Se realizó un conjunto representativo de experimentos utilizando el bien caracterizado TCRM, RL21A, un anticuerpo monoclonal IgG2a murino que reconoce específicamente un péptido (19-27 MIF o FLSL) dentro del contexto de la HLA-A * 02: 01 3 molécula. El monómero de péptido / HLA cognado, así como monómero de HLA irrelevante 15, se utilizó para demostrar el procedimiento descrito. La Figura 3 ilustra el formato de ensayo.
RL21A es específico para el monómero FLSL / HLA con poca reactividad cruzada con otro péptido / HLA complejos 3. Esta especificidad se recapitula utilizando el sistema de bioensayo libre de etiquetas (Figura 4). La sensibilidad del sistema de ensayo biológico libre de etiqueta para este experimento es en el rango bajo nanomolar como se determina por titulación del anticuerpo RL21A en FLSL inmovilizada / monómero de HLA (Figura 5). Aunque la señal de fondo es significativamente mayor en las muestras de suero, sdetección ESPECÍFICOS de monómero FLSL / HLA en el suero humano con púas se logra en la Figura 6 y un gradiente de concentración es fácilmente discernible en estas muestras. Finalmente, los sobrenadantes de la línea celular MDA-MB-231, mostrados previamente para presentar la FLSL / HLA-A * 02: 01 molécula, se muestran para contener monómero soluble FLSL utilizando esta etiqueta plataforma de ensayo libre (Figura 7). La posterior adición de monómero FLSL / HLA aumenta la señal en RL21A (Figura 7). Debido a la sensibilidad del sistema, bien a la variación bien incluyendo cambios de resonancia negativos pueden ocurrir como resultado de las fluctuaciones de temperatura como se ha visto como una función de las desviaciones estándar de las Figuras 4 y 5. Estas variaciones se pueden reducir dramáticamente por pre-incubación de todas las muestras y el lector de placas de bioensayo a una temperatura en ligero exceso de la temperatura ambiente (es decir, 28 ° C).
En la Figura 8, brevemente, 96-bien placas de poliestireno se recubrieron con [10 mg / ml] de RL21A durante 2 horas a temperatura ambiente, se lavó con PBST, se bloquearon con leche baja en grasa 0,5%, se lavó con PBST, y se incubaron durante 2 horas a temperatura ambiente con diluciones en serie de FLSL HLA monómero en el suero humano normal diluido 1:10 en PBS para generar una curva estándar o plasma de paciente diluido 1:10 en PBS. La placa se lavó con PBST, se incubaron 1 hora a temperatura ambiente con conejo microglobulina β2 anti-humano [1: 5000] para detectar HLA intacto, y se lavaron en PBST. Las placas se incubaron a continuación durante 30 min con anticuerpo de cabra anti-IgG de conejo [1: 10.000] y se lavaron con PBST. Detección colorimétrica se realizó usando ABTS (2,2'-azinobis [ácido 3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico] sal -diammonium) sustrato con un tiempo de incubación de 15 min y se observó a 405 nm en un lector de microplacas. FLSL / HLA se detectó en tres muestras de pacientes.
En la Figura 8B, el paciente RL.064 plasma se diluyó 1:20 en PBS y luego añadired a la placa y monitoreados en el detector sin etiquetas durante 60 minutos. Detección específica de complejo FLSL / HLA en el suero del paciente se llevó a cabo. Prueba t de Student se realizó con gráficos y estadísticas de software (p <0,05).
En la Figura 8C, las secciones de tejido se tiñeron a 1 mg / ml con el ratón anti-HLA-A2 (BB7.2) como control positivo, RL21A, IgG2b e IgG2a, respectivamente como controles negativos. La tinción se detectó utilizando un kit anti-ratón de detección, DAB (diaminobenzadina) y QS hematoxilina para la tinción nuclear como lo indique el fabricante. La tinción de tejido tumoral por RL21A confirma la presentación de complejos FLSL / HLA.

