La detección in situ de las bacterias dentro de los tejidos embebidos en parafina utilizando un ADN sonda digoxina marcada focalización 16S rRNA

Resumen

Aquí se ha descrito un método para localizar bacterias dentro de tejidos embebidos en parafina utilizando sondas de ADN dirigidas al ARNr 16S marcadas con DIG. Este protocolo se puede aplicar para estudiar el papel de las bacterias en diversas enfermedades como la periodontitis, los cánceres y las enfermedades inmunitarias inflamatorias.

Resumen

La presencia de bacterias dentro del epitelio de bolsa y el tejido conectivo subyacente en biopsias gingivales de pacientes con periodontitis se ha reportado utilizando varios métodos, incluyendo microscopía electrónica, inmunohistoquímica o inmunofluorescencia usando anticuerpos específicos de bacterias, e hibridación fluorescente in situ (FISH) usando una sonda de oligonucleótidos marcada con fluorescencia. Sin embargo, estos métodos no son ampliamente utilizados debido a limitaciones o dificultades técnicas. Aquí se ha introducido un método para localizar bacterias dentro de tejidos incluidos en parafina utilizando sondas de ADN marcadas con DIG. Los tejidos incluidos en parafina son la forma más común de tejidos de biopsia disponibles en los bancos de patología. Las bacterias pueden detectarse de forma específica de cada especie o de forma universal. Las señales bacterianas se detectan como formas discretas (coco, bastone, fusiforme y peluda) de bacterias o formas dispersas. La técnica permite obtener otra información histológica: se distinguen bien los epítelos, el tejido conectivo, los infiltrados inflamatorios y los vasos sanguíneos. Este método se puede utilizar para estudiar el papel de las bacterias en diversas enfermedades, como la periodontitis, los cánceres y las enfermedades inmunitarias inflamatorias.

Introducción

Las bacterias desempeñan un papel en la etiología de diversas enfermedades orales tales como periodontitis, pulpitis, pericoronitis, celulitis, y osteomielitis. Con el fin de comprender el papel de las bacterias en la patogénesis de la enfermedad y para controlar el efecto de los tratamientos, la localización de las bacterias dentro del tejido es importante. La presencia de bacterias en el tejido gingival de pacientes con periodontitis se ha demostrado usando varios métodos, incluyendo microscopía electrónica de ^1,2, inmunohistoquímica e inmunofluorescencia utilizando anticuerpos específicos de bacterias ^3-7, y la hibridación fluorescente in situ (FISH) usando un ⁸ por fluorescencia sonda de oligonucleótido marcada orientación 16S rRNA. Sin embargo, estos métodos no son ampliamente utilizados debido a la limitación técnica o dificultades. En comparación con anticuerpos, sondas dirigidas a 16S rRNA son fáciles de producir y lograr especificidad de especie. FISH ha demostrado ser una excelente herramienta para la visualización de bacteria en sus entornos naturales como el biofilm de la placa. Sin embargo, la aplicación de FISH a las muestras de tejido es limitado debido a la autofluorescencia de los diversos componentes del tejido. Por ejemplo, el fuerte autofluorescencia de las células rojas de la sangre a menudo dificulta la aplicación de la tecnología de fluorescencia para los tejidos inflamados cuando implican sangrado ^9.

Con el fin de localizar las bacterias dentro de los tejidos gingivales inflamados, por lo tanto, un método de hibridación in situ utilizando un digoxigenina (DIG) sonda de ADN marcada con se ha desarrollado y aplicado con éxito ^10,11. Aquí un protocolo detallado para la localización de las bacterias dentro de los tejidos incluidos en parafina utilizando P. gingivalis sondas específicos de eubacterial y universales se ha descrito. Se centra sobre todo en la estandarización del método de manera que resultados similares se pueden reproducir en otros laboratorios. Este protocolo permite la localización de las bacterias dentro de su contexto histológico y el results son altamente reproducible. El protocolo descrito se puede utilizar para localizar las bacterias ya sea de una manera específica de la especie o universal en varios tejidos. La sonda universal es especialmente útil para detectar bacterias en enfermedades polimicrobianas y para estudiar un posible papel de las bacterias en enfermedades en las que no se conoce el papel de las bacterias específicas.

