los datos de ajuste de curva se muestra.
2. Si la escala sección AutoMode está apagado, para mostrar de forma manual los resultados en una resolución más alta, toque el icono de 2.26 micras (tipo M) o el icono de 2.18 micras (tipo S). Nota: El tipo de casete se indica en el cuadro azul en la parte superior izquierda de la pantalla. Esto se recomienda cuando contando células más pequeñas o partículas para mejorar tanto las capacidades de ajuste de curvas, así como la capacidad del usuario para discriminar visualmente matices de los datos.
3. Al aumentar la resolución horizontal, el botón de escala dinámicamente ajustar para permitir el ciclismo entre los rangos de escala disponibles eje x: 2-34, 2-26, 2-18 y 2-10 micras para el cassette de tipo M, o 2 -26, 2-18, y 2-10 micras de casete Tipo S. Esta función sólo está disponicable bifilar inmediatamente después de un recuento de células.
4. Contar información (células / ml) para el ajuste de curva cerrada o región se muestra en un recuadro negro bajo el lado izquierdo del histograma. El tamaño medio de información de la célula se muestra en el recuadro negro bajo el lado derecho del histograma.
5. El valor monetario se muestra un cuadro azul en la parte superior derecha del histograma. Si la prueba se ejecute en modo de pequeña partícula, el MVI no se aplica y se mostrará como "MVI = SPM". Además, si la concentración de células se encuentra fuera del rango de operación MVI, un mensaje de "MVI = Fuera de rango" en la pantalla.
6. Para guardar el histograma actual, toque en el icono de Hecho. Esto guarda los datos con el nombre de "Prueba de XXX" donde XXX es el número de prueba correspondiente.
7. Para manualmente la puerta del histograma, toque para cambiar el ajuste de curva recuento de los resultados de botón. Esto hace que el modo de adquisición de apertura de puerta por defecto. A continuación, deslice cada marcador de puerta azul para configurar las puertas o toque ºflechas e izquierdo y derecho (aparecen al tocar el marcador de puerta azul) para los ajustes finos de puerta Sólo las células entre los marcadores se cuentan. La escala vertical del histograma se escala automáticamente sobre la base de la amplitud de la población de la curva de ajuste. Para ajustar la escala vertical, deslizar la pantalla hacia arriba o hacia abajo en la región del histograma.
8. Pulse el botón de Cuenta cerrada resultados para devolver la pantalla al modo de ajuste de la curva y que el modo de ajuste de la curva por defecto el modo de adquisición.
9. A continuación, pulse el icono de Listo para guardar los resultados y volver a la pantalla de inicio. Para eliminar los resultados, presione el icono de eliminar en cualquier momento para eliminar permanentemente los resultados de la prueba.

4. Análisis de los datos adquiridos con anterioridad

1. Para abrir una prueba de guardado, pulse el icono de histograma en la pantalla de inicio.
2. Los iconos de hasta nueve histogramas guardados se mostrarán en la pantalla.Pulse el icono apropiado para la prueba de interés o presione la página o hacia abajo los iconos para ver más resultados de la prueba.
3. Cada histograma se abrió, ya sea en el modo de curva de ajuste o el modo de Conde Conde cerrada, dependiendo de cómo se salvó. En el modo de Conde cerrada, los marcadores de activación periódica se puede colocar como desee deslizando cada marcador de puerta azul de forma independiente. Puerta automática al tocar en la cima deseada. Toque para alternar entre el conde cerrada y los modos de ajuste de la curva Conde.
4. Pulse los iconos de zoom y Unzoom para ajustar la escala vertical del histograma. La escala vertical también se puede cambiar verticalmente deslizando un dedo sobre la pantalla de arriba (para aumentar) o hacia abajo (para disminuir).
5. Pulse el icono Eliminar para eliminar permanentemente los resultados de la prueba.
6. Pulse el icono de Listo paracerca de los resultados de la prueba y volver a la pantalla de inicio. (Nota: La vista ampliada no se guardarán.)

