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1. Preparación del ADN de plantilla y la transcripción in vitro
- El gen de interés se clona en cualquier T7 y / o, por ejemplo promotor SP6 basado plásmido. Para obtener RNC de interés, C-terminal de la meta de polipéptido se extiende mediante la adición de secuencia detención inductor de SecM FXXXXWIXXXXGIRAGP 7. Con el fin de asegurar que el fragmento de polipéptido de interés fluirá hacia fuera del túnel ribosómico, la parte C-terminal de la proteína diana tiene que extenderse por lo menos 30 aminoácidos 12-14. Un flexible glicina-serina enlazador rica puede introducirse entre la proteína y la secuencia de detención SecM para evitar cualquier restricciones conformacionales posibles.
- Para la transcripción in vitro, el ADN plantilla debería ser linealizado con la enzima de restricción de corte aguas abajo de la ORF. Uno tiene que verificar linealización completa del ADN de plásmido mediante la ejecución del producto de digestión de restricción en la electroforesis en gel de agarosa.
- El plasma linealizadoIdentificación se utiliza además para reacción de transcripción in vitro. Diferentes concentraciones de ADN molde se puede analizar para determinar las concentraciones de ADN óptima requerida para la transcripción in vitro. Por lo general, con Megascript Kit de alta Ambion de transcripción rendimiento (Ambion / Life Technologies, Grand Island, NY), 1 mg de ADN linearizado produce ARNm 40-60 g. En la transcripción in vitro se realiza siguiendo las instrucciones del fabricante (Ambion / Life Technologies, Grand Island, NY) .
- Tras la transcripción in vitro, el ARNm se purifica por precipitación de cloruro de litio de acuerdo con las instrucciones del fabricante (Megascript Kit de alta Ambion de transcripción rendimiento, Ambion / Life Technologies, Grand Island, NY).
- integridad ARNm se ve verificada por electroforesis utilizando acrilamida o geles de agarosa.
2. Traducción in vitro
Para la traducción in vitro utilizando la estrategia en tiempo real de E. coli 100 HY Kit (5 Prime, Gaithersburg, MD), siga los siguientes pasos:
- Preparar 100 l de instrucción de la traducción in vitro fabricante de la reacción siguiente. En pocas palabras, en agua libre de nucleasa añadir 24 l mezcla de aminoácidos menos metionina (1 mM), 10 unidades de inhibidor de la ribonucleasa (Invitrogen / Life Technologies, Grand Island, NY), 20 Ci de los desechos radiactivos [35 S] MP Biomedicals-metionina (, Solon, OH), 20 l mezcla de reacción, 24 tampón Reconstitución l y 24 l de E. E. lisado.
- Incubar la reacción a 30 ° C durante 5 min para pre tibia la reacción de traducción. Añadir 1-2 g de ARNm para la reacción de traducción y se incuba a 30 ° C durante 10-15 minutos.
- Se detiene la reacción mediante la colocación de la reacción de traducción en hielo.
3. Aislamiento de polipéptido naciente de reacción de traducción in vitro
- Para aislar RNC, la reacción de traducción se coloca sobre la parte superior de 4,5 ml de gradiente 5-30% de sacarosa en 20 mM de HEPES-KOH pH 70,5, 15 mM de MgCl 2, 100 mM de acetato de potasio, DTT 1 mM y se centrifugó utilizando Beckman Coulter SW55-Ti rotor a 41.000 rpm, 4 ° C durante 2 horas.
- Tras la centrifugación, el gradiente de sacarosa se fracciona para aislar diferentes poblaciones ribosomal y asociados cadenas nacientes. La separación se controla mediante el sistema de la CIUO programable, con gradiente de densidad de grabación continua a 254 nm utilizando un detector de la CIUO UA-6 absorbancia.
- La fracción (s) que contiene 70 ribosomas se recogen y analizan más dependiendo de la finalidad del experimento.
4. La observación de proteína unida a ribosoma con Tris-tricina SDS-PAGE
Para comprobar, si la proteína extendida SecM permanece unida al ribosoma 70S, las fracciones del gradiente se recogieron y se trataron como sigue:
- La proteína en cada fracción se precipita por adición de ácido tricloroacético (TCA) a una concentración final de 10% y se incubaron a 4 ° C overniGHT.
- Después de la incubación durante la noche, las muestras se centrifugaron a 14.000 X g durante 15 minutos para sedimentar la proteína. Después de la centrifugación el sobrenadante se eliminó y el sedimento se lavó dos veces con acetona solución que contiene: 1 mM Tris-HCl pH 7,6 (04:01). Pellet era aire más seca y se disuelve en tampón de carga de SDS-PAGE.
