Recogida de suero y libre de alimentador madre embrionarias de ratón medio celular acondicionado para un enfoque libre de células

Resumen

Este protocolo proporciona un método para la obtención de células madre embrionarias de ratón (MESC) -conditioned medio (mESC-CM) derivado de suero (suero bovino fetal, FBS) - y alimentadoras (fibroblastos de embriones de ratón, MEFs) -free condiciones para una célula enfoque exento. Puede ser aplicable para el tratamiento de envejecimiento y las enfermedades de envejecimiento asociado.

Resumen

La capacidad de las células madre embrionarias (ESC) y las células madre pluripotentes inducidas (iPSCs) para generar varios tipos de células ha abierto nuevas vías en el campo de la medicina regenerativa. Sin embargo, a pesar de sus beneficios, el potencial tumorigénico de las ESC e iPSC ha sido durante mucho tiempo una barrera para las aplicaciones clínicas. Curiosamente, se ha demostrado que las ESC producen varios factores solubles que pueden promover la regeneración de los tejidos y retrasar el envejecimiento celular, lo que sugiere que las ESC y las iPSC también se pueden utilizar como un método de intervención sin células. Por lo tanto, el método para recolectar un medio acondicionado con células madre embrionarias de ratón (mESC) (mESC-CM) con una contaminación mínima de los componentes del suero (suero fetal bovino, FBS) y las células alimentadoras (fibroblastos embrionarios de ratón, MEF) ha sido muy demandado. Aquí, el presente estudio demuestra un método optimizado para la recolección de mESC-CM en condiciones libres de suero y alimentador y para la caracterización de mESC-CM utilizando lecturas múltiples asociadas a la senescencia. Este protocolo proporcionará un método para recolectar factores secretores puros específicos de mESC sin contaminación del suero y del alimentador.

Introducción

El objetivo de este protocolo es recoger células madre embrionarias de ratón (MESC) -conditioned medio (mESC-CM) a partir de las condiciones de cultivo sin suero y libre de alimentadoras y caracterizar sus funciones biológicas.

En general, las células madre embrionarias (CES) tienen un gran potencial para la medicina regenerativa y la terapia celular debido a su pluripotencia y capacidad de auto-renovación ^1-3. Sin embargo, el trasplante directo de las células madre tiene varias limitaciones, tales como el rechazo inmune y la formación de tumor ^4,5. Por lo tanto, un enfoque libre de células puede proporcionar una estrategia terapéutica alternativa para la medicina regenerativa y las intervenciones de envejecimiento ^6,7.

La senescencia es vista como un homólogo celular para el envejecimiento de los tejidos y órganos, que se caracteriza por un estado permanente de detención del crecimiento, alteración de la fisiología celular, y comportamientos. El envejecimiento es el principal factor de riesgo para las enfermedades prevalentes, incluyendo cáncer, enfermedades cardiovasculares, type la diabetes 2, ⁸ y la neurodegeneración. Una de las características evidentes del envejecimiento es la disminución en el potencial de regeneración de los tejidos, que es causada por el envejecimiento de células madre y el agotamiento ^9. Muchos estudios han demostrado importantes moléculas farmacológicas, tales como la rapamicina ^9, resveratrol ^10, y metformina ^11, y factores sistémicos transmitidas por la sangre, a saber, GDF11 ^12, que tiene la capacidad de retrasar el envejecimiento consistentemente y extender la vida.

En el presente estudio, mESC-CM ha sido cosechada sin suero capas (suero fetal bovino, FBS) y el alimentador (fibroblastos embrionarios de ratón, los MEF) para excluir la contaminación de los factores del suero y factores de secreción de MEFs. Estas condiciones permitieron un CM de suero y libre de alimentador que, por consiguiente permitió la identificación precisa de los factores de secreción mESC-específicas.

Este protocolo propuesto es altamente eficiente y relativamente rentable y fácilpara operar. Esta técnica proporciona información detallada sobre la caracterización de los factores solubles derivados de mESC que puede mediar un efecto anti-senescencia, que puede utilizarse para el desarrollo de un enfoque terapéutico libre de células seguro y potencialmente ventajoso hacia intervenciones para las enfermedades de envejecimiento asociado y otros regenerativa tratos.

Protocolo

NOTA: un esquema del suero y protocolo de recogida de CM libre de alimentador se muestra en la Figura 1.