5. Transferencia de datos a un PC

1. Los datos pueden transferirse a un PC utilizando la aplicación Moxichart Orflo oa través de transferencia USB conectando el Moxi Z cable USB a un PC o Mac. Para la transferencia de Bluetooth (MoxiChart), en primer lugar determinar el ID de la unidad Bluetooth pulsando en el icono de Bluetooth en la pantalla de inicio de la unidad de Moxi Z.
2. En el ordenador, abra la aplicación MoxiChart y haga clic en el icono Bluetooth en la esquina superior derecha. A continuación, seleccione el dispositivo que corresponde a la identificación de Bluetooth de la Z Moxi y seleccione una carpeta de destino para los archivos subidos.
3. Moxichart se transferirá automáticamente todos los archivos en el directorio especificado a través de la conexión Bluetooth.
4. Los archivos transferidos a través de Bluetooth (MoxiChart) o USB se puede abrir y análisiszado directamente con la aplicación MoxiChart o, debido a que tienen el formato. csv, se pueden abrir directamente en Microsoft Excel u otros programas de análisis de datos para el análisis, además, / personalizado.

6. Los resultados representativos

Para evaluar la precisión y la exactitud de la Z Moxi, los conteos de células HEK-293, células HeLa, CHO-K1, levadura, Jurkat E6-1 células, las células PC12, y de precisión calibrados suspensiones de cuentas, con concentraciones que van desde las células 0-500,000 / ml (Tipo casete M) y 0-2-2.5e ⁶ células / ml (casete Tipo S) se contaron y se compararon mediante un Z2 Coulter y la Z. Moxi Todas las células de mamífero se obtuvieron de la American Type Culture Collection (ATCC) y se cultivó como se ha descrito anteriormente ^7-11. Brevemente, las células fueron cultivadas en suspensión en 75 mm ² frascos de cultivo de tejidos con medios de base de medio RPMI 1640 (Jurkat E6-1, PC12), las células del MEM (HEK-293, HeLa), o F12K (CHO-K1) células. Todos los medios se complementó con10% de suero fetal bovino y 100 U penicillin/100 estreptomicina g. Los matraces se mantuvieron en una incubadora a 37 ° C con 5% de CO _2. Las células se pasaron cada 3 días. Las células de levadura (X5, C. albicans, Vin 13) fueron donados y utilizados de inmediato conforme a lo dispuesto. Las concentraciones iniciales de muestra de ~ 500.000 células / ml para los datos de casetes Tipo M y ~ 2-2.5E ⁶ células / ml para el cassette del Type S se establecieron mediante el Z2 Coulter. Posteriores niveles de concentración teóricos se prepararon mediante diluciones seriadas con tampones fisiológicos (Isoton II o solución salina equilibrada de Hank). En cada concentración, muestras idénticas se midieron por ambos sistemas y se traza una contra la otra. Como se observa en la Figura 2, se produjo una fuerte correlación lineal (Tipo M r ^2> 0,9886, tipo S r ^2> 0,9781) entre los recuentos de todas las muestras. Las concentraciones también se compararon con las concentraciones de células esperados / teórica tanto con la Z y Z2 de la Moxi ( Figura 3) y volvió a demostrar correlaciones lineales fuertes (tipo M r ^2> 0,9758, tipo S r ^2> 0,9774).

Para evaluar la precisión, HEK-293 y el recuento de células HeLa se realizaron con el Z2 Coulter, Moxi Z, y un hemocitómetro. El coeficiente de variación (CV, n = 19) de los recuentos de células utilizando el Moxi Z (tipo cassette M), Z2 Coulter y un hemocitómetro se calcularon con la CV se mide a partir de 5 cuentas separadas en las 200.000-300.000 células por ml de rango. El pequeño CV medio (Figura 4) de la Z Moxi es comparable a la de la Z2 y es representativa de la alto nivel de precisión sólo alcanzable con Coulter tecnologías basadas en recuento.

Dimensionamiento de la precisión del instrumento Moxi Z se evaluó la siguiente a través de la medición de los comprados, esferas de poliestireno de precisión calibrados. Valores medios de tamaño de partícula (n = 5) de Moxi Z se representaron frente tamaños fabricante reportados. Como puede verse in la figura 5, las medidas de Moxi Z siempre coincide con los valores del fabricante con una alta correlación lineal (r ² = 0,9989).

