Este manuscrito describe un método fácil de usar y criofijación bajo costo para la visualización de células en suspensión por microscopía electrónica de transmisión.
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Artículo de método
Este manuscrito describe un método fácil de usar y criofijación bajo costo para la visualización de células en suspensión por microscopía electrónica de transmisión.
Microscopía Electrónica de Transmisión (TEM) es una herramienta extraordinaria para estudiar la ultraestructura celular, con el fin de localizar las proteínas y visualizar complejos macromoleculares a muy alta resolución. Sin embargo, para llegar lo más cerca posible al estado nativo, es necesaria conservación de la muestra perfecta. la fijación convencional microscopía electrónica (EM) con aldehídos, por ejemplo, no proporciona una buena conservación ultraestructural. La penetración lenta de fijadores induce reorganización celular y la pérdida de los diversos componentes de la célula. Por lo tanto, la fijación EM convencional no permite una estabilización instantánea y la preservación de las estructuras y antigenicidad. La mejor opción para el examen de eventos intracelulares es utilizar criofijación seguido por el método de fijación de congelación-sustitución que mantiene a las células en su estado nativo. congelación de alta presión / de congelación-sustitución, que conserva la integridad de la ultraestructura celular, es el método más comúnmente utilizado, pero requiere expensicinco equipos. Aquí, se presenta un método fácil de usar y fijación de congelación bajo costo seguido de congelación-sustitución de cultivos de células en suspensión.
Preparación de la muestra es crítico para el éxito de cualquier estudio de microscopía electrónica. Convencional fijación EM era el principal método para la fijación de tejidos o células para microscopía electrónica de transmisión (TEM) 1. En primer lugar, aldehídos y tetróxido de osmio se utilizan para fijar químicamente el material a temperatura ambiente. Luego, el material se deshidrató con disolventes orgánicos, se infiltró, y se embebió en resina epoxi. Este método depende de la tasa de penetración de los fijadores en la célula. En consecuencia, los artefactos y la extracción de los contenidos celulares se observan generalmente
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1. Preparación de Formvar cuadrícula Film
NOTA: Realizar la manipulación cloroformo bajo una campana de extracción usando el equipo de protección personal (guantes, bata de laboratorio, gafas). Utilice 400 rejillas de cobre de malla de microscopía electrónica. Con otros tipos de rejilla (otros tamaños de malla, de oro y de rejillas de níquel), la calidad de congelación es peor.
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En este artículo, se presenta un método de congelación-fácil de usar y de inmersión de bajo costo para ultraestructurales (Figuras 1 y Figura 2) y immunolabeling (Figura 3) estudios. Se demuestra que no es necesario contar con un equipo especial para el procedimiento de congelación-sustitución y que el procedimiento de calentamiento tarda menos de 6 h en lugar de las 24 h utilizando un sistema dedic.......
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TEM es un método poderoso para la observación ultraestructural de los orgánulos, células y tejidos. Criofijación / congelación-sustitución es actualmente el mejor método para la conservación de ambos ultraestructura y la proteína de la antigenicidad. Fijadores químicos penetran y actúan muy lentamente permitiendo de este modo reordenamientos estructurales antes de la estabilización completa de la ultraestructura 2. A la inversa, criofijación / congelación-sustitución estabiliza instantáneamente e.......
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Los autores declaran que no tienen ningún conflicto de intereses.
Expresamos nuestro agradecimiento a M. Bouchecareilh, E. Tétaud, S. Duvezin-Caubet y A. Devin por su ayuda y comentarios sobre el manuscrito. Estamos agradecidos con el poste de imagen electrónica del Centro de Imágenes de Burdeos donde se tomaron las imágenes. Este trabajo fue apoyado por el Centro Nacional de la Investigación Científica.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Rejillas | Ciencias de la Microscopía Electrónica | T400-Cu | |
| Formvar | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 15800 | |
| Propano N35 | |||
| Nitrógeno | |||
| Aguja de disección de doble filo | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 72947 | |
| Crioviales | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 61802-02 | |
| Tetróxido de osmio | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 19130 | |
| Frasco de vidrio 8,5 mL | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 64252 | |
| Acetato de uranilo | Ciencias de la Microscopía Electrónica | 48851 | |
| Acetona | Sigma | 32201 | |
| Etanol 100% | Sigma | 32221 | |
| Vidrio portaobjetos | VWR international | 631-9439 | |
| Pinzas | |||
| Resina acrílica | Microscopía electrónica Ciencias 104371 | ||
| Resina epoxi M | Sigma | 10951 | |
| Resina epoxi M endurecedor | Sigma | 10953 | |
| Ftalato de dibutilo | Sigma | 80102 | |
| Resina epoxi M accelerateur | Sigma | 10952 | |
| Cristalizador | Fischer scientific | 08-762-9 | |
| Joseph paper | VWR international | 111-5009 | |
| Tazas | hágalo usted mismo, tienda o hecho por usted mismo | ||
| Saccharomyces cerevisiae | |||
| Shizosacharomyces cerevisiae | |||
| Trypanosoma brucei | |||
| Leishmania amazonensis | |||
| Escherichia coli | |||
| Caja hermética | Fischer scientific | 7135-0001 | |
| Respirador purificador de aire | Fischer scientific | 3M 7502 | |
| Cartucho para respirador | Fischer scientific | 3M 6001 | |
| Filtro de partículas | Fischer scientific | 3M 5N11 |
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