El uso de dispositivos de microfluidos para Medir Lifespan y Celular fenotipos en células individuales levadura en ciernes

Resumen

Este artículo presenta un protocolo optimizado para la producción de chips de microfluidos y la configuración de los experimentos de microfluidos para medir la vida útil y los fenotipos celulares de células de levadura individuales.

Resumen

La levadura en ciernes Saccharomyces cerevisiae es un organismo modelo importante en la investigación del envejecimiento. Los estudios genéticos han revelado muchos genes con efectos conservados en la esperanza de vida de todas las especies. Sin embargo, las causas moleculares del envejecimiento y la muerte siguen siendo difíciles de alcanzar. Para obtener una comprensión sistemática de los mecanismos moleculares que subyacen al envejecimiento de la levadura, necesitamos métodos de alto rendimiento para medir la vida útil y cuantificar varios fenotipos celulares y moleculares en células individuales. Anteriormente, desarrollamos dispositivos microfluídicos para rastrear las células madre de levadura en ciernes a lo largo de su vida útil mientras eliminamos las células hijas recién nacidas. Este artículo presenta un método para la preparación de chips microfluídicos y para la configuración de experimentos microfluídicos. Se pueden utilizar múltiples canales para rastrear simultáneamente las células en diferentes condiciones o de diferentes cepas de levadura. Una configuración típica puede rastrear cientos de células por canal y permitir imágenes de microscopio de alta resolución durante toda la vida útil de las células. Nuestro método también permite la caracterización detallada de la vida útil, los marcadores moleculares, la morfología celular y la dinámica del ciclo celular de células individuales. Además, nuestro dispositivo microfluídico es capaz de atrapar una cantidad significativa de células madre frescas que se pueden identificar mediante el análisis de imágenes posteriores, lo que permite medir la vida útil con mayor precisión.

Introducción

La levadura en ciernes es un poderoso organismo modelo en la investigación del envejecimiento. Sin embargo, un ensayo de vida útil convencional en levaduras se basa en la microdisección, que no sólo es un trabajo intensivo sino también bajo rendimiento ^{1, 2.} Además, el enfoque de microdisección tradicional no proporciona una vista detallada de diversas características celulares y moleculares en las células madre individuales a medida que envejecen. El desarrollo de dispositivos microfluídicos ha permitido un procedimiento automatizado para medir la vida útil de la levadura, así como de seguir los marcadores moleculares y diferentes fenotipos celulares a lo largo de la vida útil de las células madre ^{3, 4, 5, 6, 7, 8.} Después de células de levadura se cargan en un dispositivo de microfluidos, pueden ser rastreados bajo un microscopio usando el tiempo-vueltas automáticase imágenes. Con la ayuda de la formación de imágenes herramientas de procesamiento, diferentes fenotipos celulares y moleculares se pueden extraer ^{3, 6, 8,} incluyendo la vida útil, el tamaño, el reportero fluorescente, la morfología celular, la dinámica del ciclo celular, etc., muchos de los cuales son difíciles o imposibles de obtener mediante el método tradicional de microdisección. Dispositivos de microfluidos han ganado importancia en la investigación de levadura envejecimiento, ya que su desarrollo con éxito hace unos años, ^{3, 4, 6, 7.} Varios grupos han publicado posteriormente en variaciones de los diseños anteriores ^5, y muchos laboratorios de levadura han empleado dispositivos de microfluidos para su estudio.

En un cultivo de células sometidos a crecimiento exponencial, el número de células madre de edad que están disponibles para la observación es miniscuLe. Por lo tanto, el principio de diseño general del dispositivo de microfluidos para mediciones de vida útil es conservar las células madre y para eliminar las células hijas. Uno de estos diseños hace uso del hecho de que la levadura se somete a la división celular asimétrica. Las estructuras de las células madre de la trampa voluntad dispositivo más grandes y permitir que las células hijas más pequeñas para ser lavados. El chip microfluídico descrito en este artículo utiliza una almohadilla de polidimetilsiloxano suave (PDMS) (columnas Pensile verticales) a las células madre trampa (Figura 1). Dispositivos de diseño similar se ha informado anteriormente ^{3, 4, 6, 7.} Este protocolo utiliza un procedimiento más sencillo para fabricar dispositivos microfluídicos y un método de la celda de carga sencilla que está optimizado para los experimentos de imagen de lapso de tiempo. Uno de los parámetros clave en el dispositivo de microfluidos es la anchura de las almohadillas de PDMS utilizados para células trampa madre. nuestra device utiliza almohadillas más amplios que pueden mantener más células madre en cada almohadilla, incluyendo una fracción significativa de células madre frescas que pueden rastrearse a lo largo de su vida útil. Además de las mediciones de vida útil, este protocolo es útil para los experimentos de imagen única célula de lapso de tiempo cuando las células necesitan ser rastreado por muchas generaciones o cuando una observación a lo largo de toda la vida útil es necesario.