Protocolo

1. Preparación de la sonda

1. La amplificación por PCR de la sonda
   1. Para el P. sonda gingivalis específico de, amplificar un fragmento de ADN de 343 pb de P. gingivalis 16S rRNA mediante PCR utilizando el ADN genómico de P. gingivalis y los siguientes cebadores: 5'-TGC AAC TTG CCT TAC AGA GG-3 'y 5' ACTUAR CGT ATC GCC CGT TAT TC-3 ^'10. Realizar amplificaciones con las siguientes condiciones de ciclo: 35 ciclos a 95 ° C durante 30 seg, 60 ° C durante 30 seg, y 72 ° C durante 1 min 20 seg seguido por una extensión de 5 min a 72 ° C ^10,11.
   2. Amplificar la eubacteriana usando un 70-bp fragmento de ADN (5'-CAGGTGCTGCATGGCTGTCGTCAGCTCGTGTTGTGAAATGTTGGGTTAAG
      TCCCGCAACGAGCGCAACCC-3 ') sintetizado como un oligonucleótido y los siguientes cebadores: 5'-CTG CAG GTR CMT GGY-3' y 5'-AGG GTT GCG CTC GTT-3 ^'11. Realizar amplificaciones con las siguientes condiciones de ciclo: 40 ciclos9 a 4 ° C durante 30 seg, 60 ° C durante 30 seg y 72 ° C durante 1 min 20 s, seguido de una extensión de 5 min a 72 ° C ^11,12.
   3. Precipitar los productos de PCR (≥500 mu l) mediante la adición de acetato de sodio 3 M (pH 5,2) y etanol 100% (a un 10: 1: 2 ratio) e incubando a -20 ° C durante 2 hr.
   4. Centrifugar la mezcla a 14.000 xg durante 15 min, resuspender el precipitado en 100 l de tampón TE, y medir la concentración de ADN mediante densidad óptica a 260 nm.
2. DIG etiquetado utilizando un kit de etiquetado y detección de ADN DIG
   1. Mezclar 3 g de la sonda con agua hasta un volumen final de 15 l.
   2. Desnaturalizar el ADN a 95 ° C durante 10 minutos y enfriar rápidamente en hielo.
   3. Añadir 2 l de 10x mezcla hexanucleotide, 2 l de mezcla de dNTP-etiquetado, y 1 l de enzima Klenow a 15 l de la DNA desnaturalizado.
   4. Mezclar e incubar a 37 ° C durante 24 horas a 48 horas y detener la reacción por calentamiento a 65 ° C.
3. Compruebe la sensibilidad de la sonda DIG-etiquetados utilizando un kit de etiquetado y detección de ADN DIG
   1. Cargar manualmente 1 l de diluciones seriadas de la sonda de control positivo en el kit y 1 ng de la sonda marcada con DIG en la membrana de nylon y seco durante 5 minutos a temperatura ambiente.
   2. Brevemente empapar la membrana en tampón 2x ​​SSC (NaCl 0,3 M, citrato de sodio 30 mM, pH 7,0) y se incuba la membrana a 80 ° C durante 1 hora para inmovilizar el ADN.
   3. Brevemente empapar la membrana en tampón de ácido maleico (MAB, 0,1 M de ácido maleico, NaCl 0,15 M, pH 7,5) y se incuba con anti-DIG fosfatasa alcalina (AP) conjugada con anticuerpo diluido (1: 5000) en 6 ml de solución de bloqueo proporcionado en el kit a TA durante 30 min.
   4. Se lava la membrana con MABT (MAB que contiene 1% de Tween 20) y aplicar 40 l de la solución de NBT / BCIP mezclado con 2 ml de tampón de detección (0,1 M Tris-HCl, NaCl 0,1 M, 0,05 M MgCl _2, pH 9,5) en el membrana durante 1 min. Si la sensibilidad de la sonda marcada esno satisfactoria, repita los pasos de 1.1.3 a 1.3.4.
   5. Medir la concentración de ADN de la sonda marcada (OD260) y ajustar la concentración a 100 ng l ^-1.
4. Compruebe la especificidad de la sonda marcada con DIG
   1. Desnaturalizar muestras de ADN genómico (25 ng de 3 l ^-1 por cada muestra) a partir de diversas especies bacterianas, incluyendo la bacteria blanco de la sonda específica, a 95 ° C durante 10 min y enfriar rápidamente en hielo.
   2. Cargar manualmente el ADN desnaturalizado en la membrana de nylon y seco durante 20 min a TA.
   3. Brevemente empapar la membrana en tampón 2x ​​SSC y se incuba la membrana a 80 ° C durante 2 horas para inmovilizar el ADN.
   4. Bloquear la membrana con una solución de bloqueo a TA durante 1 hr.
   5. Diluir la sonda a 1 ng l ^-1 en tampón de hibridación, desnaturalizar las sondas diluidas, y aplicar sobre la membrana.
   6. Incubar la membrana a 45 ° C durante 1 hr.
   7. Lavar la membrana de tresveces con tampón SSC 2x.
   8. Brevemente remojo la membrana en el MAB.
   9. Incubar con el anticuerpo anti-DIG AP-conjugado diluido (1: 2000) en 6 ml de solución de bloqueo a TA durante 1 hr.
   10. Se lava la membrana con MABT y aplicar 40 l de la solución de NBT / BCIP mezclado con 2 ml de tampón de detección.
   11. Cuando la sonda no logra la especificidad esperada, aumentar la temperatura de hibridación hasta que se observa la especificidad.

