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Artículo de método

Determinación de la actividad enzimática extracelular microbiana en aguas, suelos y sedimentos de los que utilizan y alto rendimiento de microplacas Ensayos

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DOI:

10.3791/50399

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1 de octubre de 2013

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En este artículo

Resumen

Procedimientos basado en una microplaca se describen para el análisis colorimétrico o fluorométrico de la actividad enzimática extracelular. Estos procedimientos permiten el rápido ensayo de tal actividad en un gran número de muestras del medio ambiente dentro de un marco de tiempo manejable.

Resumen

Gran parte de la ciclo de los nutrientes y el procesamiento de carbono en ambientes naturales se produce a través de la actividad de las enzimas extracelulares liberados por microorganismos. Por lo tanto, la medición de la actividad de estas enzimas extracelulares puede dar una visión de los tipos de procesos a nivel de ecosistema, como la descomposición de la materia orgánica o mineralización del nitrógeno y el fósforo. Los ensayos de actividad de la enzima extracelular en muestras ambientales normalmente implican la exposición de las muestras a sustratos colorimétricos o fluorométricos artificiales y el seguimiento de la tasa de hidrólisis del sustrato. Aquí se describen los métodos de microplacas basado para estos procedimientos que permiten el análisis de un gran número de muestras dentro de un corto período de tiempo. Las muestras se dejan reaccionar con sustratos artificiales dentro de microplacas de 96 pocillos o de pozo profundo bloques de la microplaca, y la actividad enzimática se determina posteriormente por absorción o fluorescencia del producto final resultante usando un Reade típica de microplacasr o fluorómetro. Tales procedimientos de alto rendimiento no sólo facilitan las comparaciones entre sitios espacialmente separados o ecosistemas, sino que también reducen sustancialmente el coste de dichos ensayos, reduciendo los volúmenes totales de reactivos necesarios por muestra.

Introducción

Los microorganismos tales como bacterias y hongos obtienen los nutrientes y de carbono a partir de compuestos orgánicos complejos a través de la producción de enzimas extracelulares. Estas enzimas hidrolizan típicamente polímeros en subunidades más pequeñas que se pueden tomar en la célula. Por lo tanto, a nivel ecológico, estas enzimas extracelulares microbianos son responsables de gran parte de la mineralización de nutrientes y la descomposición de la materia orgánica que se produce en entornos naturales. Las enzimas tales como celobiohidrolasa (CBH) y β-glucosidasa son importantes para la degradación de la celulosa y el trabajo al unísono para catalizar la hidróli....

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Protocolo

Análisis colorimétrica de la actividad enzimática extracelular en suelos y sedimentos

1. Preparación del substrato y Soluciones tampón para análisis colorimétricos de actividad enzimática

  1. H Preparar 50 mM de tampón de acetato (pH 5.0-5.5) mediante la mezcla de 50 ml de 0.1 M de ácido acético (2,87 ml de ácido acético glacial en 500 ml de agua), 150 ml de acetato de sodio 0,1 M, y 200 ml de agua destilada 2 O. Ajustar el pH a 5,0-5,5 con ácido acético 0,1 M si es necesario.
  2. Preparar una solución de 1 M de hidróxido de sodio (NaOH) en H2O destilada
  3. Preparar soluciones de sustrato NP-linked <....

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Resultados

Los suelos y sedimentos acuáticos suelen tener niveles apreciables de actividad enzimática extracelular como resultado de las comunidades microbianas adjuntos (biofilms) que crecen en la superficie de las partículas. Figura 3 muestra cómo esta actividad cambia en función del tamaño de las partículas obtenidas del sedimento superficial de un tercer corriente de orden en el norte de Mississippi, EE.UU.. Un estudio previo ha demostrado que las comunidades bacterianas en las partículas de sedimento de esta .......

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Discusión

La determinación de la actividad de una variedad de enzimas extracelulares microbianas en suelos y sedimentos puede proporcionar información útil sobre las tasas de mineralización de nutrientes y de procesamiento de materia orgánica 17. Sin embargo, los suelos pueden varían en sus niveles de humedad, por lo que es importante normalizar la actividad de peso en seco del suelo. Esto requiere una etapa de secado adicional (normalmente dos días) más allá de la simple medición de la actividad enzimática. Por lo tan.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Agradecimientos

La financiación de los aspectos de este trabajo fue proporcionada por diversas fuentes, incluyendo el Departamento de Agricultura de los Estados Unidos del Acuerdo de Cooperación Específico 58-6408-1-595 y la Fundación Nacional de Ciencia (premio 1.049.911).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
REACTIVOS Y MATERIALES
ÁcidoVarios proveedores
AcetatoVarios proveedores
Hidróxido deVarios proveedores
p-NitrofenolFisherBP612-1Alternativas disponibles
p-Nitrofenilo (pNP)-fosfatoSigmaN3234pNP-substrate
pNP-β-glucopiranósidoSigmaN7006pNP-sustrato
pNP-β-N-acetilglucosaminidaSigmaN9376p Sustrato NP
Microplacas transparentes de 96 pocillosFisher12-563-301Alternativas disponibles
Bloques de pocillos profundos de 96 pocillosCostar3958Alternativas disponibles
Bandejas de pesaje deVarios proveedores
Tubos de centrífuga estériles deVarios proveedores
Tubos de centrífuga estériles de50 mlVarios proveedores
4-MetilumbeliferonaSigmaM1381
4-Metilumbeliferol (MUB)-fosfatoSigmaM8883MUB-sustrato
4-MUB-glucopiranósidoSigmaM3633MUB-sustrato
4-MUB-N-acetilglucosaminidaSigmaM2133MUB-sustrato
BicarbonatoVarios proveedores
Microplaca negra de 96 pocillosCostar3792
DepósitoVarios proveedores
EQUIPMENT
CentrífugaEppendorf5810R
Rotor centrífugoEppendorfA-4-81Para microplacas/bloques de pocillos profundos
Lector de microplacasBioTekSynergy HTAlternativas disponibles
Fluorómetro de microplacasBioTekFLx 800Alternativas disponibles
PipetaVarios proveedores
acético glacial de sodio sodio aluminio 15 ml de sodio de pipeta de 8 canales

Referencias

  1. Ljungdahl, L. G., Eriksson, K. -E. Ecology of microbial cellulose degradation. Advances in microbial ecology. 8, 237-299 (1985).
  2. Sinsabaugh, R. L., Antibus, R. K., Linkins, A. E., Mclaugherty, C. A., Rayburn, L., Repert, D., Weiland, T. Woo....

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