Protocolo

1. Molde de fabricación de obleas de silicio

NOTA: La fotomáscara se ha diseñado con el software AutoCAD y fabricado por una empresa comercial. Este diseño contiene tres capas de diferentes patrones ( Archivo 1 ). Las alturas de la primera, segunda, y tercera capas son aproximadamente 4! M, 10 m, y 50! M, respectivamente. El molde oblea de silicio se ha creado a partir de la fotomáscara mediante litografía blanda ^{9, 10.}

1. Hornear una oblea de silicio a 200 ° C durante 10 min para evaporar el vapor de agua. revestimiento por centrifugación fotorresistente negativo SU-8 sobre la oblea de silicio.
   NOTA: revestimiento por centrifugación SU-8 3.005 a 5.000 rpm durante 30 s para generar la primera capa, SU-8 de 2010 a 3000 rpm durante 30 s para generar la segunda capa, y SU-8 3.025 a 2.000 rpm durante 30 s para generar el tercera capa.
2. Soft-hornear la oblea revestida antes de tque la transferencia de patrones. Alinear y exponer la oblea en el modo de "contacto directo" utilizando un alineador de máscara.
   NOTA: Soft-hornear la oblea durante 2 min a 95 ° C para la primera capa, 3 min a 95 ° C para la segunda capa, y 15 min a 95 ° C para la tercera capa. Utilice la dosis de exposición a 100 mJ / cm ² para la primera capa, 130 mJ / cm ² para la segunda capa, y 200 mJ / cm ² para la tercera capa.
3. Después de la exposición, post-hornear la oblea y desarrollarla utilizando SU-8 desarrollador. Se seca la oblea usando una pistola de N ₂ y difíciles de hornear la oblea a 200 ° C durante 30 min.
   NOTA: El molde oblea de silicio se fija a una placa de plástico 15 cm de diámetro Petri utilizando cinta scotch, con el lado de patrón hacia arriba. Por lo general, ponemos varias estructuras de chips idénticos en el mismo molde, lo que permite que varios chips de microfluidos para fabricar al mismo tiempo. Cada molde puede ser reutilizado muchas veces para fabricar chips de microfluidos.