1. Materiales (Preparación de MEFs, Medio, Placas, y soluciones)

1. Preparar 500 ml de medio de cultivo para los MEFs. Suplemento de Dulbecco medio de Eagle modificado (DMEM) con 10% de FBS (calidad ESC), 50 unidades / ml de penicilina, y 50 mg / ml de estreptomicina.
2. Aislar los MEF a partir de embriones después de un protocolo de rutina establecida ¹³ y mantenerlas en medio MEF.
3. Preparar 500 ml de medio de cultivo para los mESCs. DMEM se complementa con 15% de FBS y 2 mM L-glutamina, 100 mM de aminoácidos no esenciales (NEAA), 100 mM β-mercaptoetanol, 100 unidades / ml de factor inhibidor de la leucemia (LIF), 50 unidades / ml de penicilina, y 50 mg / ml de estreptomicina.
4. Preparar las placas gelatinizados (5 placas gelatinizados / 1 mESC placa) mediante el recubrimiento de 10 cm placas de cultivo celular con 5 ml de solución de gelatina 0,1%. Incubar durante al menos 10 minutos a temperatura ambiente.
5. Preparar 500 ml de medio de suero reducido para una condición sin suero de mESCs. Suplemento suero reducido de medios con 1,2 g de bicarbonato de sodio (pH 7,0). Filtrar a través de un filtro sobre frascos, 0,2 micras.
6. Preparar la asociada a la senescencia β-galactosidasa (SA β-gal) solución de tinción para la detección de células senescentes: 1 mg / ml de X-gal (disuelto en dimetilformamida, DMF), ácido cítrico 40 mM / tampón de fosfato sódico (pH 6,0) , mM de ferricianuro de potasio 5, ferrocianuro de potasio 5 mM, NaCl 150 mM, y MgCl 2 mM ₂ ^14.
   PRECAUCIÓN: (peligrosos) es una solución de DMF tóxico y corrosivo. Use ropa de protección personal (guantes Por ejemplo, nitrilo o de látex, una bata de laboratorio y gafas) al manejar una solución. Utilizar una campana de humos.
7. Preparar 500 ml de medio de cultivo a los fibroblastos dérmicos humanos (HDF, NHDF-Ad-Der-fibroblastos). Suplemento DMEM con FBS 10% y 100 unidades / ml de penicilina y 100 mg / ml de estreptomicina.

jove_title "> 2. cultivo de células madre embrionarias de ratón (Figura 1A y 2A)

NOTA: Llevar a cabo todos los pasos en una campana de seguridad biológica de cultivo celular.

1. Tratar los MEFs con 20 ml de medio de MEF que contiene 10 mg / ml de mitomicina C en una placa de cultivo celular 15 cm. Incubar durante 2 horas a 37 ° C y 5% de _CO2.
2. Aspirar el medio de MEF. Se lavan las células con PBS tres veces. Añadir 3 ml de tripsina-EDTA (TE, 1x) y se incuba durante 3 min a 37 ° C y 5% de CO _2. Después de 3 min, neutralizar el TE con 6 ml de medio de MEF y centrifugar durante 3 minutos a 300 x g.
3. Resuspender en 5 ml de medio de MEF. Determinar el número de células en la suspensión de células resultante usando tinción con azul de tripano y un hemocitómetro. Placa MEFs inactivadas (alimentador) a una densidad de 2 x 10 ⁶ células por 10 cm de placa de cultivo celular en medio MEF. Incubar durante 24 horas a 37 ° C y 5% de _CO2.
4. Reemplazar el medio MEF con medio mESC 24 horas después de la siembra del alimentador (en elel día siguiente).
5. Placa de las mESCs (G4 híbrido F1 de células ES) a una densidad de 2 x 10 ⁶ células en el alimentador con medio mESC. Incubar durante 48 horas a 37 ° C y 5% de _CO2.
   NOTA: El efecto anti-envejecimiento de mESC-CM es probable que más fuerte cuando el número más bajo de paso mESCs se utilizan ^15-17. Hemos adquirido una línea G4 mESC del Dr. Andras Nagy en Lunenfeld-Tanenbaum Instituto de Investigación del Hospital Monte Sinaí, 25 Orde Street, Toronto, ON, M5T 3H7, Canadá.
6. Mantener las células a una densidad relativamente alta y el paso a un estado sub-confluente 70-80%. Sustituir el medio con medio mESC fresco todos los días.

3. Recogida de suero y libre de alimentador de medio condicionado (Figura 1B y 2B)

NOTA: Llevar a cabo todos los pasos en una campana de seguridad biológica de cultivo celular.

