Proporcionamos un método reproducible para inducir la diabetes tipo 1 (DM1) en ratones dentro de dos semanas por la transferencia adoptiva de células del islote T específicas de antígeno, células CD4 + primarias.
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Artículo de método
Proporcionamos un método reproducible para inducir la diabetes tipo 1 (DM1) en ratones dentro de dos semanas por la transferencia adoptiva de células del islote T específicas de antígeno, células CD4 + primarias.
El ratón diabético no obeso (NOD) desarrolla espontáneamente diabetes autoinmune después de 12 semanas de edad y es el modelo animal más ampliamente estudiado de humano de tipo 1 diabetes (DM1). Estudios de la transferencia de células en ratones receptores irradiados han establecido que las células T son esenciales en la patogénesis de DT1 en este modelo. Se describe en este documento un método simple para inducen rápidamente DT1 por transferencia adoptiva de purificado, las células T de ratones NOD prediabéticos transgénicos para el receptor de células T islote-específico (TCR) BDC2.5 en ratones receptores NOD.SCID CD4 + primarias. Las principales ventajas de esta técnica son que el aislamiento y transferencia adoptiva de células T diabetogénicos se puede completar en el mismo día, no se requiere la irradiación de los destinatarios, y una alta incidencia de diabetes tipo 1 está provocada dentro de 2 semanas después de la transferencia de células T. Por lo tanto, los estudios de la patogénesis y las intervenciones terapéuticas en DT1 puedan tener lugar a un ritmo más rápido que con los métodos que se basan en poblaciones de células T heterogéneas o clonesderivados de ratones NOD diabéticos.
El ratón NOD desarrolla la diabetes autoinmune espontánea y ha sido ampliamente utilizado como un modelo animal para el 1,2 DT1 humana. Patogénesis de la diabetes tipo 1 en ratones NOD se caracteriza por la infiltración, a partir de las 3-4 semanas de edad, de los islotes de Langerhans del páncreas por las células dendríticas y los macrófagos, seguido por las células T y B. Esta fase de no destructiva peri-insulitis conduce a una destrucción lenta y progresiva de las células β pancreáticas productoras de insulina, lo que resulta en la diabetes manifiesta por 4-6 meses de edad de 3 años. La transferencia de esplenocitos CD4 + 4,5, 6,7 ....
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1. Aislamiento de células T del bazo y los ganglios linfáticos de los ratones BDC2.5
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Nuestros resultados muestran el aislamiento de células transgénicas que expresan CD62L BDC2.5, lo cual es crítico para las células T a casa a los órganos linfoides secundarios tales como los ganglios linfáticos pancreáticos. Nuestros resultados demuestran una vez más la potente capacidad de esta población de células T monoespecíficos para transferir rápida y eficazmente DT1 a ratones receptores NOD.SCID.
Aislamiento de células T procedentes de ratones BDC2.5 CD4 + diabetogénicos se muestra e.......
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DT1 puede ser inducida en ratones receptores a diferentes eficiencias de la transferencia adoptiva de células de bazo completas o subconjuntos de células T de ratones NOD diabéticos o ratones transgénicos para TCR derivados de clones de células T diabetogénicos. Presentamos aquí un método reproducible para inducir la diabetes tipo 1 en ratones receptores dentro de dos semanas en el 100% de incidencia mediante la transferencia de FACS purificados por CD62L + BDC2.5 células T CD4 + en ratones transgénicos NOD.SCID.
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Todos los animales fueron alojados en el Colegio de instalación libre de patógenos específicos Medicine (SPF) de conformidad con las directrices del Estado de Penn Institucional Cuidado de Animales y el empleo Comisión Estatal de Pensilvania.
Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.
Agradecemos a los Dres. Robert Bonneau y Neil Christensen por sus valiosos comentarios.
Este trabajo fue apoyado por Pennsylvania State University College of Medicine fondos.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Ratones nod transgénicos BDC 2.5 TCR (NOD. Cg-Tg(Tcr&alfa; BDC 2.5, Tcrβ BDC 2.5) | JAX | 004460 | |
| NOD. Los ratones SCID (NOD. CB17-Prkdcscid/J) | JAX | 001303 | |
| Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) | Themo Scientific | SH30022.01 | |
| Bayer Diastix | Fisher Scientific | AM2803 | |
| 15 ml tubos cónicos | Falcon | 352095 | |
| 50 ml tubos cónicos | Falcon | 352070 | |
| quirúrgicas estériles | |||
| Tijeras estériles de par pequeño | |||
| par grande | |||
| 70 μ Fisher | Scientific | 22363548 | |
| 35 μ m tubos de tapón de filtro de células | BD Biosciences | 352235 | |
| cloruro-potasio (ACK) | 0,15 M NH4Cl, 1 mM KHCO3, 0,1 mM Na2EDTA, pH 7,2 en dH2 | ||
| O BD FACSFlowTM fluido | |||
| FACS | PBS, 0,2 mM EDTA, 0,5% BSA/FCS, esterilizado | ||
| por filtro Microscopio | |||
| Azul | |||
| Hemocitómetro | |||
| Anti-CD4 (APC) mAb | Biolegend | 1005616 | clon RM4-5 |
| Anti-TCR Vβ 4 (FITC) mAb | BD Biosciences | 553365 | clon KT4 |
| Anti-CD62L (PE) mAb | BD Biosciences | 553151 | clon MEL-14 |
| Clasificador de células | BD Biosciences | p. ej. BD FACSAria III | |
| Lámpara | |||
| Ratón | |||
| Anillos de retención de 1 ml | Becton Dickinson | 309602 | |
| 18-1½ agujas de calibre (estériles) | Becton Dickinson | 305196 | |
| 27½ agujas de calibre (estériles) | Becton Dickinson | 305109 |
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