2. microfluidosLa fabricación de chips

1. Colocar un recipiente pesado limpia en una balanza y tarar la balanza. Verter 50 g de base de PDMS en la barca de pesaje.
2. Añadir 5 g de agente de curado PDMS a la embarcación pesaje (w / w proporción de 1:10 a la base de PDMS).
   NOTA: Este volumen se basa en un plato de 15 cm de diámetro Petri con el molde. Ajustar la cantidad de reactivo si se utiliza una placa de Petri de un tamaño diferente.
3. Se agita la base de PDMS y el agente de curado con una pipeta desechable. Comience desde el borde del recipiente pesado y poco a poco avanzar hacia el interior. Se agita a fondo durante varios minutos hasta pequeñas burbujas se forman en toda la mezcla; la mezcla completa es esencial para la polimerización de PDMS.
4. Verter la mezcla lentamente en la placa de Petri; la mezcla debe cubrir completamente el molde oblea de silicio.
5. Coloque la placa de Petri en un vacío durante 10 minutos para eliminar todas las burbujas de aire de la mezcla de PDMS. Si las burbujas permanecen en la superficie de la mezcla, utilizar una pipeta para apagarlas.
6. Incubar el siliciomolde oblea con PDMS en un horno a 75 ° C durante aproximadamente 2 h.
7. Con cuidado, la capa de PDMS polimerizadas fuera del molde oblea de silicio, evitando cualquier daño a la construcción del molde oblea. Alternativamente, cortar los PDMS directamente desde el molde oblea de silicio con un mínimo margen de 5 mm alrededor del patrón usando una hoja de afeitar industrial de un solo borde; suavemente pelar la capa de PDMS fuera del molde oblea.
8. Coloque la capa de PDMS en el banco con el lado patrón hacia arriba. Extraer con cuidado el chip individuo con una hoja de afeitar industrial de un solo borde, manteniendo un margen adecuado desde el borde de cada solo chip para evitar el daño de la construcción.
9. Con el lado de patrón hacia arriba, utilizar una pluma punzón (0,75 mm ID) para perforar agujeros directamente hacia abajo a través de los círculos de entrada y de salida en cada lado de los canales.
   NOTA: Estos agujeros crean la vía para el flujo del medio. Por lo tanto, es crucial que pasar por los círculos y perforar todo el camino a través de la capa de PDMS. Asegurate quequitar las columnas de PDMS del agujero.
10. Comprobar cada agujero perforado mediante la inserción de la aguja de pluma punzón de nuevo en el agujero. Asegúrese de que la aguja pueda salir por el otro lado, lo que indica que no hay ninguna obstrucción. Aplique cinta a la superficie de patrón, a continuación, pelar suavemente de la cinta para limpiar las partículas de polvo. Repita este paso al menos tres veces. Deja un trozo limpio de cinta adhesiva sobre el PDMS para mantener la esterilización.
11. Repita este procedimiento en el lado opuesto del PDMS y dejar el último trozo de cinta en también.
12. Preparar una cubierta de vidrio 24 mm x 30 mm con un espesor de 0.13-0.17 mm. Pulverizar 70% de etanol en el cristal y seco con eliminador de polvo para esterilizar la superficie; Además, el vidrio se puede lavar con agua esterilizada en autoclave y se secó con eliminador de polvo.
13. Transferir el vidrio de cubierta y PDMS a una placa de plástico. Retire la cinta adhesiva desde el PDMS y colocar la superficie con el dibujo hacia arriba. Evitar cualquier contacto con la superficie de patrón durante la transferencia.
14. Coloque la placa de plástico en la máquina de plasma. Aplicar el tratamiento con plasma de oxígeno a los PDMS y el vidrio de cubierta para hacer que las superficies hidrófilas con los siguientes parámetros de operación: la exposición, 75 s; estabilización de los gases, 20 cc / min; presión, 200; y el poder, 100 W.
15. Colocar con cuidado el PDMS en el cristal de cubierta, que conecta las dos superficies hidrófilas (las superficies que se enfrentan hacia arriba durante el tratamiento de plasma). Asegúrese de que no hay burbujas de aire entre el PDMS y la cubierta de vidrio.
16. Incubar el chip de PDMS en un horno a 75 ° C durante al menos 2 h.
    NOTA: microfluídica deficientes pueden causar fugas de líquido en el microscopio durante el experimento. Por lo tanto, es importante comprobar el enlace entre el PDMS y el vidrio de cubierta levantando ligeramente el PDMS de los bordes con pinzas. levantando suavemente el PDMS no debe separarlo de la cubierta de vidrio, lo que indica una unión exitosa.