Más allá del tamaño y la información recuento, Moxi Z proporciona un reactivo libre, la evaluación general de salud cultivo celular de mamífero con un índice de viabilidad informó Moxi (MVI) valor. Este índice se genera a partir de una relación entre el número de células en la población de interés con respecto a los recuentos totales de partículas. Para demostrar las capacidades de medición de MVI, las lecturas de MVI (tipo cassette M) en comparación con el manual de normas y de citometría de flujo en vivo / muerto técnicas de medición. Las poblaciones de los muertos (<10% viable) HEK-293 y las células HeLa fueron creados a través de las incubaciones durante la noche de las células vivas en un fluoruro de sodio en nutrientes libre, que contiene el diluyente (Isoton II, Beckman Coulter) a 37 ° C. Controlar los niveles de viabilidad teórica fueron preparados por ratiometrically concentraciones conocidas de la mezcla de células vivas y muertas. Res.ulting soluciones fueron analizadas para niveles de viabilidad por duplicado con los recuentos de ambos hemocitómetro y las mediciones del citómetro de flujo. Mediciones hemocitómetro se hicieron usando una tradicional mezcla 50/50 de 0,1% de solución azul de tripano y las células. Mediciones de citometría de flujo se hicieron usando un citómetro de Guayaba PCA (Merck) utilizando el reactivo Viacount y el fabricante especifica-protocolo (Merck). Como se muestra en la Figura 6, los valores de correlación de Pearson (R ²⁾ "del ajuste lineal de los datos MVI a análogos porcentajes hemocitómetro viabilidad para" células HEK y células HeLa fueron de r ² = 0,9937 y ² r = 0,9728, respectivamente. Estos resultados demuestran que este enfoque proporciona información de referencia cultural de la salud a través de una amplia gama de viabilidades celulares que se comparan favorablemente con las mediciones en vivo / muerto obtenidos mediante un citómetro de flujo o un hemocitómetro.

Tablas y Figuras (De Dittami et al, 2011). ^15:

Figura 1. De película delgada Conteo Coulter: La corriente eléctrica pasa a través de la Zona de la célula de detección de la casete de película delgada. Como las células fluir único archivo a través de la CSZ, los aumentos momentáneos de voltaje se miden por el Z. Moxi

Figura 2. Moxi recuentos Z son comparables a Coulter Z2 recuentos. Recuentos idénticas de suspensiones de células y el talón se contaron usando tanto un Z2 Coulter y la Z. Moxi Promediado valores de recuento (n = 3-4) de los recuentos de Moxi Z se representan con respecto a la Coulter Z2 correspondientes cuentas y valores de r ² del ajuste lineal se determinaron. A) Tipo M casete - intervalo de concentración de 0 - 500.000 células / ml. B) Tipo de cassette S - rango de concentración de 0 - 2-2.5E ^{6 /} Bares ml.Error indican ± 1 desviación estándar.

Figura 3. Moxi mediciones de concentración de Z vs concentraciones teóricas de células. A) Tipo de cassette M - Los valores teóricos de concentración fueron preparados a partir de diluciones seriadas de una cantidad inicial de 500.000 células / ml de muestra B) Tipo S de cassette -. Los valores teóricos de concentración fueron preparados a partir de diluciones seriadas de un inicial 2 - 2.5E ⁶ células / ml de muestra. Barras de error indican ± 1 desviación estándar.

Figura 4. Coeficiente de variación para el Z2 Coulter, Moxi Z (tipo cassette M), y el hemocitómetro. El coeficiente de variación (CV, n = 19) de HEK-293 y el recuento de células HeLa para cada método se calcularon con CV medidos a partir de 5 por separado cargos de HEK-293 y las células HeLa en el 200.000 - 300.000 células por ml de rango. Barras de error indican ± 1 desviación estándar.

Figura 5. La precisión de las mediciones de tamaño de partícula usando Moxi Z-Moxi Z mide el tamaño de grano (tipo cassette M) vs fabricante informó de tamaño de las perlas. Barras de error indican ± 1 desviación estándar.

Figura 6. Cultura Evaluación de la Salud con MVI - Comparación de las mediciones de MVI (tipo cassette M) y la viabilidad de Guayaba PCA Viacount frente visuales, del azul tripán cuenta la viabilidad teñidas utilizando un hemocitómetro.

