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Artículo de método

Fisiológicos Grabaciones y RNA Secuenciación de los apéndices gustativas del mosquito de la fiebre amarilla Aedes aegypti

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DOI:

10.3791/52088

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30 de diciembre de 2014

 , 

En este artículo

Resumen

El uso de dos métodos para estimar la expresión génica en las principales apéndices gustativas de Aedes aegypti, hemos identificado el conjunto de genes supuestamente subyacentes a las respuestas neuronales a compuestos amargos y repulsivas, como se determina por examen electrofisiológico.

Resumen

El registro electrofisiológico de los potenciales de acción de las neuronas sensoriales de los mosquitos proporciona a los investigadores una visión de la percepción química de estos vectores de enfermedades. Recientemente hemos identificado una neurona sensible amarga en el labelo de la hembra de Aedes aegypti que responde al DEET y otros repelentes, así como a la quinina amarga, a través de una investigación electrofisiológica directa. Estas respuestas de las neuronas receptoras gustativas impulsaron nuestra secuenciación del ARNm total de muestras de labella y tarsos masculinos y femeninos para dilucidar los genes de quimiorrecepción putativos expresados en estos tejidos de quimiorrecepción de contacto. Las muestras de tarsos se dividieron en subtipos pro, meso y metatorácicos para ambos sexos. A continuación, validamos nuestro conjunto de datos mediante la realización de qRT-PCR en las mismas muestras de tejido y utilizamos métodos estadísticos para comparar los resultados entre los dos métodos. Los estudios que abordan la función molecular ahora pueden dirigirse a genes específicos para determinar aquellos involucrados en la percepción del repelente por parte de los mosquitos. Estas vías receptoras se pueden utilizar para detectar nuevos repelentes que interrumpan el comportamiento de búsqueda de huéspedes para frenar la propagación de virus dañinos.

Introducción

Compuestos como DEET, Picaridin, citronelal y IR3535 se ha demostrado eficaz para repeler mosquitos, incluyendo las importantes vectores de enfermedades Aedes aegypti 1,2. Registramos los potenciales de acción de las neuronas sensoriales asociadas con sensilla gustativo específico para determinar las células involucradas con la repelencia de mosquitos. Junto con la secuenciación de aguas abajo de los genes expresados ​​en estos tejidos, podemos identificar los genes más probable que median las respuestas de estas células con el fin de cribar nuevos compuestos para la mejora de las capacidades de repelencia.

RNA-seq es ....

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Protocolo

1. Crianza Ae. adultos aegypti

  1. Los huevos eclosionan en aproximadamente ¾ de pulgada de agua en la bandeja poco profunda. El hacinamiento reducirá el tamaño de los adultos.
  2. Larvas posterior a 25 ° C (12 hL: 12-HD) y alimentarlos con comida para peces suelo.
    NOTA: La sobrealimentación puede reducir las tasas de supervivencia.
  3. Retire pupas individualmente por pipeta Pasteur diario y transferir a los platos de plástico (9 cm x 5,5 cm) dentro de pequeños cubos de contención con tapas de malla fina, estableciendo así 24 grupos de edad hr.
  4. Alimentación mosquitos adultos 10% de solución de sacarosa por bola d....

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Resultados

Los registros de Trace de potenciales de acción de Ae. aegypti sensilla gustativa (Figura 1) demuestran la eficacia de la estimulación directa con una gama de productos químicos. Esta técnica se puede utilizar para cuantificar las respuestas a la estimulación de cualquier producto químico contando los picos de una amplitud y duración dada durante un intervalo de tiempo razonable (generalmente menos de 500 ms). Grabaciones de rastreo deben ser fácilmente reproducible bajo un conjunto dado de con.......

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Discusión

El aspecto más difícil de potenciales de acción de grabación de sensilla gustativa es decidir qué respuestas son "normales". Cuando se emplea un solo punta sensillum gustativa grabar la primera vez que una especie de insectos dado, el número total y sensibilidades de las neuronas receptoras gustativas (GRNs) son probablemente desconocido. Muchas grabaciones preliminares primera obligados a decidir el alcance y las concentraciones de los productos químicos para probar. En este caso, empezamos con la observación.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores agradecen a Bryan T. Vinyard del USDA, Servicio de Investigación Agrícola, Henry A. Wallace Centro de Investigación Agrícola de Beltsville, Servicio de Consultoría Biométrica, Beltsville, MD por los análisis estadísticos. Este trabajo fue apoyado en parte por una subvención a J.C.D. del Programa de Investigación de Protección de Combatientes de Guerra Desplegados (DWFP) financiado por el Departamento de Defensa a través de la Junta de Manejo de Plagas de las Fuerzas Armadas (AFPMB).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Capilar de vidrioA-M Systems628000Estándar, 1,5 mm X 0,86 mm, 4"
Alambre de plataA-M Systems7875.015" Alambre
tungstenoAlfa Products3690,127 mm de diámetro
Pinzas finasFine Science Tools11252#5SF Etapa refrigerada de acero inoxidable
Productos BioQuip1429Enfriamiento Preamplificador de mesa
SyntechTaste Probepreamplificador
Software para electrofisiologíaSyntechAutospikesoftware para electrofisiología
TetraMin alimento para pecesTetraTropical alimento para peces granulado alimentopeces molido hasta polvo fino
TRIzolLife Technologies15596-026reactivo de aislamiento de ARN
RNeasy Plus El Mini KitQiagen74136incluye eliminador de ADNg y columnas de espín RNeasy
Espectrofotómetro NanodropProductos Nano DropEspectrómetro de sobremesaND-1000
R statisticsfreeware (creado por Robert Gentleman y Ross Ihaka)www.r-project.orgUtilice la función lm del paquete stats y la función equiv.boot del paquete de equivalencia en el entorno informático R.
Gradilla para tubos de 1,5 mlEvergreen240-6388-030Vierta nitrógeno líquido en unos pocos pocillos vacíos para congelar y triturar el tejido.
Tubos de recolección de 1,5 ml con morteroCentrífuga sinARNasa6HAX6
Thermo Scientific 11178160Gire el tejido congelado para mantenerlo en el fondo del tubo de 1,5 ml.
Primer-BLAST Primer Herramienta de diseñoNCBIn/a
de desnudo para Grainger

Referencias

  1. Klun, J. A., Khrimian, A., Debboun, M. Repellent and deterrent effects of SS220, picaridin, and DEET suppress human blood feeding by Aedes aegypti, Anopheles stephensi, and Phlebotomus papatasi. J. Med. Entomol. 43 (1), 34-39 (2006).
  2. Dickens, J. C., Bohbot, J. D.

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Reimpresiones y permisos

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