- La muestra tratada se resolvió y se analizaron por Tris-tricina SDS-PAGE.
- Después de la electroforesis, los geles se fijaron, se secó al vacío utilizando gel de tintorero y se sometió a autorradiografía. La distribución de los polipéptidos nacientes se observaron utilizando phosphoimaging.
5. Los resultados representativos
Aquí presentamos un experimento que describe el aislamiento de la longitud completa de bovino gamma-B Cristalina establemente unido a ribosoma 70S. La Figura 1 muestra los pasos implicados en el aislamiento de las especies bovina B gamma-RNC cristalinas. El C-terminal de la Cristalina gamma-B se extiende en general por 32 aminoácidos to asegurar que las extrusiones proteína de longitud completa fuera del túnel ribosomal, lo que también incluye la secuencia SecM estancamiento colocado en la misma C-terminal del polipéptido de fusión. Después de la traducción in vitro, los ribosomas 70S se aislaron por centrifugación en gradiente de sacarosa (Figura 2.1). Con el fin de asegurar que la proteína se mantiene establemente unido al ribosoma, 70S que contienen fracciones se agruparon, tampón desalado, intercambio y se sometió a una ronda adicional de centrifugación en gradiente de sacarosa (Figura 2.2). El resultado presentado en la figura 2 indica claramente que SecM de manera eficiente puede inducir la detención de traslación de las RNC B Gamma-cristalina.

Figura 1. Explicación esquemática de los pasos implicados en el aislamiento de RNC. C-terminal de bovino gamma-B Cristalina se extendió por 32 secuencia de aminoácidos. Esto se extendíaC-terminal de las regiones también incluye la secuencia de detención SecM. Gamma-B Cristalina con la secuencia se clonó en SecM Pivex 2,3 (T7 basado) plásmido. Para la transcripción in vitro del ADN molde se linealizó por digestión con XbaI. Plantilla linealizado fue utilizado además para la transcripción in vitro. El T7 en la plantilla de ADN es reconocida por la RNA polimerasa T7 que transcribe las aguas abajo gamma-B de genes localizados Cristalina del promotor T7. ARNm se purificó utilizando cloruro de litio método de precipitación. El mRNA purificado se utiliza entonces para la traducción in vitro. Después de la incubación, la reacción de traducción se estratificó en la parte superior del gradiente de 5-30% de sacarosa y se centrifuga en Beckman Coulter SW55-Ti rotor a 41.000 rpm, 4 ° C durante 2 horas.

Figura 2. El aislamiento de las especies bovina Gamma-B Cristalina RNC establemente unido al ribosoma 70S. 1 mRNA g se mezcló en la reacción de 100 l E. E. Sistema de extracto S30 tal como se menciona en la sección de protocolo con 20 Ci [35 S]-metionina y se incubaron a 30 ° C durante 15 min. Después de la incubación, la reacción de traducción se estratificó en la parte superior del gradiente de 5-30% de sacarosa en 20 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, 15 mM de MgCl 2, 100 mM de acetato de potasio, DTT 1 mM y se centrifugó en Beckman Coulter SW55-Ti rotor a 41.000 rpm, 4 ° C durante 2 horas. Tras la sedimentación velocidad, el gradiente se descargó y el ribosoma Le Pro se obtuvo. Los datos fueron registrados por el programa PeakTrak (gradiente CIUO gradiente de densidad sistema de fraccionamiento). Se recogieron las fracciones, la proteína fue TCA precipitó y se resolvieron en T 16,5%, 6% de C Tris-Tricina PAGE gel 15. El gel se seca y se expone a autorradiografía. Tras la exposición del gel fue escaneada con Typhoon 9410 escáner de imágenes. La figura 2.1 muestra que la longitud completa de Gamma-B Cristalina está presente en las fracciones 70S del ribosoma. Por lo tanto, la secuencia SecM estancamiento permite el aislamiento de las especies bovina estables B Gamma-RNC cristalinas. Los datos de la Figura 2.2 indican claramente que los RNC aislados son de hecho estable. En el presente experimento las fracciones 70S después de la primera ronda de centrifugación en gradiente de sacarosa se agruparon y la sacarosa se eliminó utilizando Amicon Ultra-4 Unidad centrífuga filtro (Millipore), seguido por tampón de cambio en solución que contenía 20 mM de HEPES-KOH, pH 7,5, 15 mM MgCl 2, 100 mM de acetato de potasio, 1 mM DTT. Esta muestra fue sometida además a una ronda adicional de centrifugación a través de gradiente 5-30% de sacarosa y se fraccionó. Cada fracción fue tratada y analizada como en la Figura 2.1.