2. Hibridación in situ

Nota: Para evitar el secado de las muestras y reactivos, realice todas las incubaciones en una cámara húmeda llena de toallas de papel húmedas.

1. De-paraffinization y la rehidratación de secciones de tejido
   1. Preparar 4 micras secciones de tejidos gruesos de los bloques incluidos en parafina. Formalina, paraformaldehído y fijador a base de zinc son compatibles con este protocolo.
   2. Preparar todos los reactivos con agua tratada con DEPC.
   3. Diapositivas de calor en un horno seco a 60 ° C durante 30 min y Incubar los portaobjetos a TA durante 30 min.
   4. Sumergir los portaobjetos en 100% xileno durante 5 minutos tres veces; utilizar xileno nuevo cada vez.
      Nota: Realice este procedimiento de-encerado en una campana de extracción química.
   5. Sumergir los portaobjetos en etanol al 100% durante 5 min dos veces, el uso de etanol fresco cada vez, y rehidratar especímenes en serie 90%, 80% y 70% de soluciones de etanol durante 5 min cada uno.
   6. Sumergir los portaobjetos en agua tratada con DEPC por 1 min y lavar los portaobjetos en PBS tratada con DEPC (pH 7,4) durante 6 min.
2. Pretratamientos de secciones de tejido
   1. Sumergir los portaobjetos en ácido clorhídrico 0,1 N durante 20 minutos y lavar los portaobjetos en agua tratada con DEPC durante 30 segundos.
   2. Dibuja una barrera hidrofóbica rodea especímenes utilizando un lápiz de cera.
      Nota: El tamaño de la barrera hidrofóbica depende del tamaño de las muestras. Por lo tanto, los volúmenes de reactivos utilizados en los siguientes pasos varían dependiendo del tamaño de las muestras, pero tienen que llenar el HYbarrera drophobic (50 l para los pequeños especímenes y 400 l de grandes ejemplares).
   3. Tratar especímenes con 50 a 400 l de proteinasa K (1 a 10 mg ml ^-1 en PBS tratada con DEPC) en un horno seco a 37 ° C durante 30 min y lavar los portaobjetos en PBS tratada con DEPC 1x durante 1 min.
   4. Remojar los portaobjetos en 4% de paraformaldehído en PBS tratada con DEPC durante 10 min, a continuación, lavar los portaobjetos en PBS tratada con DEPC por 1 min.
   5. Remojar las diapositivas en 0,1 M de trietanolamina-HCl (pH 8,0) que contenía anhídrido acético 0,5% durante 20 min y lavar los portaobjetos en agua tratada con DEPC para 30 seg.
3. La hibridación con la sonda y el lavado
   1. Sumergir los portaobjetos en tampón SSC 2x durante 20 min.
   2. Diluir la sonda a 1 ng l ^-1 en tampón de hibridación (4x SSC, 50% [vol / vol] formamida, 1X solución de Denhardt, 10% [p / v] sulfato de dextrano, 0,1% [peso / vol] de dodecil sulfato de sodio, 0,4 mg ml ^-1 de ADN de esperma de salmón). Para los controles negativos, mezclar la sonda marcada conuna cantidad en exceso de 10 veces de sonda no marcada.
   3. Desnaturalizar las sondas diluidas y aplicar 50 a 400 l en secciones de tejido. Coloque una hoja de la cubierta de la diapositiva y sellar con esmalte de uñas.
   4. Diapositivas de calor en la máquina PCR a 90 ° C durante 10 minutos e incubar los portaobjetos en una cámara húmeda O / N a 45 ° C o temperatura óptima determinada en el paso 1.4.11.
   5. Enfriar las diapositivas a 4 ° C durante 30 minutos, retire cubreobjetos, y sumergir los portaobjetos en un tampón SSC serie como followings: 4x SSC durante 10 minutos, precalentado (45 ° C) 2x SSC durante 20 minutos, 2x SSC durante 10 min, y 0,2x SSC durante 10 min.
4. Detección con anticuerpo anti-DIG conjugado AP-
   1. Lave las diapositivas en MABT durante 5 min.
   2. Bloque con 50 a 400 l de solución de bloqueo con 1% de Tween 20 durante 20 min.
   3. Añadir 50 a 400 l de anticuerpo anti-DIG-AP diluidos en solución de bloqueo (1: 1000) anld incubar a 37 ° C durante 90 min.
   4. Lave las diapositivas en MABT durante 10 min.
   5. Sumergir los portaobjetos en tampón de detección que contiene 1% de Tween 20 durante 5 min.
   6. Tratar con 50 a 400 μ de levamisol 1 mM (en tampón de detección que contiene 1% de Tween 20) durante 5 min para inactivar la fosfatasa alcalina endógena.
   7. Distribuir 50 a 400 l de la solución premezclada NBT / BCIP (diluido en tampón de detección a 1: 100) en cada muestra e incubar los portaobjetos en una cámara humidificada a temperatura ambiente durante 2 a 3 horas hasta que la señal desarrollado es satisfactoria.
   8. Enjuagar portaobjetos con agua desionizada para detener la visualización y aplicar 50 a 400 l de 0,05% [peso / vol] verde de metilo como una mancha contador a 37 ° C durante 10 min.
   9. Enjuague diapositivas con agua desionizada, se deshidratan en etanol al 100%, y sumergirse en xileno.
   10. Aplique 80 l de solución de montaje en cada diapositiva y cubrir con cubreobjetos.