Figura 1:. Tumor la presentación de antígenos por el antígeno leucocitario humano de clase I transformación cancerosa es un trastorno intracelular. HLA muestra intracellulproteínas ar y revelar cambios relacionados con el cáncer en la superficie celular. CTL y TCRM son capaces de reconocer las células cancerosas a través de complejos HLA-péptido distintas a las células.

Figura 2:. Captura de adquisición de datos en el software del escáner bioensayo Ejemplo de adquisición de datos que muestra la línea de base inicial scan seguido por RL21A Además anticuerpo a una placa recubierta con 10 mg / ml de complejo FLSL / HLA. Las concentraciones de anticuerpos son como indicado. Cada línea representa un individuo bien monitoreado en el tiempo.

Figura 3:. El formato del ensayo Ilustración de anticuerpos inmovilizados sobre la superficie de la rejilla de difracción de la placa de ensayo rel capturaEvant complejos péptido / HLA en solución.

Figura 4: Especificidad del RL21A para FLSL / HLA complejo Demostración de la especificidad de la biotinilado RL21A TCRM por su correspondiente monómero (FLSL) HLA en comparación con monómero de HLA irrelevante (YLEV, SLLV, y KVL).. Biotinilado RL21A TCRM [10 mg / ml] se inmovilizó sobre la superficie de la placa de ensayo recubierta de avidina y la detección se realizó utilizando no marcado monómero HLA relevante o irrelevante [10 mg / ml] en PBS. RL21A era específico para el Complejo FLSL / HLA. ANOVA de dos vías se realizó con gráficos y estadísticas de software (p <0,001).

Figura 5:. La unión sensibilidad de RL21A a sus afines péptido / complejo HLA Ilustración de la detectisobre el límite y vinculante sensibilidad de RL21A al complejo FLSL / HLA. Biotinilado HLA Monómero FLSL [10 mg / ml] se inmovilizó sobre la superficie de la placa de ensayo y RL21A no marcado se añadió a la placa en diluciones seriadas en PBS como se indica. Detección para este sistema estaba en el intervalo nanomolar bajo.

Figura 6: Detección de HLA complejos en suero enriquecidas humano Demostración de la detección de HLA en el suero humano.. Biotinilado RL21A TCRM [10 mg / ml] se inmovilizó sobre la superficie de la placa de ensayo recubierta de avidina. Agrupado suero humano normal de pinchos con relevante (FLSL) o irrelevante (SLLV) monómero de HLA se diluyó 1:20 en PBS y después se añadió a la placa y monitoreado en el detector sin etiquetas durante 60 minutos. Detección específica del complejo FLSL / HLA en el suero humano se logró. En general, la señal de fondo (monómero SLLV irrelevante) es altaer para las muestras de suero diluidas en comparación con los analitos purificados en PBS (véase la Figura 4). ANOVA de dos vías se realizó con gráficos y estadísticas de software (p <0,0001).

Figura 7:. Se detectaron los complejos de HLA solubles en cáncer de mama sobrenadantes de cultivo celular La capacidad para detectar HLA en sobrenadantes de células de cáncer de mama se demuestra. Biotinilado RL21A TCRM, RL9A TCRM (control negativo), y un control de isotipo se inmovilizaron sobre la superficie de la placa de ensayo. Se añadieron pinchos [5 mg / ml] y no enriquecido MDA-231 sobrenadantes de cultivo celular y la unión se controló durante 60 minutos en el detector sin etiquetas. FLSL y monómero SLLV HLA pinchos muestras representan controles positivos para RL9A y RL21A vinculante. Utilizó un modelo lineal se realizó a través de gráficos y estadísticas de software (p <0,0001).
Figura 8:. Detección específica de complejos FLSL / HLA en muestras de pacientes (A) una enzima tradicional ensayo de inmunoabsorción ligado (ELISA) se utilizó para detectar los complejos específicos FLSL / HLA en el plasma del paciente.
(B) Biotinylated RL21A TCRM o IgG2a [10 g / ml] se inmovilizan en la placa de ensayo avidina.
(C) el tejido del tumor de mama de RL.064 paciente estaba manchada como está descrita anteriormente
3 para verificar la presentación de tumores de los complejos FLSL / HLA.
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