3. Preparación para el Experimento

1. Preparación del tubo.
   1. Sumergir los tubos de entrada y salida en solución de etanol al 70% por separado 1 día antes de la preparación de chips PDMS.
   2. Llene una jeringa de 5 ml con agua tratada en autoclave para lavar los tubos. Lavar cada tubo conectando el tubo de la jeringa y el lavado del tubo con agua.
   3. Repetir la etapa de lavado al menos 3 veces para limpiar los residuos de etanol.
2. Examinar los canales de PDMS bajo un microscopio óptico con un objetivo de 10X para asegurarse de que la estructura es coherente e intacto. Estabilizar el chip de PDMS en la plataforma de microscopio usando cinta adhesiva.
   NOTA: Haga varias fichas en un momento en el paso 2 para asegurar que no son chips de copia de seguridad, especialmente si haciendo que el dispositivo por primera vez.
3. Llene una jeringa de 5 ml con agua tratada en autoclave. Fije la jeringa a una bomba de jeringa e insertar los tubos de entrada y salida correspondientes. Ajuste la velocidad de lavado a 750 l / h para enjuagar el chip durante aproximadamente 10 min. Las burbujas de aire en los canales de ramificacióndeben ser lavados durante este período; Si hay burbujas restantes, ajustar manualmente la velocidad para eliminar las burbujas.
4. preparación de la muestra de levadura.
   1. Transferencia de 1 ml de muestra de levadura preparada (OD ₆₀₀ 0.6-0.8) en dos tubos de 1,5 ml de microcentrífuga y se centrifuga durante 5 min a 3.000 x g.
   2. Eliminar la mayoría del sobrenadante de cada tubo y combinar el resto para formar una muestra de 0,5 ml.
5. Pausa la bomba de jeringa y retirar los tubos de entrada del chip PDMS.
6. retroceder manualmente la bomba de jeringa para aspirar una pequeña burbuja de aire (1 a 2 cm de longitud) en cada tubo de entrada. Pasar a aspirar la muestra de levadura; la burbuja de aire se mostrará el límite de la muestra e indicar la cantidad de muestra que se ha dibujado.
   NOTA: Evitar que aspira la muestra en la jeringa.
7. Introducir el tubo de entrada de nuevo en el chip de PDMS y reinicie la bomba para cargar las células a una velocidad de 750 l / h.
8. Deje la jeringa bomba durante 10 min lan y examinar la progresión carga de las células bajo el microscopio; una carga exitoso células trampa bajo más de un 60% de suspender pilar.
9. Cambiar a solución nutrición y ajustar la velocidad de 400 l / h para el cultivo celular.
10. Seleccione posiciones de observación para el microscopio.
    NOTA: Para las mediciones de vida útil, las imágenes fueron tomadas una vez cada 15 minutos mediante un microscopio óptico con un objetivo de 40x. Para el análisis informador fluorescente, imágenes fueron tomadas una vez cada 15 min por un microscopio de fluorescencia con un objetivo de aceite 60X.

Resultados

Después de los experimentos, la vida útil de las células y muchos fenotipos celulares y moleculares se pueden extraer de las imágenes de lapso de tiempo grabados. Puesto que hay un número de diferentes características que se pueden extraer de cada celda, el primer paso del análisis es para anotar las células y eventos, incluyendo las posiciones y los límites de las células y la sincronización de los diversos eventos que se está realizando el seguimiento, tales como los acontecimientos en...

Discusión

El dispositivo de PDMS necesita ser recién hecho. De lo contrario, las burbujas de aire causadas por la inserción de tubos en el dispositivo serán difíciles de eliminar. Paso 3.4 es importante para mejorar la eficiencia de carga de células mediante la concentración de las células. Para aumentar el rendimiento del experimento, de 4 a 6 módulos en el mismo chip PDMS conectados a independiente bombas que operan normalmente se utilizan para realizar de 4 a 6 experimentos diferentes (diferentes cepas o composiciones de medio...

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
3'' < 111> oblea de silicona	Addison Engineering
SU-8 Serie 2000 y 3000	MicroChem
Sylgard® 184 Kit de elastómero de silicona	ellsworth	2065622	Incluye base de elastómero de silicona Sylgard y agente de curado
Placas de Petri	VWR	391-1502
Harris Uni-core™ punzón (diámetro interno 0,75 mm)	Sigma-Aldrich
24 mm x 40 mm SLIP-RITE® cubreobjetos	Thermo Fisher Scientific	102440
3M Scotch Tape	ULINE	S-10223
VWR® Hojas de afeitar	VWR	55411-050
etanol puro, Koptec	VWR	64-17-5
Whoosh-Duster™	VWR	16650-027
Jeringa BD de 5 mL (Luer-Lock™ Consejo)	Becton, Dickinson and Company	309646
Tubería de pared estándar de PTFE (100 pies, tamaño AWG: 22, ID nominal: 0.028)	Compañía de suministro	de componentes SWTT-22
Surtido de agujas	Compañía de suministro de componentes	NEKIT-1
Desecador	HACH	2238300
Horno de laboratorio	Fisher Scientific	13246516GAQ
Microscopio Nikon TE2000 con objetivo de 40X y 60X	Nikon
Zeiss Axio Observer Z1 con objetivo de 40X y 60X	Zeiss
	Longerpump	TS-1B