Aquí describimos un procedimiento para obtener imágenes de complejos virales en líquido a resolución nanométrica utilizando un microscopio electrónico de transmisión.
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Artículo de método
* These authors contributed equally
Aquí describimos un procedimiento para obtener imágenes de complejos virales en líquido a resolución nanométrica utilizando un microscopio electrónico de transmisión.
Los investigadores utilizan regularmente microscopios electrónicos de transmisión (MEE) para examinar las entidades biológicas y evaluar nuevos materiales. Aquí, describimos una aplicación adicional para estos instrumentos: ver conjuntos virales en un ambiente líquido. Este método emocionante y novedoso de visualizar estructuras biológicas utiliza un soporte de espécimen a base de microfluídicos recientemente desarrollado. Nuestro artículo en video demuestra cómo ensamblar y usar un soporte microfluídico para obtener imágenes de especímenes líquidos dentro de un TEM. En particular, utilizamos partículas de doble capa (DLPs) de rotavirus simios como nuestro sistema modelo. También se describen los pasos para recubrir la superficie de la cámara líquida con biopelículas de afinidad que atar DLPs a la ventana de visualización. Esto nos permite obtener imágenes de ensamblajes de una manera que es adecuada para la determinación de la estructura 3D. Por lo tanto, presentamos una primera visión de partículas subvirales en un ambiente líquido nativo.
Un objetivo común de los biólogos e ingenieros es comprender el funcionamiento interno de las máquinas moleculares. Los microscopios electrónicos de transmisión (TEMs) son instrumentos ideales para visualizar estos intrincados detalles a una resolución casi atómica1-2. Con el fin de sostener el sistema de alto vacío de un TEM, las muestras biológicas se incrustan típicamente en películas delgadas de hielo vítreo3,azúcares4,sales de metales pesados5,o alguna combinación de las mismas6. Como resultado, las imágenes de especímenes incrustados pueden revelar sólo instantáneas limitadas de procesos dinámicos.
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1. Preparar dispositivos de captura de afinidad16
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Las imágenes representativas de DLPs en líquido utilizando E-chips que fueron descargados por resplandor (Figura 3A) muestran menos DLPs en un área de visualización dada, presumiblemente debido a la difusión, en comparación con los DLPs que se enriquecen en dispositivos affinity capture (Figura 3B). La adición de formiato de uranilo en la cámara de imágenes mejora el contraste de la muestra y, por lo tanto, la visibilidad de los DLPs individuales en solución(Figura 3C,pa.......
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En nuestro trabajo presentado, empleamos el acercamiento de la captura de la afinidad a la correa rotavirus DLPs a una plataforma microfluidic. Esto permitió la proyección de imagen in situ de complejos macromoleculares en un microambiente líquido. El enfoque de captura es significativo con respecto a otras técnicas de imagen microfluídicas porque localiza especímenes biológicos a la ventana de imágenes para negar los grandes problemas difusivos que surgen al grabar imágenes en líquido. Sin embar.......
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La autora, Madeline J. Dukes, es empleada de Protochips, Inc.
Los autores reconocen al Dr. Michael J. Friedlander, Director del Virginia Tech Carilion Research Institute por alentar nuestros esfuerzos de investigación. Este proyecto fue apoyado por fondos de desarrollo para S.M.M y D.F.K. y en parte por la iniciativa Nano-Bio del Instituto de Tecnología Crítica y Ciencia Aplicada de Virginia Tech.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| E-chips, chip espaciador | Protochips, Inc. | EPB-52TBD | 400 μ m x 50 μ m ventana |
| E-chip, chip superior | Protochips, Inc. | EPT-45W | 400 μ m x 50 μ m ventana |
| Lípido Ni-NTA | Avanti Lípidos Polares | 790404P | Forma de polvo |
| DLPC (12:0) lípido | Avanti Lípidos Polares | 850335P | Forma de polvo |
| Matraces volumétricos | Fisher Scientific | 20-812A; 20-812C | 1 ml; 5 ml |
| Jeringas Hamilton | Hamilton Co. | 80300, 80400 | 1-10 y mu; l; 1-25 y mu; l |
| Papel de filtro Whatman #1 | Whatman | 1001 090 | 100 piezas, 90 mm |
| Placas de Petri de vidrio | Corning | 70165-101 | 100 mm x 15 mm |
| Pipetas Pasteur de vidrio | VWR | 14673-010 | 14673-010 |
| Tubos de cultivo de vidrio | VWR | 47729-566 | 6 mm x 50 mm |
| Acetona | Fisher Scientific | A11-1 | 1 L |
| Metanol | Fisher Scientific | A412-1 | 1 L |
| Cloroformo | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 12550 | 100 ml |
| Su etiqueta Proteína A Abcam | , Inc. | ab52953 | |
| Sistema de agua Milli-Q | EMD Millipore Corp. | Z00QSV001 | Agua Ultrapura |
| HEPES | Fisher Scientific | BP310-500 | 500 g |
| Equipo | |||
| Poseidón In situ portamuestras | Protochips, Inc. | Compatible con | |
| FEI FEI Spirit BioTwin TEM | FEI Co. | Cámara | |
| CCD Eagle 2k HS | FEI Co. | 10 Muestreo de píxeles en la | |
| estación de bombeo seco Gatan 655 de | Gatan, Inc. | Punta del soporte de la bomba a 10-6 range | |
| PELCO easiGlow, unidad de descarga incandescente | Ted Pella, Inc. | Modo de polaridad negativa | |
| Placa de agitación calentada Isotemp | Fisher Scientific | Heat a 150 º C durante 1,5 horas |
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This corrects the article 10.3791/50936