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Artículo de método

Fotoactivado Localización Microscopía con bimolecular fluorescencia Complementación (BiFC-PALM)

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DOI:

10.3791/53154

22 de diciembre de 2015

En este artículo

Resumen

Las interacciones proteína-proteína se visualizan en células con resolución espacial nanométrica mediante la combinación de complementación de fluorescencia bimolecular (BiFC) con microscopía de localización fotoactivada (PALM). Aquí se describe el uso de BiFC-PALM para obtener imágenes de las interacciones Ras-Raf en células U2OS para visualizar la agrupación y difusión a nanoescala de complejos Ras-Raf individuales.

Resumen

Las interacciones proteína-proteína (PPIs) son eventos moleculares clave para la biología. Sin embargo, sigue siendo un desafío visualizar IBP con suficiente resolución y sensibilidad en las células porque la resolución de la microscopía óptica convencional está limitada por difracción a ~ 250 nm. Al combinar la complementación de fluorescencia bimolecular (BiFC) con la microscopía de localización fotoactivada (PALM), los PPI se pueden visualizar en células con sensibilidad de una sola molécula y resolución espacial nanométrica. BiFC es una técnica comúnmente utilizada para visualizar IBP con contraste de fluorescencia, que implica la división de una proteína fluorescente en dos fragmentos no fluorescentes. PALM es una técnica reciente de microscopía de superresolución para obtener imágenes de muestras biológicas a escala nanométrica y de una sola molécula, que utiliza sondas fluorescentes fototransformables como las proteínas fluorescentes fotoactivables (PA-FP). BiFC-PALM se demostró dividiendo PAmCherry1, un PA-FP compatible con PALM, por su naturaleza monomérica, buen brillo de una sola molécula, alta relación de contraste y utilidad para las mediciones estequiométricas. Cuando se divide entre los aminoácidos 159 y 160, PAmCherry1 se puede convertir en una sonda BiFC que se reconstituye eficientemente a 37 °C con alta especificidad para los IBP y baja reconstitución inespecífica. La interacción Ras-Raf se utiliza como ejemplo para mostrar cómo BiFC-PALM ayuda a sondear las interacciones a escala nanométrica y con una resolución de una sola molécula. Su difusión también se puede rastrear en células vivas utilizando el seguimiento de una sola molécula (smt-) PALM. En este protocolo, se discuten los factores a tener en cuenta al diseñar las proteínas de fusión para BiFC-PALM, se explican los pasos de preparación de la muestra, adquisición de imágenes y análisis de datos, y se muestran algunos resultados ejemplares. Al proporcionar una alta resolución espacial, especificidad y sensibilidad, BiFC-PALM es una herramienta útil para estudiar los IBP en muestras biológicas intactas.

Introducción

Las interacciones proteína-proteína (IBP) son fundamentales para la biología 1 y están estrictamente regulados por mecanismos espacio-temporales en muchas escalas de tiempo y longitud. Los estudios sobre la señalización celular en la membrana celular, por ejemplo, han puesto de manifiesto compartimentos espaciales dinámicas, a nanoescala que facilitan IBP específicos y procesos celulares 2. Por lo tanto, la capacidad para sondear los IBP en los sistemas biológicos con suficientes resoluciones espaciales y temporales, una alta especificidad y alta sensibilidad es clave para lograr una comprensión mecanicista de la biología.

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Protocolo

1. Clonación

  1. Determine las configuraciones de clonar y elegir un enlazador. Proteínas de la etiqueta con los fragmentos de la N- o C-terminal como se describe a continuación para que no interrumpan su correcta localización. Utilice un enlazador flexible, tal como (GGGGS) x2.
  2. Genéticamente etiquetar las proteínas de interés a los fragmentos PAmCherry1. Como una opción, utilice los plásmidos de clonación que figuran en la Lista de materiales que contienen los fragmentos de RN (residuos PAmCherry1 1-159) y RC (Met más residuos PAmCherry1 160-236) con flanqueando MCS secuencias.
    1. Linealizar los plásmidos que contienen los fragmentos de RN y R....

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Resultados

El ejemplo BiFC-PALM mostrado es KRas G12D mutante interactuar con los Ras vinculante dominio (RBD) de FARC (Figura 1). Como se ha discutido, la RN o fragmentos de RC no se marcaron a la C-terminal de Ras, ya que perturbaría la localización de la membrana y por lo tanto la actividad biológica de Ras. Esto reduce las posibles combinaciones de ocho a cuatro (Figura 1B). Cada una de estas cuatro combinaciones se introdujo en células U2OS utilizando la infección lentiviral. Las células se f.......