1. Enjuague la placa mESC con 5 ml de PBS. Añadir 1 ml de TE (2,5 veces) y se incuba durante 3 min a 37 ° C y 5% de CO _2. Después de 3 min, neutralizar el TE con 2 ml de mESC medium y se centrifuga durante 3 minutos a 300 x g.
2. Resuspender en 5 ml de medio mESC y la placa de 1 ml en cada placa de cultivo recubierta con gelatina (5 placas gelatinizados / 1 mESC placa) en medio mESC. Se alcanza cultivo a 37 ° C y 5% de CO ₂ hasta el 80-85% de confluencia.
3. Lavar mESCs con suficiente PBS para cubrir las células (8 ml por placa de 10 cm) durante 10 minutos por lavado, para un total de tres lavados. Incubar en medio con suero reducido durante 24 horas a 37 ° C y 5% de CO _2.
   NOTA: La etapa de lavado es importante para evitar la contaminación de FBS. Es importante seguir el tiempo de incubación ^18,19.
4. Recoger mESC-CM en un tubo cónico de 50 ml y centrifugar durante 20 min a 2.500 x g. Recoger la solución sobrenadante (CM) después de la centrifugación. Filtrar a través de un filtro sobre frascos, 0,2 micras.

4. Efectos de la madre embrionarias de ratón de la célula-medio condicionado (CM-mESC)

NOTA: Los efectos de mESC-CM fueron validados por varios métodos, tales comoSA ensayo de β-gal, el análisis del ciclo celular, y QRT-PCR.

1. SA β-gal de ensayo (Figura 3A)
   1. HDF de semillas a una densidad de 2 x 10 ⁴ células por pocillo en placas de 6 pocillos en medio HDF. Incubar durante la noche a 37 ° C y 5% de CO _2.
   2. Tras una incubación durante la noche, la mitad de descarte del medio HDF y añadir mESC-CM y el medio de control. Incubar durante 72 horas a 37 ° C y 5% de _CO2. medio de control se deriva de medio libre de suero (suero reducido de Medios) en una placa de gelatina recubierto en ausencia de mESCs.
   3. Se lavan las células con PBS suficiente para cubrir las células (2 ml por placa de 6 pocillos) durante 30 segundos por lavado, para un total de dos lavados. Añadir 3,7% de paraformaldehído (PFA) para la fijación. Incubar durante 5 min a temperatura ambiente.
      PRECAUCIÓN: (peligrosos) es una solución de paraformaldehído tóxico y corrosivo. Use ropa de protección personal (por ejemplo, guantes de nitrilo o de látex, una bata de laboratorio y gafas) al manipular la solución.Utilizar una campana de humos.
   4. Aspirar la solución de fijación. Lavar las células fijadas con PBS dos veces, como se describe en el paso 4.1.3.
   5. Añadir la solución de tinción β-gal SA (1-2 ml por pocillo en una placa de 6 pocillos). Incubar durante 17,5 horas a 37 ° C.
      NOTA: No es que se incubó en un incubador de _CO2.
   6. Aspirar la solución de tinción β-gal SA y lavar las células con PBS dos veces, como se describe en el paso 4.1.3.
   7. Añadir la solución de eosina para la contra-tinción. Incubar durante 5 min a temperatura ambiente. Se lavan las células con PBS dos veces, como se describe en el paso 4.1.3.
   8. Las células de las imágenes a un aumento de 100X utilizando un microscopio de luz y de captura de imágenes utilizando una cámara digital conectada para su posterior análisis.
      NOTA: El número total de células se puede contar de forma ciega y el porcentaje de células azules positivas SA β-gal se puede calcular.
2. Análisis del ciclo celular (Figura 3B)
   1. HDF de semillas a una densidad de8 x 10 ⁴ células por pocillo en una placa de cultivo celular de 6 cm en un medio de HDF. Incubar durante la noche a 37 ° C y 5% de CO _2.
   2. Tras una incubación durante la noche, la mitad de descarte del medio HDF y añadir mESC-CM y el medio de control. Incubar durante 24 horas a 37 ° C y 5% de _CO2.
   3. Tripsinizar las células, como se describe en el paso 3.1, y se centrifuga durante 5 min a 300 x g. Lavar las células con solución de PBS frío (PBS con 0,5 mM de _CaCl2 y 2% de FBS, 1 ml por 1,5 tubo ml) dos veces y centrifugar durante 3 minutos a 2500 x g. Resuspender en 100 l de solución de PBS frío.
   4. Fijar las células dejando caer 200 l de etanol frío, mientras que vórtex. Almacenar a 4 ° C durante al menos 1 hora.
   5. Lavar las células con solución de PBS frío dos veces, como se describe en el paso 4.2.3.
   6. Resuspender las células en 250 l de tampón de citrato de sodio (1,12%, pH 8,5) que contiene 50 mg / ml de RNasa. Incubar durante 30 minutos a 37 ° C.
   7. Añadir 250 l de citrato de sodiotampón que contiene / yoduro de propidio 50 mg ml. Incubar durante 20 min a temperatura ambiente.
   8. Medir las células 10.000 en cada muestra mediante citometría de flujo ^20.
3. QRT-PCR (Figura 3C)
   1. HDF semillas y añadir mESC-CM, tal como se describe en los pasos 4.1.1 y 4.1.2.
   2. Aislar el ARN total a partir de los HDF utilizando un kit de extracción de ARN de acuerdo con el protocolo del fabricante. Cuantificar el ARN total extraído por medio de un espectrofotómetro ^21.
   3. Sintetizar ADNc mediante la adición de 1 g de ARN total a un 20 l de mezcla de reacción que contiene oligo (dT) y M-MLV transcriptasa inversa, de acuerdo con el protocolo del fabricante ^20.
   4. Medir la amplificación del cDNA con una máquina de PCR en tiempo real, utilizando PCR verde mezcla maestra y los cebadores específicos de genes (Suplemento Tabla 1). Normalizar los datos con expresión de GAPDH. Utiliza el siguiente protocolo de PCR: de inicialdesnaturalización durante 10 min a 95 ° C; 45 ciclos de 15 segundos a 95 ° C, 20 seg a 55 ° C y 35 seg a 72 ° C; y la etapa de la curva de fusión de 15 segundos a 95 ° C, 1 min a 60 ° C, 30 segundos a 95 ° C y 5 segundos a 60 ° C ^15.