Discusión

La aplicación del enfoque subyacente Coulter pueden ser altamente determinista de la precisión global de las mediciones. Un área crítica es la corrección de los recuentos de células primas para "eventos coincidencia" donde dos o más células simultáneamente pasan a través de la abertura y se mide como un evento eléctrico único. "Eventos coincidencia" contribuir a un error que varía en función de un número de factores incluyendo el tamaño celular y el grado de agrupamiento (Davis et al 1967) ^6. Como resultado, la corrección de coincidencia necesaria para cualquier muestra dada no se puede predecir, variando ampliamente entre tipos de células / partícula e incluso entre diferentes culturas de tipos de células idénticas. Establecido teoría, basada en las publicaciones iniciales por Coulter, consiste en aplicar un ajuste logarítmica de los recuentos primas basadas en el número de eventos observados y una determinada empíricamente, de partícula específica del factor de corrección, z. Si bien el número exacto puede ser realizado con la tel algoritmo de corrección, se limita en su aplicación práctica, debido a las grandes variaciones en los valores de z entre tipos de células y la correspondiente dificultad en predecir con exactitud su valor. Aquí, utilizando la "verdadera" recuento de células identificadas por el ajuste de la curva Moxi Z en conjunción con el algoritmo de corrección de coincidencia, el Z Moxi dinámicamente corrige coincidencia para alcanzar las concentraciones reales. En comparación con los resultados obtenidos con alta gama Coulter Z2, el Z Moxi cuenta comparables producidas a través de un rango de concentración de 0 a 500.000 células / ml (tipo cassette M) y 3000 - 2-2.5E ⁶ células / ml (cassette de tipo S) . Además, el Z Moxi logra esta precisión recuento con un coeficiente bajo similar de variación en los recuentos y una precisión en partículas de tamaño que es característico del patrón oro, Coulter-técnica en el recuento de células.

Por otra parte, los datos presentados aquí indican que la Z Moxi pueden proporcionar información valiosacon respecto a la salud general de los cultivos celulares. El Z Moxi aprovecha el enfoque de ajuste de curvas con un algoritmo de software propietario para determinar esta evaluación de seguridad y salud. Los cambios morfológicos asociados con la muerte celular, como blebbing, separándose y distorsiones volumétricas (Kataoka y Tsuruo 1996, Liegler et al 1995, Sheridan et al 1981) ^12-14, hacen posible que el Moxi-Z para distinguir las diferencias entre los impedimetric viven las poblaciones y las poblaciones de células muertas / escombros. El valor monetario es generado por el análisis de la distribución del tamaño de la cultura / partícula para identificar las contribuciones relativas de partículas de desechos, reducidos células necróticas, y la curva de la población equipada célula de interés. El valor MVI lo refleja un índice de población o medida radiométrica de los recuentos de población monodispersas con respecto al perfil de partícula población general. Este valor se hace mediante algoritmos ajustados en función de las estadísticas basadas en la población y las observaciones empíricas. Because la MVI mira a otros parámetros que los enfoques de tinción tradicionales, no se espera para duplicar estas técnicas sino que proporciona una vista alternativa valiosa en la salud de un cultivo de células, particularmente con respecto a los restos y contaminantes microbianos.

En resumen, el contador de células Moxi-Z es un instrumento de ultra sobremesa pequeño que proporciona ensayos precisas y reproducibles de recuento de células, el tamaño de celda, y la salud de células utilizando el Principio Coulter y de ajuste de curvas algoritmos de software combinada con una tecnología de sensores patentada de película delgada . Con el cassette de tipo M es capaz de contar partículas que van desde 4 - 25 micras de diámetro (rango dinámico de 2 - 34 micras), en 8 segundos. Con el casete Tipo S es capaz de contar partículas que van desde 3 - 20 micras de diámetro (rango dinámico de 2 - 26 micras), en 15 segundos. Además, el Moxi-Z lleva a cabo evaluaciones de salud sin el uso de reactivos. Es inte mucho menos trabajonsive y subjetivos que el recuento manual. En comparación con la norma recuento Coulter, la Moxi es más rápido, significativamente menor, proporciona más información, requiere un mantenimiento considerablemente menor, es más fácil de usar, y es una fracción del coste.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Nombre del reactivo	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
ORFLO diluyente	ORFLO	MXA006
Casete dispensador	ORFLO		Almacena hasta 25 casetes para una cómoda dosificación
Cable USB	ORFLO		Conecta instrumento para PC / Mac o adaptador de corriente
Adaptador de corriente (modelos de Estados Unidos y la Unión Europea solamente)	ORFLO		Conecta el cable USB a una toma de CA
USB Flash Drive	ORFLO		Tiendas Moxi Z de software y manual del usuario
Cuentas Calibration Check	ORFLO
Cassette de calibración electrónica	ORFLO		Cassette de electrónica para verificar el funcionamiento correcto del sistema y de calibración