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Discusión

BiFC ha sido una técnica comúnmente utilizada para la detección y la visualización de los IBP en las células, mientras que PALM es una técnica de microscopía reciente sola molécula de super-resolución que permite formación de imágenes a nanoescala de muestras biológicas intactas. La combinación de BiFC con PALM logra imagen selectiva de los IBP en el interior de una celda con nanómetros resolución espacial y sensibilidad única molécula. BiFC-PALM extiende la utilidad de ambas técnicas, y como se demuestra en este trabaj.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores agradecen a los Dres. Steven Chu y Joe W. Gray por sus útiles discusiones, a Henry Marr por su trabajo inicial en el proyecto BiFC-PALM, y a Alexis Shoemaker por su asistencia técnica. Este trabajo cuenta con el apoyo de fondos iniciales para X.N. de OHSU. La investigación en el laboratorio de Nan también contó con el apoyo de NIH 5U54CA143836-05, la Fundación de Investigación del Cáncer Damon Runyon, el M. J. Murdock Charitable Trust y la compañía FEI.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Marco de microscopioNikonTi-U
60X objetivo TIRF de inmersión en aceite con 1.49 NANikonCFI Apo TIRF 60x H
Cámara EMCCDAndoriXon Ultra 897
561 nm láserOpto MotorMGL-FN-561
405 nm láserCoherentCUBE-405 50mW
561 nm espejo dicroicoSemrock  Di01-R405/488/561/635-25x36
Filtro de 561 nmSemrockFF01-525/45-25
Filtro de muesca de 405/561 nmSemrockNF01-405/488/568-25
Temperatura y CO2 etapa controladaTokai HitINUBG2ATW-PLAM
pENTR-D-TOPO-PAmCherry1_1-159-MCSAddgene60545
pENTR-D-TOPO-PAmCherry160-236-MCSAddgene60546
pcDNA3.2-DESTLife Technologies12489-019
pLenti-DESTAddgenehttp://www.addgene.org/Eric_Campeau/
Phusion ADN polimerasa de alta fidelidadThermo ScientificF-531
In-Fusion HDClontech639649
LR ClonaseLife Technologies11791
Vira Power Embalaje de lentivirusLife TechnologiesK497500
reactivo de transfección X-tremeGENERoche13873800
Lab-Tek II Cubreobjetos con cámara ThermoScientific155409#1.5 placas con fondo de vidrio
Celdas U2OSATCCHTB-96
293T/17 celdasATCCCRL-11268
DMEM con rojo fenolLife Technologies11995
DMEM sin rojo fenolLife Technologies21063
Suero fetal bovinoLife Technologies10082
L-15 de Leibovit, sin rojo fenolLife Technologies21083-027
Medio sérico reducidoLife Technologies31985
Solución salina tamponada con fosfatoLife Technologies14040
JeringaBD Biosciences309604
Filtro de jeringaMillipore SLHV033RB
Concentrador lentiviralClontech
Concentrador retroviralClontech 631455
cultivo de 10 cm platoBD Biosciences353003
placa de cultivo de 6 pocillosBD Biosciences353046
PolybreneSigma107689
PuromycinLife TechnologiesA11138
G-418Calbiochem345812Neomicina
DoxiciclinaFisherBP2653
Tris baseFisherBP152
EDTASigmaEDS
Hidróxido de sodioSigmaS5881
ParaformaldehídoSigma158127
GlutaraldehídoSigmaG6257
TUBOSSigmaP6757
HEPESSigmaH4034
EGTASigma3777
Sulfato de magnesioSigmaM2643
Hidróxido de potasioSigma221473 Cloruro
de sodioFisherBP358
Cloruro de magnesioFisherM33
100 nm partículas de oroBBI SolutionsEM. GC100
Agua de grado molecularLife Technologies10977
Dpn1New England BiolabsR0176
Kit de purificación PCRQiagen28104
Kit de minipreparaciónQiagen27104
Kit MidiprepMacherey-Nagel740410
Tubos de microcentrífuga de 0,6 ml Fisher05-408-120
Tubos de microcentrífuga de 1,5 mlFisher05-408-137
Tubos de 15 mlFisher05-539-12
Tubos de polipropileno de fondo redondo de 5 mlBD Biosciences352063
Tubos de fondo redondo de polipropileno de 14 mlBD Biosciences352059
Tubo de 50 mlBD Biosciences352070
tubo de PCRGeneMateC-3328-1
medio SOCLife Technologies15544
LB caldoBD Biosciences244610
Sulfato de kanamicinaFisherBP906
Células competentesLife TechnologiesC4040
MatlabMathworks
631231

Referencias

  1. Braun, P., Gingras, A. C. History of protein-protein interactions: From egg-white to complex networks. Proteomics. 12, 1478-1498 (2012).
  2. Lasserre, R., et al. Raft nanodomains contribute to Akt/PKB plasma membrane recruitment and activation.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Interacciones proteína-proteínaseguimiento de moléculas individualesmicroscopía de superresoluciónresolución espacial nanométricaimágenes de células vivasfragmentos de proteínas fluorescentessondas fototransformablesinteracción Ras-Raf