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Artículo de método

Captura selectiva de 5-hidroximetilcitosina a partir de ADN genómico

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DOI:

10.3791/4441

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5 de octubre de 2012

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En este artículo

Resumen

Se describe un proceso de etiquetado en dos etapas utilizando β-glucosiltransferasa (β-GT) para transferir una azida-glucosa al 5-HMC, seguido de química para transferir un enlazador de biotina para el enriquecimiento fácil y densidad independiente. Este método de marcaje eficaz y específico permite el enriquecimiento de 5-HMC con fondo extremadamente bajo y de alto rendimiento de mapeo epigenómico a través de secuenciación de próxima generación.

Resumen

5-metilcitosina (5-mC) constituye ~ 2-8% de las citosinas en el total de ADN genómico humano y afecta a una amplia gama de funciones biológicas, incluyendo la expresión génica, el mantenimiento de la integridad del genoma, impronta parental, inactivación del cromosoma X, la regulación de desarrollo, el envejecimiento y el cáncer 1. Recientemente, la presencia de un oxidó 5-MC, 5-hidroximetilcitosina (HMC-5), fue descubierto en células de mamífero, en particular en madre embrionarias (ES) de células y células neuronales 2-4. 5-HMC es generada por la oxidación de 5-mC catalizada por TET familia del hierro (II) / α-cetoglutarato dependiente de dioxigenasas 2, 3. 5-HMC es propuesto para que participen en el mantenimiento de la madre embrionarias (ES) de células, la hematopoyesis normal y tumores malignos, y cigoto desarrollo 2, 5-10. Para comprender mejor la función de 5-HMC, un sistema de secuenciación fiable y sencilla es esencial. Secuenciación de bisulfito tradicionales no pueden distinguir 5 HMC de 5-MC 11 12.

Aquí se describe un sencillo procedimiento en dos etapas para el etiquetado de productos químicos selectivos de 5-HMC. En la primera etapa de etiquetado, 5-HMC en el ADN genómico se marca con un catalizada 6-azida-glucosa por β-GT, una glucosiltransferasa a partir del bacteriófago T4, de una manera que transfiere el 6-azida-glucosa al 5-HMC de la modificado cofactor, UDP-6-N3-Glc (6-N3UDPG). En la segunda etapa de biotinilación,, un enlazador disulfuro de biotina se une al grupo azida por la química clic. Ambas etapas son altamente específicos y eficiente, llevando a completar el etiquetado independientemente de la abundancia de la 5-HMC en regiones genómicas y dando fondo extremadamente bajo. Después de biotinilación de 5-HMC, los fragmentos de ADN de 5 HMC que contienen son entonces selectivamente capturadoutilizando perlas de estreptavidina de una manera independiente de la densidad. El resultante 5-HMC enriquecidos con fragmentos de ADN se podría utilizar para los análisis posteriores, incluyendo secuenciación de próxima generación.

Nuestra etiquetado selectivo y protocolo de captura confiere una alta sensibilidad, aplicable a cualquier fuente de ADN genómico con variables / diversa 5-HMC abundancias. Aunque el propósito principal de este protocolo es su aplicación aguas abajo (es decir., Secuenciación de próxima generación para mapear la distribución de 5-HMC en el genoma), es compatible con una sola molécula, en tiempo real SMRT (ADN) secuenciación, que es capaz de ofrecer una sola base de secuenciación resolución de 5-HMC.

Protocolo

1. Fragmentación de ADN genómico

El fragmento de ADN genómico utilizando sonicación a un intervalo de tamaño deseado adecuado para la plataforma de secuenciación de todo el genoma. (Por lo general, sonicar a ~ 300 pb.) Verificar la distribución del tamaño del ADN genómico fragmentado en 1% de gel de agarosa (Figura 1).

2. Preparación de ADN

Determinar las cantidades de ADN de partida basado en la abundancia de la 5-HMC en el ADN genómico. Dado que los niveles de 5-HMC varían significativamente en diferentes tipos de tejidos, a partir cantidades de ADN dependen de los n....

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Discusión

5-hidroximetilcitosina (HMC-5) es un presente identificado recientemente modificación epigenética en cantidades sustanciales en ciertos tipos de células de mamíferos. El método presentado aquí es para determinar la distribución en todo el genoma de la 5-HMC. Usamos bacteriófago T4 β-glucosiltransferasa para transferir un resto de glucosa de ingeniería que contiene un grupo azida en el grupo hidroxilo de la 5-HMC. El grupo azida se pueden modificar químicamente con biotina para la detección, enriquecimiento de afinidad, .......

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Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Este estudio fue apoyado en parte por los Institutos Nacionales de la Salud (GM071440 a CH y NS051630/MH076090/MH078972 a PJ).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Nombre Empresa Catálogo Comentario
Reactivos
El cloruro de sodio 5 M (NaCl) Promega V4221
0,5 M pH 8,0 ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) Promega V4231
Trizma base 1 M (Tris), pH 7,5 Invitrogen 15567-027)
HEPES 1 M, pH 7,4 Invitrogen 15630
Cloruro de magnesio (MgCl 2) 1M Ambion AM9530g
Sulfóxido de dimetilo (DMSO) Sigma D8418
Tween 20 Fisher BioReagents BP337-100
DBCO-SS-biotina-conjugado PEG3 Haga clic en Herramientas Química A112P3
1,4-ditiotreitol, ultrapura (TDT) superpuro Invitrogen 15508-013
QIAquick Kit de eliminación de nucleótidos Qiagen 28304
Micro Bio-Spin 6 Columna Bio-Rad 732-6222
Dynabeads MyOne Invitrogen 650-01
Estreptavidina C1
Qiagen MinElute PCR Purification Kit Qiagen 28004
UltraPure agarosa Invitrogen 16500500
UDP-6-N 3-glucosa Active Motif 55013
Enzima
β-glucosiltransferasa (β-GT) New England Biolab M0357
Equipo
La sonicación dispositivo Covaris
Escritorio centrífuga
Baño de agua Fisher Scientific
Gel corriendo aparato Bio-Rad
NanoDrop1000 Thermo Scientific
Labquake Tube Shaker Barnstead
Labquake Tube Shaker Thermolyne
Soporte Separación Magnética Promega Z5342
Qubit 2,0 Fluorómetro Invitrogen
Reactivo de configuración 10 X β-GT de tampón de reacción (500 mM de HEPES pH 7,9, 250 mM de MgCl 2) 2 X Encuadernación y lavado (B & W) tampón (10 mM Tris pH 7,5, 1 mM EDTA, 2 M de NaCl, 0,02% Tween 20) .

Referencias

  1. Jaenisch, R., Bird, A. Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals. Nat. Genet. , Suppl 33. 245-254 (2003).
  2. Ito, S. Role of Tet proteins in 5mC to 5hmC conversion, ES-cell s....

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