Resultados

La Figura 1 muestra dot blotting de sondas marcadas con DIG en comparación con la sonda de control positivo proporcionado en el kit para determinar su sensibilidad. El 343 pb P. sonda específico de gingivalis es 25 veces más sensible que la sonda eubacterial 70 pb. La Figura 2 muestra la hibridación in situ de los tejidos gingivales obtenidas de pacientes con periodontitis crónica para la detección de P. gingivalis y eubacterias. Las señales bacterian...

Discusión

Aquí un protocolo para localizar las bacterias dentro de los tejidos embebidos en parafina utilizando una sonda de ADN marcada con DIG que se ha descrito. La sonda se dirige a las moléculas de ADN o ARN de origen bacteriano gen 16S rRNA, y las sondas de ARNr 16S-direccionamiento puede ser diseñado como cualquiera de las especies-específico o universal. La hibridación específica de la P. sonda específico de gingivalis a P. gingivalis pero no a otras bacterias orales se ha demostrado previamente...

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Anhídrido acético	Sigma	6404
50% solución de sulfato de dextrano	Millipore	S4030
50X Denhardt' s solución	Sigma	D2532
DEPC	Sigma	P159220
DIG Kit de detección y etiquetado de ADN	Roche	11 093 657 910
Formamida	Sigma	F9037
ImmEdge™ Bolígrafo	Dako	H-400
Levamisole	Vector	SP-5000
Cloruro de magnesio	Sigma	246964
Ácido maleico	Sigma	M0375
Verde de metilo	Sigma	M6776
Paraformaldehído	Sigma	P1648
Permount	Fisher	SP15-500
Solución de ADN de esperma de salmón	Invitrogen	#15632-011
Cloruro de sodio	Sigma	S9625
Citrato de sodio	Duksan	D1420
Dodecil sulfato de sodio	Amresco	227
Trietanolamina-HCl	Sigma	90279
Tris-HCl	Research organics	3098T