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Artículo de método

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DOI:

10.3791/55263

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26 de enero de 2017

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En este artículo

Resumen

Se presenta una estrategia para generar mutaciones en genes de histonas en su ubicación endógena en Saccharomyces cerevisiae.

Resumen

Describimos un sistema basado en PCR y recombinación homóloga para generar mutaciones específicas en genes de histonas en células de levadura en ciernes. Los alelos mutantes resultantes residen en sus sitios genómicos endógenos y no quedan secuencias de ADN exógeno en el genoma después del procedimiento. Dado que en las células de levadura haploides, cada una de las cuatro proteínas histonas principales está codificada por dos genes no alélicos con marcos de lectura abiertos (ORF) altamente homólogos, dirigir la mutagénesis específicamente a uno de los dos genes que codifican una proteína histona en particular puede ser problemático. La estrategia que describimos aquí evita este problema utilizando secuencias fuera, en lugar de dentro, del ORF de los genes objetivo para el paso de recombinación homóloga. Otra característica de este sistema es que las regiones del ADN que impulsan los pasos de recombinación homóloga pueden ser muy extensas, lo que aumenta la probabilidad de eventos de integración exitosos. Estas características hacen que esta estrategia sea particularmente adecuada para la mutagénesis del gen de histonas, pero también se puede adaptar para la mutagénesis de otros genes en el genoma de la levadura.

Introducción

Las cuatro proteínas histonas H2A, H2B, H3, H4 y juegan un papel central en la compactación, la organización y función de los cromosomas eucarióticos. Dos juegos de cada una de estas histonas forman el octámero de histona, un carrete molecular que dirige la envoltura de ~ 147 pares de bases de ADN en torno a sí mismo, en última instancia, resulta en la formación de un nucleosoma 1. Nucleosomas son participantes activos en una variedad de procesos basados ​​en los cromosomas, tales como la regulación de la transcripción de genes y la formación de eucromatina y heterocromatina en todos los cromosomas, y como tales han sido el foco de intensa inv....

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Protocolo

NOTA: La estrategia experimental para objetivo in situ mutagénesis de genes histona incluye varias etapas (que se resumen en la Figura 1). Estos pasos incluyen: (1) Sustitución del gen de la histona de destino con el gen URA3, (2) Generación y purificación de productos de PCR correspondientes a dos fragmentos que se superponen parcialmente del gen de la histona objetivo usando cebadores que albergan la mutación (s) deseado, (3 ) Fusión de PCR de los dos fragmentos que se superponen parcialmente para obtener productos de PCR de tamaño completo para la integración, (4) Co-transformación de los productos de PCR de tamaño completo y el ....

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Resultados

Se describe la generación de un alelo HHT2 que expresa una proteína mutante de la histona H3 que alberga una sustitución en la posición 53 de una arginina a un ácido glutámico (H3-R53E mutante) como un ejemplo representativo del objetivo de la estrategia de mutagénesis situ.

Hemos generado una cepa en la que todo el ORF de HHT2 se sustituye por el gen URA3 (véase la etapa 1.......

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Discusión

El alto grado de homología de secuencia entre los dos genes no alélicos que codifican para cada una de las cuatro proteínas histonas en células haploides de S. cerevisiae puede representar un reto para los investigadores que desean dirigirse específicamente a uno de los dos genes para la mutagénesis. Anteriormente se ha descrito metodologías de mutagénesis de levadura, incluyendo la Delitto Perfetto, mutagénesis genómica específica del sitio (SSG), y métodos de reemplazo de alelo basados en PCR libre d.......

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Divulgaciones

Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Agradecimientos

Agradecemos a Reine Protacio por sus útiles comentarios durante la preparación de este manuscrito. Expresamos nuestro agradecimiento a la Fundación Nacional de Ciencias (subvenciones n.º 1243680 y 1613754) y al Programa Hendrix College Odyssey por su apoyo financiero.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1 kb Escalera de ADN (estándares de ADN)New England BioLabsN3232L
Agarose SigmaA5093-100G
MezclaSigmaB0394-500G
(10 mM cada una)ThermoFisher ScientificR0192
Solución de EDTA (0,5 M, pH 8,0)AmericanBioAB00502-01000
Etanol (200 pruebas)Fisher Scientific16-100-824
Ácido etilendiaminotetraacético, sal disódica disódica (EDTA)SigmaE4884-500G
Acetato de litio dihidratadoSigmaL6883-250G
MyCycler TermocicladorBioRad170-9703
Poli(etilenglicol) (PEG)SigmaP3640-1KG
PrimeSTAR HS ADN Polimerasa (ADN polimerasa de alta fidelidad)   y tampón 5xFisher Scientific50-443-960
Solución de ADN de esperma de salmónThermoFisher Scientific15632-011
Sigma 7-9 (base Tris, forma de polvo)SigmaT1378-1KG
Acetato de sodio trihidratoSigma236500-500G
Supra Sieve GPG Agarosa (agarosa a baja temperatura de metling)AmericanBioAB00985-00100
Taq Polimerasa y tampón 10xNew England BioLabsM0273X
Palillos de dientesFisher ScientificS67859
Tris-HCl (1 M, pH 8.0)AmericanBioAB14043-01000
A-D(+)-GlucosaFisher ScientificAC170080025para medios de levadura
AgarFisher ScientificDF0140-01-0para medios de levadura
PeptonaFisher ScientificDF0118-07-2para el medio YPD
Extracto de levaduraFisher ScientificDF0127-17-9para el medio YPD
4-aminobenzoicoSigmaA9878-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
AdeninaSigmaA8626-100Gpara un medio de pérdida mínima completa 
Clorhidrato de glicinaSigmaG2879-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-AlaninaSigmaA7627-100Gpara un medio de puntaje mínimo completo 
L-Arginina monoclorhidrato SigmaA5131-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-Asparagina monohidratoSigmaA8381-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
Ácido L-aspártico sal sódica monohidratoSigmaA6683-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
Clorhidrato de L-cisteína monohidratoSigmaC7880-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
Clorhidrato de ácido L-glutámicoSigmaG2128-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-GlutaminaSigmaG3126-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-Histidina monoclorhidrato monohidratoSigmaH8125-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-isoleucinaSigmaI2752-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-LeucinaSigmaL8000-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
Monoclorhidrato de L-lisinaSigmaL5626-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-metioninaSigmaM9625-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-fenilalaninaSigmaP2126-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-ProlineSigmaP0380-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-SerineSigmaS4500-100Gpara un medio de puntaje mínimo completo 
L-treoninaSigmaT8625-100Gpara un medio de puntaje mínimo completo 
L-triptófanoSigmaT0254-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
L-TirosinaSigmaT3754-100Gpara un medio de puntaje mínimo completo 
L-ValineSigmaV0500-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
myo-InositolSigmaI5125-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
UracilSigmaU0750-100Gpara un medio de abandono mínimo completo 
Sulfato de amonioFisher ScientificA702-500para un medio de abandono mínimo completo 
Base de nitrógeno de levaduraFisher ScientificDF0919-07-3para un medio de abandono mínimo completo 
Ácido 5-fluoroorótico (5-FOA)AmericanBioAB04067-00005para  medio 5-FOA
Ácido bórico de dNTP ácido

Referencias

  1. Luger, K., Mader, A. W., Richmond, R. K., Sargent, D. F., Richmond, T. J. Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 A resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  2. Campos, E. I., Reinberg, D. Histones: annotating chromatin. Annu Rev Genet. 43, 559-599 (2009).
  3. Rand....

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Reimpresiones y permisos

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