Resultados

Originalmente, mESCs se mantienen en un alimentador de MEF en medio mESC con FBS y otros suplementos (Figuras 1A y 2A). CM se recogió de mESCs en suero reducido de medios sin una capa de alimentación, FBS, u otros suplementos (Figuras 1B y 2B). Esta condición de cultivo nos permite recoger mESC específicos medio condicionado sin contaminación potencial por los factores de la alimentación, FBS, u otros suplementos. El med...

Discusión

Para el éxito de la recogida del suero y mESC-CM sin alimentador, las siguientes sugerencias deben ser tomados en consideración. El factor más importante es el uso de mESCs principios de paso para la recogida de mESC-CM. Anteriormente, se ha demostrado que temprano paso mESC-CM tiene mejores efectos anti-envejecimiento en comparación con mESCs paso finales. El número de pases de mESCs se ha informado que afectan a su potencial de desarrollo ¹⁶ y pluripotencia ^17.

Aunque...

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
DMEM	Invitrogen	#11960-044
FBS	Invitrogen	#30044333	20%, calidad de la célula ES
Penicilina y estreptomicina	Invitrogen	#15140	50 unidades/ml penicilina y 50  mg/ml estreptomicina
L-glutamina	Invitrogen	#25030	2  mM
Aminoácidos no esenciales (NEAA)	Invitrogen	#11140	100  y micro; M
β-mercaptoetanol	Sigma	#M3148	100  y micro;
M Factor inhibidor de la leucemia	Millipore	#ESG1107	100 unidades/ml
OPTI-MEM	Invitrogen	#22600
X-gal	Sigma	#B4252	1 mg/ml
Paraformaldehído (PFA)	Sigma	P6148	3.70%
Dimetilformamida (DMF)	Sigma	#D4551
Ferricianuro de potasio	Aldrich	#455946	5 mM
ferrocianuro de potasio	Aldrich	#455989	5 mM
NaCl	Sigma	#S7653	150 mM
MgCl2	Sigma	#M2393	2 mM
Mitomicina C	Sigma	#M4287	10  y micro; g/ml
Yoduro de propidio	Sigma	#P4170	50  y micro; g/ml
TRIzol	Ambion	#15596018
M-MLV transcript-tase inversa	Promega	#M170B
Power SYBR Green PCR master mix	Biosistemas Aplicados	#4367659
HDFs, NHDF-Ad-Der-Fibroblast	LONZA	#CC-2511
Filtro de tapa de botella	Corning	#430513	0.2 μ m